Summary

Otomatik Üç Boyutlu Nöron Rekonstrüksiyon Yazılımı Kullanılarak Dendritik Omurga Ölçümü

Published: September 27, 2024

Summary

Dendritik dikenler, çoğu uyarıcı sinapsın post-sinaptik bölmeleridir. Dendritik omurga morfolojisindeki değişiklikler, nörogelişim, yaşlanma, öğrenme ve birçok nörolojik ve psikiyatrik bozukluk sırasında meydana gelir ve güvenilir dendritik omurga analizinin önemini vurgular. Bu protokol, otomatik üç boyutlu nöron rekonstrüksiyon yazılımı kullanılarak dendritik omurga morfolojisinin doğru ve tekrarlanabilir bir şekilde ölçülmesini açıklar.

Abstract

Sinaptik bağlantılar, nöronlar arasında bilgi alışverişine ve işlenmesine izin verir. Uyarıcı sinapsların post-sinaptik bölgesi genellikle dendritik dikenler üzerinde oluşur. Dendritik dikenler, sinaptik plastisite, nörogelişim ve nörolojik ve psikiyatrik bozukluklar etrafında odaklanan araştırmalarda büyük ilgi gören yapılardır. Dendritik dikenler, ömürleri boyunca toplam omurga sayısı, dendritik omurga boyutu ve farklı süreçlere yanıt olarak morfolojik olarak tanımlanmış alt tip değişikliği gibi özelliklerle yapısal değişikliklere uğrarlar. Dendritik dikenlerin bu yapısal değişikliklerini düzenleyen moleküler mekanizmaların tanımlanması morfolojik ölçüme dayanır. Bu, deneysel kanıt sağlamak için doğru ve tekrarlanabilir dendritik omurga analizini zorunlu kılar. Bu çalışma, Neurolucida 360 (otomatik üç boyutlu nöron rekonstrüksiyon yazılımı) kullanılarak dendritik omurga miktar tayini ve sınıflandırması için ayrıntılı bir protokolü özetlemektedir. Bu protokol, toplam omurga yoğunluğu, omurga başı hacmi ve omurga alt tiplerine sınıflandırma gibi temel dendritik omurga özelliklerinin belirlenmesine izin verir ve böylece dendritik omurga yapısal fenotiplerinin etkili bir şekilde analiz edilmesini sağlar.

Introduction

Dendritik dikenler, genellikle glutamaterjik sinapsların 1,2 post-sinaptik bölgesini içeren dendritlerin çıkıntılarıdır. Dendritik dikenler, sinaptik plastisite alanında özellikle ilgi çekicidir. Sinaptik kuvvet değiştiğinde omurgalar sıklıkla değişir, uzun süreli sinaptik güçlenmede daha büyük ve daha güçlü hale gelir veya uzun süreli sinaptik depresyonda daha küçük ve daha zayıf hale gelir 3,4,5,6,7. Sinaptik plastisitenin ötesinde, dendritik dikenlerin profili yaşam boyu değişir. Erken gelişimde, bir dendritik omurga oluşumu ve büyümesi dönemi vardır, ardından kararlı bir duruma ulaşana kadar dendritik omurga budamasıyapılır 8,9,10. Yaşlanan beyinde omurga kaybı, beyin küçülmesine ve bilişsel gerilemeye eşlik eder11. Ek olarak, birçok nörolojik, nörodejeneratif ve psikiyatrik bozukluk anormal dendritik dikenler ile karakterizedir. Şizofreniden etkilenen bireylerde çoklu beyin bölgeleri, muhtemelen değişmiş sinaptik budamadan kaynaklanan daha az dendritik dikene sahiptir12. Otizm spektrum bozuklukları ayrıca dendritik omurga patolojileri ile karakterizedir13. Dendritik omurga kaybı, hem Alzheimer hem de Parkinson hastalığının ayırt edici özelliğidir14,15. Dendritik omurga özelliklerine ilişkin araştırmaları kapsayan çok çeşitli araştırma konuları göz önüne alındığında, doğru omurga ölçümü için teknikler büyük önem taşımaktadır.

Boyama, yani Golgi yöntemi veya boya dolgusu yoluyla nöronların etiketlenmesi veya floresan proteinlerin eksprese edilmesi, dendritik omurga görselleştirmesi için yaygın yöntemlerdir 16,17,18. Görselleştirildikten sonra, dikenler çeşitli ücretsiz ve ticari olarak temin edilebilen yazılım istemcileri ile analiz edilebilir. Analizin istenen çıktısı, hangi yazılımın en çok kullanılacağını belirlemede önemli bir faktördür. Fiji, dendritik omurga yoğunluğuna odaklanan sorular için uygun bir yazılım seçeneğidir. Bununla birlikte, bu teknik büyük ölçüde, önyargı potansiyelini ortaya çıkarabilecek zaman alıcı manuel saymaya dayanır. SpineJ gibi yeni eklentiler, otomatik nicelemeye izin vererek ayrıca daha doğru omurga boynu analizine olanak tanır19. Bu yaklaşımların bir dezavantajı, SpineJ iki boyutlu görüntü yığınlarıyla sınırlı olduğundan, omurga hacmini belirlemek için üç boyutlu bir analizin kaybıdır. Ek olarak, omurga alt tipi bilgisinin elde edilmesi bu süreçlerle zorlaşır. Dört baskın omurga alt tipi, ince, mantar, güdük ve filopodia, hepsi bireysel işlevleri çağrıştırır ve büyük ölçüde morfoloji20 ile sınıflandırılır. İnce dikenler, uzun bir boyun ve tanımlanmış bir kafa ile karakterizedir21. Mantar dikenleri çok daha büyük ve belirgin bir omurga kafasınasahiptir 22. Güdük omurgalar kısadır ve baş ile boyun arasında çok az fark vardır23. Filopodia, uzun, ince boyunlu ve açıkça gözlemlenebilir bir başı olmayan olgunlaşmamış dikenlerdir24. Sınıflandırma değerli bilgiler sağlarken, dikenler bir boyut sürekliliği üzerinde bulunur. Kategorilere ayırma, morfolojik ölçüm aralıklarınadayanmaktadır 25,26. Sınıflandırma için omurgaların manuel olarak ölçülmesi, bu yaklaşımdaki araştırmacılar için lojistik yükü artırır.

Özellikle üç boyutlu dendritik omurga analizine odaklanan diğer yazılım seçenekleri, omurga hacmi ve alt tip özellikleri 27,28,29,30,31 ile ilgili araştırmalar için daha uygundur. Zayıf z-düzlemi çözünürlüğü ve smear gibi üç boyutlu analizin sunduğu zorluğa rağmen, bu yazılım seçenekleri, dendritlerin ve dendritik dikenlerin kullanıcı güdümlü yarı otomatik bir şekilde güvenilir üç boyutlu yeniden yapılandırılmasına izin verir. Tanımlanan omurgaların alt tiplerine göre otomatik olarak sınıflandırılması da bu omurga analizi yazılım paketlerinin bazılarında bulunan bir özelliktir. Bu, potansiyel iş yükü ve deneysel önyargı endişelerini iyileştirebilir. Neurolucida 360, güvenilir ve tekrarlanabilir üç boyutlu dendritik omurga tanımlaması ve sınıflandırmasına olanak tanıyan, ticari olarak temin edilebilen bir yazılımdır32. Burada, bu yazılımı kullanarak sabit dokuyu etkili bir şekilde hazırlamak, görüntüler elde etmek ve nihayetinde dendritik dikenleri ölçmek ve sınıflandırmak için kapsamlı bir protokol sunuyoruz.

Protocol

Tüm hayvan prosedürleri, ABD Ulusal Sağlık Enstitüleri Intramural Araştırmalarında Hayvanları Kullanma Yönergelerini takip etti ve Ulusal Ruh Sağlığı Enstitüsü Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylandı. 1. Sabit hipokampal dilimlerin hazırlanması Fareleri intraperitoneal Ketamin / Xylazine enjeksiyonu ile uyuşturun (Ketamin: 100 mg / kg; Ksilazin: 8 mg / kg). Anesteziyi kuyruk tutamıyla doğru…

Representative Results

Bu analiz yönteminin etkin bir şekilde kullanılması, izleme için dendritik segmentlerin seçimi ile başlar. Şekil 1’de açıklandığı gibi, izleme için ideal dendritler diğer dendritlere yakın değildir. Paralel olarak çalışan dendritler, komşu bir dendritten dikenlerin yanlış tanımlanmasına neden olabilir. Farklı bir z-düzleminde doğrudan kesişen veya dik olarak çalışan dendritler, doğru dendritik izlemeye de önemli zorluklar ka…

Discussion

Bu protokol, numune hazırlama, görüntüleme ve üç boyutlu rekonstrüksiyon yazılımı kullanılarak dendritik omurga miktar tayini ve sınıflandırma sürecinin belirli adımlarını detaylandırır. Bu yazılım, çok çeşitli araştırmalara katkıda bulunan sağlam yapısal veriler üretebilen güçlü bir araçtır. Süreç boyunca, bu protokolü daha az metodolojik bir yük haline getiren ve verilerin genel çıktısını artıran bazı kritik adımlar vardır. Dendritik dik…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Teknik yardım için Carolyn Smith, Sarah Williams Avram, Ted Usdin ve NIMH SNIR’a teşekkür ederiz. Ayrıca Colgate Üniversitesi Bethesda Biyomedikal Araştırma Çalışma Grubu’na da teşekkür ederiz. Bu çalışma NIMH Intramural Programı (1ZIAMH002881’den Z.L.’ye) tarafından desteklenmektedir.

Materials

518F Immersion Oil Zeiss 444960-0000-000
Cryostat Leica CM3050S For slice preparation
Fine Forceps FST 11150-10
Hemostat Forceps FST 13020-12
Large Surgical Scissors FST 14002-16
LSM 880 Confocal Microscope Zeiss LSM 880
Microscope Cover Glass Fisherbrand 12-541-035
Mini-Peristaltic Pump II Harvard Apparatus 70-2027 For perfusions
Neurolucida 360 MBF Bioscience v2022.1.1 Spine Analysis Software
Neurolucida Explorer MBF Bioscience v2022.1.1 Spine Analysis Software
OCT Compound Sakura Finetek 4583 For cryostat sectioning
Paraformaldehyde (37%) Fisherbrand F79-1
Plan-Apochromat 63x/1.40 Oil DIC Zeiss 440762-9904-000
Scalpel Blade FST 10022-00
Small Surgical Scissors FST 14060-09
Spatula  FST 10091-12
Sucrose FIsherbrand S5-500
Superfrost Plus Microslides Diagger ES4951+
Vectashield HardSet Mounting Medium Vector Laboratories H-1400-10

References

  1. Gray, E. G. Electron microscopy of synaptic contacts on dendrite spines of the cerebral cortex. Nature. 183, 1592-1593 (1959).
  2. Ramón Y Cajal, S. Sobre la fibras nerviosas de la capa molecular del cerebelo. Rev Trim Histol Norm. 1, 33-49 (1888).
  3. Desmond, N. L., Levy, W. Changes in the numerical density of synaptic contacts with long-term potentiation in the hippocampal dendate gyrus. J Comp Neurol. 253, 466-475 (1986).
  4. Engert, F., Bonhoeffer, T. Dendritic spine chances associated with hippocampal long-term synaptic plasticity. Nature. 399, 66-70 (1999).
  5. Yang, Y., Wang, X. B., Frerking, M., Zhou, Q. Spine expansion and stabilization associated with long-term potentiation. J Neurosci. 28 (22), 5740-5751 (2008).
  6. Oh, W. C., Parajuli, L. K., Zito, K. Heterosynaptic structural plasticity on local dendritic segments of hippocampal ca1 neurons. Cell Rep. 10 (2), 162-169 (2015).
  7. Shinoda, Y., Tanaka, T., Tominaga-Yoshino, K., Ogura, A. Persistent synapse loss induced by repetitive ltd in developing rat hippocampal neurons. PLoS One. 5 (4), e10390 (2010).
  8. Markus, E. J., Petit, T. L. Neocortical synaptogenesis, aging, and behavior lifespan development in the motor-sensory system of the rat. Exp Neurol. 96 (2), 262-278 (1987).
  9. Duan, H., Wearne, S. L., Rocher, A. B., Macedo, A., Morrison, J. H., Hof, P. R. Age-related dendritic and spine changes in corticocortically projecting neurons in macaque monkeys. Cereb Cortex. 13 (9), 950-961 (2003).
  10. Chen, C. C., Lu, J., Zuo, Y. Spatiotemporal dynamics of dendritic spines in the living brain. Front Neuroanat. 8, 28 (2014).
  11. Dickstein, D. L., Weaver, C. M., Luebke, J. I., Hof, P. R. Dendritic spine changes associated with normal aging. Neurosciences. 251, 21-32 (2013).
  12. Glausier, J. R., Lewis, D. A. Dendritic spine pathology in schizophrenia. Neurosciences. 251, 90-107 (2013).
  13. Phillips, M., Pozzo-Miller, L. Dendritic spine dysgenesis in autism related disorders. Neurosci Lett. 601, 30-40 (2015).
  14. Dorostkar, M. M., Zou, C., Blazquez-Llorca, L., Herms, J. Analyzing dendritic spine pathology in alzheimer’s disease: Problems and opportunities. Acta Neuropathol. 130 (1), 1-19 (2015).
  15. Villalba, R. M., Smith, Y. Loss and remodeling of striatal dendritic spines in parkinson’s disease: From homeostasis to maladaptive plasticity. J Neural Transm (Vienna). 125 (3), 431-447 (2018).
  16. Cheng, C., Trzcinski, O., Doering, L. C. Fluorescent labeling of dendritic spines in cell cultures with the carbocyanine dye "dii&#34. Front Neuroanat. 8, 30 (2014).
  17. Feng, G., et al. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of gfp. Neuron. 28 (1), 41-51 (2000).
  18. Baloyannis, S. J. Staining neurons with golgi techniques in degenerative diseases of the brain. Neural Regen Res. 10 (5), 693-695 (2015).
  19. Levet, F., Tonnesen, J., Nagerl, U. V., Sibarita, J. B. SpineJ: A software tool for quantitative analysis of nanoscale spine morphology. Methods. 174, 49-55 (2020).
  20. Peters, A., Kaiserman-Abramof, I. R. The small pyramidal neuron of the rat cerebral cortex. The perikaryon, dendrites and spines. Am J Anat. 127 (4), 321-356 (1970).
  21. Pfeiffer, T., et al. Chronic 2p-sted imaging reveals high turnover of dendritic spines in the hippocampus in vivo. Elife. 7, e34700 (2018).
  22. Harris, K. M. Structure, development, and plasticity of dendritic spines. Curr Opin Neurobiol. 9 (3), 343-348 (1999).
  23. Hering, H., Sheng, M. Dendritic spines: Structure, dynamics, and regulation. Nat Rev Neurosci. 2 (12), 880-888 (2001).
  24. Jontes, J. D., Smith, S. J. Filopodia, spines, and the generation of synaptic diversity. Neuron. 27 (1), 11-14 (2000).
  25. Pchitskaya, E., Bezprozvanny, I. Dendritic spines shape analysis-classification or clusterization? Perspective. Front Synaptic Neurosci. 12, 31 (2020).
  26. Berry, K. P., Nedivi, E. Spine dynamics: Are they all the same. Neuron. 96 (1), 43-55 (2017).
  27. Rodriguez, A., Ehlenberger, D. B., Dickstein, D. L., Hof, P. R., Wearne, S. L. Automated three-dimensional detection and shape classification of dendritic spines from fluorescence microscopy images. PLoS One. 3 (4), e1997 (2008).
  28. Swanger, S. A., Yao, X., Gross, C., Bassell, G. J. Automated 4D analysis of dendritic spine morphology: Applications to stimulus-induced spine remodeling and pharmacological rescue in disease model. Mol Brain. 4, 38 (2011).
  29. Basu, S., et al. Quantitative 3-D morphometric analysis of individual dendritic spines. Sci Rep. 8 (1), 3545 (2018).
  30. Ekaterina, P., Peter, V., Smirnova, D., Vyacheslav, C., Ilya, B. Spinetool is an open-source software for analysis of morphology of dendritic spines. Sci Rep. 13 (1), 10561 (2023).
  31. Li, B. Z., Sumera, A., Booker, S. A., Mccullagh, E. A. Current best practices for analysis of dendritic spine morphology and number in neurodevelopmental disorder research. ACS Chem Neurosci. 14 (9), 1561-1572 (2023).
  32. Dickstein, D. L., et al. Automatic dendritic spine quantification from confocal data with Neurolucida 360. Curr Protoc Neurosci. 77, 1-21 (2016).
  33. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. (65), e3564 (2012).
  34. Parajuli, L. K., Koike, M. Three-dimensional structure of dendritic spines revealed by volume electron microscopy techniques. Front Neuroanat. 15, 627368 (2021).
  35. Ferreira, J. S., et al. Distance-dependent regulation of NMDAR nanoscale organization along hippocampal neuron dendrites. Proc Natl Acad Sci U S A. 117 (39), 24526-24533 (2020).
  36. Megias, M., Emri, Z. s., Freund, T. F., Gulyas, A. I. Total number and distribution of inhibitory and excitatory synapses on hippocampal ca1 pyramidal cells. Neurosciences. 102 (3), 527-540 (2001).
  37. Katz, Y., et al. Synapse distribution suggests a two-stage model of dendritic integration in ca1 pyramidal neurons. Neuron. 63 (2), 171-177 (2009).
  38. Bourne, J., Harris, K. M. Do thin spines learn to be mushroom spines that remember. Curr Opin Neurobiol. 17 (3), 381-386 (2007).
  39. Runge, K., Cardoso, C., De Chevigny, A. Dendritic spine plasticity: Function and mechanisms. Front Synaptic Neurosci. 12, 36 (2020).
  40. Tonnesen, J., Katona, G., Rozsa, B., Nagerl, U. V. Spine neck plasticity regulates compartmentalization of synapses. Nat Neurosci. 17 (5), 678-685 (2014).
  41. Mattila, P. K., Lappalainen, P. Filopodia: Molecular architecture and cellular functions. Nat Rev Mol Cell Biol. 9 (6), 446-454 (2008).
  42. Grutzendler, J., Kasthuri, N., Gan, W. Long-term dendritic spine stability in the adult cortex. Nature. 420 (6917), 812-816 (2002).

Play Video

Citer Cet Article
Keary III, K. M., Sojka, E., Gonzalez, M., Li, Z. Dendritic Spine Quantification Using an Automatic Three-Dimensional Neuron Reconstruction Software. J. Vis. Exp. (211), e66493, doi: (2024).

View Video