Summary

Spinal Cord Elettrofisiologia II: extracellulare fabbricazione di elettrodi di aspirazione

Published: February 20, 2011
doi:

Summary

Una dimostrazione della fabbricazione e l'uso di un elettrodo extracellulare di aspirazione utilizzata per misurare le registrazioni elettrofisiologiche delle corde roditori neonatale vertebrale<em> In vitro</em

Abstract

Sviluppo della circuiteria neurale e locomozione possono essere studiate usando neonatale roditori midollo spinale centrale pattern generator (CPG) comportamento. Dimostriamo un metodo per fabbricare elettrodi di aspirazione che sono utilizzati per esaminare l'attività CPG, o locomozione fittizia, in cordoni roditori sezionato spinale. I cavi roditori spinale sono posti in artificiale liquido cerebrospinale e le radici ventrali sono trascinati nella elettrodo di aspirazione. L'elettrodo è costruito modificando un elettrodo di aspirazione disponibile in commercio. Un filo d'argento pesante viene usato al posto del filo standard assegnato da l'elettrodo disponibili in commercio. La punta di vetro sull'elettrodo commerciale viene sostituito con una punta di plastica per una maggiore durata. Prepariamo mano elettrodi disegnate e elettrodi in dimensioni specifiche di tubi, permettendo coerenza e riproducibilità. I dati vengono raccolti con un amplificatore e acquisizione di software neurogram. Le registrazioni vengono effettuate su un tavolo d'aria all'interno di una gabbia di Faraday per evitare interferenze meccaniche ed elettriche, rispettivamente.

Protocol

Le registrazioni elettrofisiologiche di isolati midollo spinale può rivelare cambiamenti genetici e di sviluppo di circuiti neurali 1. Abbiamo già dimostrato un metodo per analizzare i cavi del mouse neonatale vertebrale 2. Qui vi presentiamo un metodo per preparare elettrodi aspirazione utile nella registrazione locomozione fittizia nel midollo spinale isolato 3. La punta di un elettrodo di tubi di plastica può essere attratto da una punta molto sottile a…

Discussion

Sviluppo del sistema nervoso possono essere studiate usando cavi isolati spinale di roditori. In presenza di neurotrasmettitori, locomozione fittizia possono essere generati dal midollo spinale sotto forma di attività elettrica fantasia 1,3. Queste esplosioni ritmiche sono prodotti a 0,2-0,5 Hz e sono modellati in alternanza destra-sinistra e flessori-estensori. A diversi stadi di sviluppo, la robustezza ed i modelli di questa attività varia a 1. Mutazioni genetiche possono anche disturbare il mo…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Samuel L. Pfaff è docente nei Laboratori di espressione genica presso il Salk Institute for Biological Studies e un investigatore della Howard Hughes Medical Institute. Questo lavoro è stato sostenuto dal Christopher e Dana Reeve Foundation. Joe Belcovson, Kent Schnoeker e Mike Sullivan in Risorse Multimediale presso il Salk Institute ha fornito assistenza con la fotografia e montaggio.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
PTFE Sub Lite Wall Tubing (Small tubing)   Zeus 36AWG 0.005”ID x 0.003” Wall (Small Parts) Also available in 0.003” to 0.006”
Large tubing (0.86mm (0.34”))   Clay Adams Brand Intramedic Becton Dickinson and Company 427420 0.86mm (0.34”) O.D. 1.27mm (.050”)
Electrode Barrel   A-M Systems 573000  
Adhesive   JB Weld    
Adhesive: Silicone caulk        
Solder and soldering iron        
Bleach        
Xylene        
Silver wire: 0.010”   A-M Systems    
Insect pins: Austerlitz 0.1mm   Fine Science Tools 26002-10  
Magnetic Stand   Narishige GJ-8  
Micromanipulator   Narishige MN 151  
Miniboard (Headstage)   Grass Industries F-15EB/B1  
Polyview Adaptor Unit   Grass Industries PVA 8  
Bipolar Portable Physiodata Amplifier System   Grass Industries 15LT  
ANALOG TO DIGITAL CARD   National Instruments 6035E  
Air Table; Vibraplane   Kinetic Systems    

Riferimenti

  1. Gallarda, B. W., Sharpee, T. O., Pfaff, S. L., Alaynick, W. A. Defining rhythmic locomotor burst patterns using a continuous wavelet transform. Ann N Y Acad Sci. 1198, 133-139 (2010).
  2. Meyer, A., Gallarda, B. W., Pfaff, S., Alaynick, W. Spinal cord electrophysiology. J Vis Exp. , (2010).
  3. Gallarda, B. W. Segregation of axial motor and sensory pathways via heterotypic trans-axonal signaling. Science. 320, 233-236 (2008).
  4. Landmesser, L. The development of motor projection patterns in the chick hind limb. J Physiol. 284, 391-414 (1978).
  5. Myers, C. P. Cholinergic input is required during embryonic development to mediate proper assembly of spinal locomotor circuits. Neuron. 46, 37-49 (2005).
  6. Chanin, M. The determination of chloride by use of the silver-silver chloride electrode. Science. 119, 323-324 (1954).
  7. Goulding, M. Circuits controlling vertebrate locomotion: moving in a new direction. Nat Rev Neurosci. 10, 507-518 (2009).

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Citazione di questo articolo
Garudadri, S., Gallarda, B., Pfaff, S., Alaynick, W. Spinal Cord Electrophysiology II: Extracellular Suction Electrode Fabrication. J. Vis. Exp. (48), e2580, doi:10.3791/2580 (2011).

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