Summary

Generation af inducerede neurale stamceller fra perifere mononukleære celler og differentiering mod dopaminerge neuron-prækursorer til transplantations studier

Published: July 11, 2019
doi:

Summary

Protokollen præsenterer omprogrammering af mononukleære celler i perifert blod for at inducere neurale stamceller ved Sendai-virus infektion, differentiering af iNSCs i dopaminerge neuroner, transplantation af DA-prækursorer til den ensidigt læsionerede Parkinsons sygdom-musemodeller og evaluering af sikkerheden og effekten af iNSC-afledte DA-prækursorer til PD-behandling.

Abstract

Parkinsons sygdom (PD) er forårsaget af degeneration af dopaminerge (DA) neuroner på substantia nigra pars Compacta (SNpc) i ventrale mesencephalon (VM). Celle substitutionsterapi har stor løfte om behandling af PD. for nylig er inducerede neurale stamceller (iNSCs) dukket op som en potentiel kandidat til celle substitutionsbehandling på grund af den reducerede risiko for tumordannelse og plasticiteten til at give anledning til Regionspecifikke neuroner og glia. iNSCs kan omprogrammeres fra autologt somatiske cellulære kilder, såsom fibroblaster, mononukleære celler i perifert blod (PBMNCs) og forskellige andre typer celler. Sammenlignet med andre typer af somatiske celler, PBMNCs er en tiltalende starter celletype på grund af den lethed at få adgang til og udvide i kulturen. Sendai virus (SeV), en RNA ikke-Integrativ virus, kodning omprogrammering faktorer, herunder Human OCT3/4, SOX2, KLF4 og c-MYC, har en negativ-Sense, enkelt-strandede, ikke-segmenteret genom, der ikke integreres i Host Genome, men kun replikater i cytoplasmaet af inficerede celler, der tilbyder et effektivt og sikkert køretøj til omprogrammering. I denne undersøgelse beskriver vi en protokol, hvor iNSCs opnås ved at omprogrammere PBMNCs, og differentieret til specialiserede VM DA neuroner ved en totrins metode. Så DA prækursorer er transplanteres i ensidigt 6-hyroxydopamin (6-OHDA)-lesioned PD musemodeller til at evaluere sikkerheden og effekten for behandling af PD. Denne metode giver en platform til at undersøge de funktioner og terapeutiske virkninger af patientspecifikke DA neurale celler in vitro og in vivo.

Introduction

Parkinsons sygdom (PD) er en almindelig neurodegenerativ lidelse, forårsaget af degeneration af dopaminerge (DA) neuroner på substantia nigra pars Compacta (SNpc) i ventrale mesencephalon (VM), med en prævalens på mere end 1% i populationen over 60 år 1 , 2. i løbet af det seneste årti, celleterapi, der har til formål enten at erstatte de degenerative eller beskadigede celler, eller nærende mikromiljø omkring degenererede neuroner, har vist potentiale i behandling af PD3. I mellemtiden har omprogrammering teknologi gjort betydelige fremskridt4, som giver en lovende cellulære kilde til substitutionsterapi. Humane inducerede pluripotente stamceller (iPSCs) og embryonale stamceller (ESCs) har vist sig at være i stand til at differentiere sig i DA neurale celler, som kunne overleve, modnes, og forbedre motoriske funktioner, når podet i rotte og ikke-humane primat PD modeller5 ,6,7,8. iPSCs repræsenterer en milepæl i cellulære omprogrammering teknologier og har et stort potentiale i celletransplantation; Men, der er stadig en bekymring over risikoen for tumordannelse fra ufuldstændigt differentierede celler. En alternativ cellulær kilde til celletransplantation er Lineage-forpligtede voksne stamceller opnået gennem direkte omprogrammering, såsom inducerede neurale stamceller (iNSCs), som kan udledes af de ustabile mellemprodukter, uden om pluripotens etape9,10,11.

Både ipscs og inscs kan omprogrammeres fra autologt cellulære kilder, såsom fibroblaster, mononukleære celler i perifert blod (pbmncs) og forskellige andre typer af celler12,13,14, hvilket reducerer immunogenicitet af transplanterede celler i stor grad. Desuden, sammenlignet med iPSCs, iNSCs er iboende med reduceret risiko for tumordannelse og Lineage-engageret plasticitet, kun i stand til at skelne til neuroner og glia11. I de indledende undersøgelser, humane eller mus ipscs og inscs blev genereret fra fibroblaster opnået fra hudbiopsier, som er en invasiv procedure14,15. Med denne respekt, PBMNCs er en tiltalende starter celle kilde på grund af den mindre invasive prøvetagning proces, og den lethed at opnå et stort antal celler inden for en kort periode med ekspansion tid16. Indledende omprogrammering undersøgelser ansat Integrative levering systemer, såsom lentiviral eller antiretroviral vektorer, som er effektive og nemme at implementere i mange typer af celler17; disse leveringssystemer kan dog forårsage mutationer og reaktivering af rest transgener, som frembyder sikkerhedsproblemer til kliniske terapeutiske formål12. Sendai virus (SeV) er en ikke-Integrativ RNA-virus med en negativ fornuft, enkelt-strandede genom, der ikke integreres i Host genom, men kun replikater i cytoplasmaet af inficerede celler, tilbyder et effektivt og sikkert køretøj til omprogrammering18 ,19. Rekombinant SeV vektorer er tilgængelige, der indeholder omprogrammering faktorer, herunder Human OCT3/4, SOX2, KLF4 og c-MYC i deres åbne læse rammer. Desuden kan de virale vektorer forbedres yderligere ved at indføre temperaturfølsomme mutationer, så de hurtigt kan fjernes, når dyrknings temperaturen hæves til 39 °C20. I denne artikel beskriver vi en protokol til at omprogrammere PBMNCs til iNSCs ved hjælp af SeV-systemet.

Mange undersøgelser har rapporteret afberegning af da neuroner fra humane esc’er eller ipscs ved hjælp af forskellige metoder6,8,21. Der er imidlertid mangel på protokoller, som beskriver differentieringen af DA-neuroner fra iNSCs i detaljer. I denne protokol vil vi beskrive den effektive generation af DA neuroner fra iNSCs ved hjælp af en to-trins metode. DA neuronal prækursorer kan transplanteres i striatum af PD musemodeller for sikkerhed og effektivitet evalueringer. Denne artikel vil præsentere en detaljeret protokol, der dækker forskellige stadier fra generation af induceret neurale stamceller af Sendai virus, differentiering af iNSCs ind i DA neuroner, etablering af mus PD modeller, til transplantation af DA prækursorer i striatum af PD-modellerne. Ved hjælp af denne protokol kan man generere iNSCs fra patienter og raske donorer og udlede DA neuroner, der er sikre, standardiserbare, skalerbare og homogene til celletransplantation formål, eller til modellering PD i en skål og undersøgelse af mekanismerne underliggende sygdomsudbrud og-udvikling.

Protocol

Alle procedurer skal følge retningslinjerne i den institutionelle etiske komité for human forskning. Informeret samtykke skal indhentes fra patienter eller raske frivillige før blod opsamling. Denne protokol blev godkendt af instituttets etiske komité for human forskning og blev udført i overensstemmelse med institutionens retningslinjer for pasning og anvendelse af dyr. 1. indsamling, isolering og udvidelse af Pbmn’er Samling af Pbmn’er Saml 10-20 mL …

Representative Results

Her rapporterer vi en protokol, der dækker forskellige stadier af iNSC-DA celleterapi til behandling af PD-modeller. For det første, Pbmn’er blev isoleret og udvidet, og omprogrammeret i iNSCs af SeV infektion. En skematisk gengivelse af procedurerne med PBMNC ekspansion og iNSC induktion er vist i figur 1. På dag-14, blev Pbmn’er isoleret ved hjælp af en tæthed gradient medium (tabel over materialer). Før centrifugering, blod fortyndet med PBS og tætheden gradient me…

Discussion

Her præsenterede vi en protokol, der dækkede forskellige stadier af iNSC-DA celleterapi for PD-modeller. Kritiske aspekter af denne protokol omfatter: (1) isolering og udvidelse af Pbmn’er og omprogrammering af Pbmn’er til iNSCs ved en infektion, (2) differentiering af iNSCs til DA neuroner, (3) etablering af ensidige 6-OHDA-lesioned PD-musemodeller og adfærdsmæssige vurdering og (4) celletransplantation af DA-prækursorer og adfærds vurdering.

I denne protokol omfatter den første del in…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbejdet blev støttet af følgende tilskud: stamcelle og Translation National Key Project (2016YFA0101403), National Natural Science Foundation i Kina (81661130160, 81422014, 81561138004), Beijing Municipal Natural Science Foundation (5142005), Beijing Talents Foundation (2017000021223TD03), støtteprojekt af højt niveau lærere i Beijing kommunale universiteter i perioden 13:5-årige plan (CIT & TCD20180333), Beijing Medical system højt niveau talent Award (2015-3-063), Beijing Kommunale sundhed provision fond (PXM 2018_026283_000002), Beijing 100, tusind, og 10000 talenter Fund (2018A03), Beijing kommunale administration af hospitaler klinisk medicin udvikling af særlig støtte (ZYLX201706), og Royal Society-Newton Advanced Fellowship (NA150482).

Materials

15-ml conical tube Corning 430052
1-Thioglycerol Sigma-Aldrich M6145 Toxic for inhalation and skin contact
24-well plate Corning 3337
50-ml conical tube  Corning 430828
6-OHDA Sigma-Aldrich H4381
6-well plate Corning 3516
Accutase Invitrogen A11105-01 Cell dissociation reagent
Apomorphine Sigma-Aldrich A4393
Ascorbic acid Sigma-Aldrich A92902 Toxic with skin contact 
B27 supplement  Invitrogen 17504044
BDNF Peprotech 450-02 Brain derived neurotrophic factor
Blood collection tubes containing sodium heparin BD 367871
BSA yisheng 36106es60 Fetal bovine serum
cAMP Sigma-Aldrich D0627 Dibutyryladenosine cyclic monophosphate
CellBanker 2 ZENOAQ 100ml Used as freezing medium for PBMNCs
Chemically defined lipid concentrate Invitrogen 11905031
CHIR99021 Gene Operation 04-0004
Coverslip Fisher 25*25-2
DAPI Sigma-Aldrich D8417-10mg
DAPT Sigma-Aldrich D5942
Dexamethasone Sigma-Aldrich D2915-100MG
DMEM-F12 Gibco 11330
DMEM-F12 Gibco 11320
Donkey serum Jackson 017-000-121
EPO Peprotech 100-64-50UG Human Erythropoietin
FGF8b Peprotech 100-25
Ficoll-Paque Premium GE Healthcare 17-5442-02 P=1.077, density gradient medium
GDNF Peprotech 450-10 Glial derived neurotrophic factor
GlutaMAX Invitrogen 21051024 100 × Glutamine stock solution
Ham's-F12 Gibco 11765-054
HBSS Invitrogen 14175079 Balanced salt solution
Human leukemia inhibitory factor Millpore LIF1010
Human recombinant SCF Peprotech 300-07-100UG
IGF-1 Peprotech 100-11-100UG Human insulin-like growth factor 
IL-3 Peprotech 200-03-10UG Human interleukin 3
IMDM Gibco 215056-023 Iscove's modified Dulbecco's medium
Insulin Roche  12585014
ITS-X Invitrogen 51500-056 Insulin-transferrin-selenium-X supplement
Knockout serum replacement Gibco 10828028 Serum free basal medium
Laminin Roche  11243217001
Microsyringe Hamilton 7653-01
N2 supplement  Invitrogen 17502048
NEAA Invitrogen 11140050 Non-essential amino acid
Neurobasal Gibco 10888 Basic medium
PDL Sigma-Aldrich P7280 Poly-D-lysine
SAG1 Enzo ALX-270-426-M01
SB431542 Gene Operation 04-0010-10mg Store from light at -20℃
Sendai virus Life Technologies MAN0009378
Sucrose baiaoshengke
TGFβⅢ Peprotech 100-36E Transforming growth factor  βⅢ
Transferrin R&D Systems 2914-HT-100G
Triton X 100 baiaoshengke Nonionic surfactant
Trypan blue Gibco T10282
Xylazine Sigma-Aldrich X1126

References

  1. Williams-Gray, C. H., et al. The distinct cognitive syndromes of Parkinson’s disease: 5 year follow-up of the CamPaIGN cohort. Brain. 132, 2958-2969 (2009).
  2. Dexter, D. T., Jenner, P. Parkinson disease: from pathology to molecular disease mechanisms. Free Radical Biology and Medicine. 62, 132-144 (2013).
  3. Chen, Z. Cell Therapy for Parkinson’s Disease: New Hope from Reprogramming Technologies. Aging and Disease. 6 (6), 499-503 (2015).
  4. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of Pluripotent Stem Cells from Mouse Embryonic and Adult Fibroblast Cultures by Defined Factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  5. Doi, D., et al. Isolation of human induced pluripotent stem cell-derived dopaminergic progenitors by cell sorting for successful transplantation. Stem Cell Reports. 2 (3), 337-350 (2014).
  6. Kriks, S., et al. Dopamine neurons derived from human ES cells efficiently engraft in animal models of Parkinson’s disease. Nature. 480 (7378), 547-551 (2011).
  7. Perrier, A. L., et al. Derivation of midbrain dopamine neurons from human embryonic stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (34), 12543-12548 (2004).
  8. Kikuchi, T., et al. Human iPS cell-derived dopaminergic neurons function in a primate Parkinson’s disease model. Nature. 548 (7669), 592-596 (2017).
  9. Ma, T., Xie, M., Laurent, T., Ding, S. Progress in the reprogramming of somatic cells. Circulation Research. 112 (3), 562-574 (2013).
  10. Tang, X., et al. Conversion of adult human peripheral blood mononuclear cells into induced neural stem cell by using episomal vectors. Stem Cell Research. 16 (2), 236-242 (2016).
  11. Yuan, Y., et al. Dopaminergic precursors differentiated from human blood-derived induced neural stem cells improve symptoms of a mouse Parkinson’s disease model. Theranostics. 8 (17), 4679-4694 (2018).
  12. Takahashi, K., et al. Induction of Pluripotent Stem Cells from Adult Human Fibroblasts by Defined Factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  13. Aasen, T., et al. Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes. Nature Biotechnology. 26 (11), 1276-1284 (2008).
  14. Thier, M., et al. Direct conversion of fibroblasts into stably expandable neural stem cells. Cell Stem Cell. 10 (4), 473-479 (2012).
  15. Takahashi, K., Okita, K., Nakagawa, M., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from fibroblast cultures. Nature Protocols. 2 (12), 3081-3089 (2007).
  16. Seki, T., Yuasa, S., Fukuda, K. Generation of induced pluripotent stem cells from a small amount of human peripheral blood using a combination of activated T cells and Sendai virus. Nature Protocols. 7 (4), 718-728 (2012).
  17. Bazley, F. A., et al. Direct Reprogramming of Human Primordial Germ Cells into Induced Pluripotent Stem Cells: Efficient Generation of Genetically Engineered Germ Cells. Stem Cells and Development. 24 (22), 2634-2648 (2015).
  18. Li, H. O., et al. A cytoplasmic RNA vector derived from nontransmissible Sendai virus with efficient gene transfer and expression. Journal of Virology. 74 (14), 6564-6569 (2000).
  19. Sochacki, J., Devalle, S., Reis, M., Mattos, P., Rehen, S. Generation of urine iPS cell lines from patients with Attention Deficit Hyperactivity Disorder (ADHD) using a non-integrative method. Stem Cell Research. 17 (1), 102-106 (2016).
  20. Ban, H., et al. Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (34), 14234-14239 (2011).
  21. Cho, M. S., et al. Highly efficient and large-scale generation of functional dopamine neurons from human embryonic stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (9), 3392-3397 (2008).
  22. Dowey, S. N., Huang, X., Chou, B. -. K., Ye, Z., Cheng, L. Generation of integration-free human induced pluripotent stem cells from postnatal blood mononuclear cells by plasmid vector expression. Nature Protocols. 7 (11), 2013-2021 (2012).
  23. Zhu, S., et al. Reprogramming of human primary somatic cells by OCT4 and chemical compounds. Cell Stem Cell. 7 (6), 651-655 (2010).
  24. Ono, Y., et al. Differences in neurogenic potential in floor plate cells along an anteroposterior location: midbrain dopaminergic neurons originate from mesencephalic floor plate cells. Development. 134 (17), 3213-3225 (2007).
  25. Kirkeby, A., et al. Generation of regionally specified neural progenitors and functional neurons from human embryonic stem cells under defined conditions. Cell Reports. 1 (6), 703-714 (2012).
  26. Chambers, S. M., et al. Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling. Nature Biotechnology. 27 (3), 275-280 (2009).
  27. Fasano, C. A., Chambers, S. M., Lee, G., Tomishima, M. J., Studer, L. Efficient derivation of functional floor plate tissue from human embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 6 (4), 336-347 (2010).
  28. Harvey, B. K., Wang, Y., Hoffer, B. J. Transgenic rodent models of Parkinson’s disease. Acta Neurochirurgica Supplements. 101, 89-92 (2008).
  29. Sheng, C., et al. Generation of dopaminergic neurons directly from mouse fibroblasts and fibroblast-derived neural progenitors. Cell Research. 22 (4), 769-772 (2012).
  30. Prasad, A., et al. A review of induced pluripotent stem cell, direct conversion by trans-differentiation, direct reprogramming and oligodendrocyte differentiation. Regenerative Medicine. 11 (2), 181-191 (2016).

Play Video

Citer Cet Article
Zheng, W., Chen, Z. Generation of Induced Neural Stem Cells from Peripheral Mononuclear Cells and Differentiation Toward Dopaminergic Neuron Precursors for Transplantation Studies. J. Vis. Exp. (149), e59690, doi:10.3791/59690 (2019).

View Video