Summary

I livmodern elektroporation följt av primär Neuronala Kultur för att studera geners funktion i Delmängd av kortikal Neuroner

Published: October 08, 2010
doi:

Summary

I livmodern elektroporation är en värdefull metod för transfecting neuronala stamceller in vivo. Beroende på placering av elektroderna och utvecklingsmässiga tidpunkterna för elektroporation kan vissa delmängder av kortikala celler riktas. Riktade celler kan sedan analyseras in vivo eller in vitro för effekterna av genetiska förändringar.

Abstract

In vitro-studier av primära neuronala kulturer möjliggör kvantitativa analyser av neurite utväxt. För att studera hur genetiska förändringar påverkar neuronala processen utväxt, shRNA eller cDNA konstruktioner kan införas i primär nervceller via kemiska transfektion eller viral transduktion. Men med primär kortikala celler, är en heterogen grupp av celltyper (glutamaterg nervceller från olika lager, hämmande nervceller, gliaceller) transfekterade med dessa metoder. Användningen av i livmodern elektroporering att införa DNA-konstruktioner i den embryonala gnagare cortex tillåter vissa grupper av celler som utgör målgrupp: medan elektroporering av tidiga embryonala cortex mål djupa lagren av hjärnbarken, mål elektroporation på sena embryonala tidpunkter mer ytliga lager. Vidare differential placering av elektroder över huvudet på enskilda embryon resulterar i att rikta dorsal-mediala kontra ventral-laterala områden av hjärnbarken. Efter elektroporation kan transfekterade celler dissekeras ut, dissocierade, och pläterade in vitro för kvantitativ analys av neurite utväxt. Här ger vi en steg-för-steg metod för att kvantitativt mäta neuronala processen utväxt i delmängder av kortikala celler.

Den grundläggande protokoll för i livmodern elektroporering har beskrivits i detalj i två andra JUPITER artiklar från Kriegstein lab 1, 2. Vi kommer att ge en översikt över våra protokoll för i livmodern elektroporering, med fokus på de viktigaste detaljerna, följt av en beskrivning av våra protokoll som gäller i livmodern elektroporering till att studera geners funktion i neuronala processen utväxt.

Protocol

Den grundläggande protokoll för i livmodern elektroporering har beskrivits i detalj i en annan JUPITER artikeln från Kriegstein lab 1, 2. Denna teknik var ursprungligen beskrivits i Osumi labb 3 och vårt protokoll bygger på en utvecklad i LoTurco lab 4. Vi kommer att tillhandahålla en översikt över våra protokoll för i livmodern elektroporering av råtta embryon, med fokus på de viktigaste detaljerna, följt av en beskrivning av våra protokoll som gäller <e…

Discussion

In vitro-studier av primära neuronala kulturer möjliggör kvantitativa analyser av neurite utväxt. För att studera hur genetiska förändringar påverkar neuronala processen utväxt kan shRNA eller misexpression konstruktioner skall införas i primära neuroner via kemiska transfektion eller viral transduktion. Men med primär kortikala celler, är en heterogen grupp av celltyper (glutamaterg nervceller från olika lager, hämmande nervceller, gliaceller) transfekterade med dessa metoder. Användningen av <…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Josef LoTurco och Dennis Selkoe för bra diskussioner om denna teknik. Författarna tackar givarna av den amerikanska hälso-och sjukvård stiftelse för att stödja denna forskning.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Cortical Neuron Preparation        
Dissection Media:        
10X Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) (Ca+2 /Mg +2 free)   Gibco 14185-052  
10X Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) (with Ca+2 /Mg +2 )   Gibco 14065-056  
1M HEPES pH 7.4   Gibco 15630-080  
Dishes and Vials:        
100 x 15 mm Petri Dishes Fisherbrand 08-757-12  
60 x 15 mm Petri Dishes   BD Falcon 351007  
15 mL conical vial   Sarstedt 62-547-205  
50 mL conical vial   Sarstedt 62-554-205  
Dissection Tools:        
Scissors   Fine Science Tools 91402-12  
Standard Forceps Fine Science Tools 11000-12  
Curved Forceps   Fine Science Tools 11273-20  
Fine Forceps   Fine Science Tools 11255-20  
Vannas spring scissors   Fine Science Tools 15000-00  
Miscellaneous:        
.25% Trypsin-EDTA   Gibco 25200  
Reichert Bright-Line Hemacytometer   Hausser Scientific 1490  
Hand-Held Tally Counter   Sigma Z169021  
Plating Medium:        
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (D-MEM)   Gibco 11960-051  
Fetal Bovine Serum   Sigma F4135  
Penicillin-Streptomycin   Gibco 15140  
L-glutamine   Gibco 25030  
Growth Medium:        
NEUROBASAL Medium   Gibco 21103-049  
B-27 Serum-Free Supplement   Gibco 17504-044  
GlutaMAX -I Supplement   Gibco 35050-061  
Gentamicin Reagent Solution   Gibco 15750-060  
Immunostaining:        
Fixative, Washes, and Blocking Buffer:        
Paraformaldehyde   Sigma P6148  
Phosphate Buffered Saline   Sigma P4417  
Triton X-100   Sigma T9284  
Donkey Serum   Jackson Immuno 017-000-121  
Antibodies:        
beta-III tubulin antibody   Chemicon MAB1637  
MAP2 antibody   Chemicon AB15452  
Donkey Cy3 anti-mouse   Jackson Immuno 715-166-151  
Donkey Cy2 anti-chicken   Jackson Immuno 703-226-155  
DAPI   Gibco D3571  
Slide Preparation:        
CC2 Coated Two-Chamber Slides   Lab-Tek 154852  
Fluorescent Mounting Media   KPL 71-00-16  
24 x 60 mm Micro Cover Glasses   VWR 48393-106  
Clear nail polish   Electron Microscopy Sciences 72180  
Electroporation:        
Ketamine   Henry Schein 995-2949  
Xylazine   Henry Schein 4015809TV  
buprenorphine   Henry Schein 1118217  
Picospritzer III   Parker    
BTX square wave electroporator   Fisher BTXECM830  
Tweezertrodes, 7 mm, platinum   Harvard Apparatus 450488  

Riferimenti

  1. Walantus, W., Castaneda, D., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E15 mouse embryos. J Vis Exp. , (2007).
  2. Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos. J Vis Exp. , (2007).
  3. Takahashi, M., Sato, K., Nomura, T., Osumi, N. Manipulating gene expressions by electroporation in the developing brain of mammalian embryos. Differentiation. 70 (4-5), 155-1562 (2002).
  4. Bai, J., Ramos, R. L., Ackman, J. B., Thomas, A. M., Lee, R. V., LoTurco, J. J. RNAi reveals doublecortin is required for radial migration in rat neocortex. Nat Neurosci. , 1277-1283 (2003).
  5. Okada, A., Lansford, R., Weimann, J. M., Fraser, S. E., McConnell, S. K. Imaging cells in the developing nervous system with retrovirus expressing modified green fluorescent protein. Exp Neurol. 156 (2), 394-406 (1999).
  6. Bai, J., Ramos, R. L., Paramasivam, M., Siddiqi, F., Ackman, J. B., LoTurco, J. J. The role of DCX and LIS1 in migration through the lateral cortical stream of developing forebrain. Dev Neurosci. , 144-156 (2008).
  7. Molyneaux, B. J., Arlotta, P., Menezes, J. R., Macklis, J. D. Neuronal subtype specification in the cerebral cortex. Nat Rev Neurosci. , 427-437 (2007).
  8. Young-Pearse, T. L., Bai, J., Chang, R., Zheng, J. B., Loturco, J. J., Selkoe, D. J. A Critical Function for -Amyloid Precursor Protein in Neuronal Migration Revealed by In Utero RNA Interference. J Neurosci. 27, 14459-14469 (2007).
  9. Young-Pearse, T. L., Chen, A. C., Chang, R., Marquez, C., Selkoe, D. J. Secreted APP regulates the function of full-length APP in neurite outgrowth through interaction with integrin beta1. Neural Develop. 3, 15-15 (2008).

Play Video

Citazione di questo articolo
Rice, H., Suth, S., Cavanaugh, W., Bai, J., Young-Pearse, T. L. In utero Electroporation followed by Primary Neuronal Culture for Studying Gene Function in Subset of Cortical Neurons. J. Vis. Exp. (44), e2103, doi:10.3791/2103 (2010).

View Video