Summary

마우스 기관에서 브러시 셀의 격리 및 정량 평가

Published: June 12, 2019
doi:

Summary

브러쉬 세포는 순진한 마우스 기관에서 발견되는 희귀한 해 화학 감각 상피 세포이다. 그들의 한정된 수 때문에, 기도 면제 및 리모델링에 있는 그들의 기능적인 역할의 ex vivo 평가는 도전적입니다. 우리는 유세포에 의한 기관 브러시 세포의 격리 방법을 설명합니다.

Abstract

기관 브러쉬 세포는 면역 및 신경계에 기도 루멘에서 신호를 전송하는 태세 해 화학 감각 상피 세포입니다. 그(것)들은 장 점막에 있는 tuft 세포, 기관에 있는 브러쉬 세포, 및 비강 점막에 있는 고독한 화학 감각 및 microvillous 세포를 포함하는 화학 감각 상피 세포의 가족의 일부입니다. 상피 구획에 있는 화학 감각 세포는 중요한 세포 내 마커 및 핵심 전사 서명을 공유합니다, 그러나 또한 중요한 전사 이질성을 표시합니다, 현지 조직 환경의 가능성이 반사. 단세포 현탁액에서 기관 브러쉬 세포의 격리는 이 희소한 상피 세포의 기능을 상세히 정의하는 데 필요하지만, 기관 브러시 세포와 신경 종말 사이의 밀접한 상호 작용으로 인해 이들의 격리가 어려울 수 있습니다. 또는 단단하고 접합부의 기도 특정 조성으로 인해. 여기서, 우리는 마우스 기관 상피로부터 브러시 세포의 분리를 위한 절차를 기술한다. 이 방법은 점막에서 기관 상피의 초기 분리를 기반으로하여 파파인이있는 상피 시트의 후속 짧은 배양을 허용합니다. 이 절차는 실행 가능한 기관 브러시 세포의 유세포 측정 선별 및 기능 분석을위한 신속하고 편리한 솔루션을 제공합니다.

Introduction

브러쉬 세포는 미각 세포에서 발견되는 쓴 맛 수용체 및 미각 수용체 형질전환 기계의 발현을 특징으로 하는 화학 감각 상피 세포의 클래스에 속한다. 미각 세포와는 달리, 화학 감각 상피 세포는 상피 표면에 흩어져 있으며 비강 상피 1,2,기관내의 브러시 세포에서 독방 화학 감각 세포 (SCC) 및 마이크로 빌러스 세포라고합니다. 3,4,소장 5,6의터프 세포. 쓴 맛 수용체및 쓴 맛의 트랜스덕션 기계를 발현하는 상피 세포는또한 요도 7,8 및 청각 튜브9에서발견된다. 기도 브러쉬 세포는 신경 발생 및 면역 기도 반응에 있는 유일한 기능이 있습니다. 그들은 아세틸 콜린 생산 화학 감각 세포는 정족수 감지 물질10과 같은 쓴 화합물 및 세균 대사 산물로 활성화시 보호 호흡 반사를 불러 일으킨다. 기도 브러쉬 세포는 또한 기도 3에 있는 에어로알러겐 유도제 유도한 타입-2 염증을 통제하는IL-25의 지배적인 기도 상피 근원입니다.

하부 기도 브러쉬 세포의 전체 전사체의 특성및 환경 자극에 대한 이들의 반응은 기관상피의 낮은 수와 큰 기관지(10)를넘어서는 매우 제한된 수에 의해 제한되었다. 장 상피에서 화학 감각 세포의 격리에 사용되는 기술은 아마도 신경 종말10 또는 다른 기관 브러시 세포의 친밀한 접촉 때문에 기관에서 비례적으로 높은 숫자를 산출하지 않았습니다. 부착물 및 단단한 접합 단백질의 조성과 같은 호흡기 점막의 조직 별 인자. 단세포 RNA 염기서열 분석에 대한 높은 수치로 기관 브러시 세포의 성공적인 격리에 대한 최근의 보고는 파파인을 사용한 2시간 배양 또는 18시간 배양과 pronase11,12. 소화 효소를 가진 더 긴 배양은 세포 생존을 감소시키고 소화한 조직13에서세포의 전사 단면도를 바꿀 수 있기 때문에, 이것은 그밖 화학 감각 상피 인구와 비교 분석을 편향할 수 있었습니다.

여기서, 우리는 RNA 시퀀싱 3에 대한 기관 브러시 세포의격리를위한 방법을보고합니다. 고용량 디스파스로 기관을 치료하여 상피를 점막과 분리합니다. 파파인과 상피 시트의 후속 소화는이 구조 세포의 우수한 회복을 허용합니다.

Protocol

다음 실험을 수행하기 전에 모든 동물 관리 사용 및 프로토콜이 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC)의 승인을 받고 국립 연구 위원회의 “치료 및 사용 가이드”에 따라 수행되었는지 확인하십시오. 실험실 동물”(8 판, 2011) 및 도착 지침. 아래에 설명된 모든 절차는 브리검 및 여성 병원의 기관 동물 관리 및 사용 위원회에서 검토하고 승인했습니다. 1. 시약?…

Representative Results

이 절차는 RNA 시퀀싱3에대한 기관 브러시 세포를 격리하기 위해 성공적으로 구현되었습니다. 2단계 프로토콜로 조직의 기관 및 소화를 분리한 후(그림1), PI로 죽은 세포를 배제한 후 형광표지된 CD45 및 EpCAM으로 세포를 수집하고 염색하였다. 전진 및 측면 산란 특성에 따라 이중을 게이팅한 후 브러시 셀을 CD45의 낮음/음수, EpCAM에 대해 양수, eGFP에 대해 양수?…

Discussion

우리는 40 분 동안 고용량 디스파스 치료의 조합과 짧은 파파인 치료 (30 분)가 기관 소화 및 브러시 세포 격리를위한 최적의 프로토콜을 제공한다는 것을 발견했습니다. 이 조합은 광범위한 소화를 방지하고 대체 프로토콜에 비해 브러시 셀의 가장 높은 수율을 생성합니다.

조혈 세포를 추출하는 폐 소화는 콜라게나아제 IV15와같은 가벼운 소화 효소에 고전적…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

브리검 여성 인간 면역학 센터 플로우 코어의 아담 치코인(Adam Chicoine)에게 유동 세포 측정 분류에 도움을 주신 것에 대해 감사드립니다. 이 작품은 건강 보조금 R01 HL120952 (N.A.B.), R01 AI134989 (N.A.B), U19 AI095219 (N.A.B., L.G.B), 및 K08 AI132723 (L.G.B), 및 알레르기, 천식 및 면역학의 미국 아카데미 (AAAAI)/ 미국 폐 알레르기 호흡기 질환 상 (N.A.B.), AAAI 재단 교수 개발 상 (L.G.B.), 스티븐과 주디 케이 젊은 혁신상 (N.A.B.), 여성 의사 과학자의 경력 개발을위한 조이셀린 C. 오스틴 기금에 의해 (L.G.B.), 그리고 에 의해 비닉 가족(L.G.B.)의 후원금 기부.

Materials

Antibodies
Anti-GFP (Polyclonal goat Ig) Abcam cat# ab5450
APC anti-mouse CD326 (EpCAM)  (G8.8) Biolegend cat#118214
APC Rat IgG2a, k isotype control Biolegend cat#400511
DAPI Biolegend cat#422801
Donkey anti-goat IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 Life Technologies/Molecular Probes cat#A-11055
Normal Goat IgG R&D Systems cat#AB-108-C
Pacific Blue anti-mouse CD45 (30F-11) Biolegend cat#103126
Pacific Blue Rat IgG2b, k isotype control Biolegend cat#400627
TruStain FcX (anti-mouse CD16/32) Antibody Biolegend cat#101320
Chemicals, Peptides, and Recombinant Proteins
Dispase Gibco cat# 17105041 
DNase I Sigma  cat# 10104159001
HEPES-Tyrode’s Buffer Without Calcium (10 mM HEPES, 135 mM NaCl, 2.8 mM KCl, 1 mM MgCl2, 12 mM NaHCO3, 0.4 mM NaH2PO4, 0.25% BSA, 5.5 mM Glucose. Prepared in 18.2 megohms water and filtered through 0.22 µm filter Boston BioProducts cat# PY-912
Tyrode’s Solution (HEPES-Buffered) 140 mM NaCl, 5 mM KCl, 25 mM HEPES, 2 mM CaCl2, 2 mM MgCl2 and 10 mM glucose. Prepared in 18.2 megohms water and filtered through 0.22 µm filter. ) Boston BioProducts cat# BSS-355
L-Cysteine Sigma cat# C7352
Leupeptin trifluoroacetate salt Sigma cat# L2023
Papain from papaya latex Sigma cat# P3125
Propidium iodide  Sigma cat# P4170
Experimental Models: Organisms/Strains
ChATBAC-eGFP (B6.Cg-Tg(RP23-268L19-EGFP)2Mik/J) The Jackson Laboratory 7902
Equipment
LSM 800 with Airyscan confocal system on a Zeiss Axio Observer Z1 Inverted Microscope Zeiss
LSRFortessa BD 647465
Disposable equipment
1.5 mL sterile tubes Thomas Scientific 1157C86
5 mL Poysterene Round-bottom Tube, 12 x 75 mm style Falcon 14-959-1A
50 mL Polypropylene conical tube, 30 x 115 mm style Falcon 352098
Feather Disposable Scalpel no.12 Fisher Scientific NC9999403
Petri dish, 100 x 15 mm Style Falcon 351029
Sterile cell strainer, 100 μm Fisherbrand cat#22363549

References

  1. Tizzano, M., et al. Nasal chemosensory cells use bitter taste signaling to detect irritants and bacterial signals. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (7), 3210-3215 (2010).
  2. Genovese, F., Tizzano, M. Microvillous cells in the olfactory epithelium express elements of the solitary chemosensory cell transduction signaling cascade. PLoS One. 13 (9), 0202754 (2018).
  3. Bankova, L. G., et al. The cysteinyl leukotriene 3 receptor regulates expansion of IL-25-producing airway brush cells leading to type 2 inflammation. Science Immunology. 3 (28), (2018).
  4. Krasteva, G., Canning, B. J., Papadakis, T., Kummer, W. Cholinergic brush cells in the trachea mediate respiratory responses to quorum sensing molecules. Life Sciences. 91 (21-22), 992-996 (2012).
  5. Nadjsombati, M. S., et al. Detection of Succinate by Intestinal Tuft Cells Triggers a Type 2 Innate Immune Circuit. Immunity. 49 (1), 33-41 (2018).
  6. von Moltke, J., Ji, M., Liang, H. E., Locksley, R. M. Tuft-cell-derived IL-25 regulates an intestinal ILC2-epithelial response circuit. Nature. 529 (7585), 221-225 (2016).
  7. Deckmann, K., et al. Bitter triggers acetylcholine release from polymodal urethral chemosensory cells and bladder reflexes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (22), 8287-8292 (2014).
  8. Liu, S., et al. Members of Bitter Taste Receptor Cluster Tas2r143/Tas2r135/Tas2r126 Are Expressed in the Epithelium of Murine Airways and Other Non-gustatory Tissues. Frontiers in Physiology. 8, 849 (2017).
  9. Krasteva, G., et al. Cholinergic chemosensory cells in the auditory tube. Histochemistry and Cell Biology. 137 (4), 483-497 (2012).
  10. Krasteva, G., et al. Cholinergic chemosensory cells in the trachea regulate breathing. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (23), 9478-9483 (2011).
  11. Montoro, D. T., et al. A revised airway epithelial hierarchy includes CFTR-expressing ionocytes. Nature. 560 (7718), 319-324 (2018).
  12. Plasschaert, L. W., et al. A single-cell atlas of the airway epithelium reveals the CFTR-rich pulmonary ionocyte. Nature. 560 (7718), 377-381 (2018).
  13. Dwyer, D. F., Barrett, N. A., Austen, K. F. Immunological Genome Project, C. Expression profiling of constitutive mast cells reveals a unique identity within the immune system. Nature Immunology. 17 (7), 878-887 (2016).
  14. Howitt, M. R., et al. Tuft cells, taste-chemosensory cells, orchestrate parasite type 2 immunity in the gut. Science. 351 (6279), 1329-1333 (2016).
  15. Bankova, L. G., Dwyer, D. F., Liu, A. Y., Austen, K. F., Gurish, M. F. Maturation of mast cell progenitors to mucosal mast cells during allergic pulmonary inflammation in mice. Mucosal Immunology. 8 (3), 596-606 (2015).
  16. Rock, J. R., et al. Basal cells as stem cells of the mouse trachea and human airway epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (31), 12771-12775 (2009).
  17. Rock, J. R., et al. Multiple stromal populations contribute to pulmonary fibrosis without evidence for epithelial to mesenchymal transition. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (52), 1475-1483 (2011).
  18. Gerbe, F., et al. Intestinal epithelial tuft cells initiate type 2 mucosal immunity to helminth parasites. Nature. 529 (7585), 226-230 (2016).
  19. Rock, J. R., et al. Transmembrane protein 16A (TMEM16A) is a Ca2+-regulated Cl- secretory channel in mouse airways. Journal of Biological Chemistry. 284 (22), 14875-14880 (2009).
  20. Olsen, J. V., Ong, S. E., Mann, M. Trypsin cleaves exclusively C-terminal to arginine and lysine residues. Molecular and Cellular Proteomics. 3 (6), 608-614 (2004).
  21. Verma, S., Dixit, R., Pandey, K. C. Cysteine Proteases: Modes of Activation and Future Prospects as Pharmacological Targets. Frontiers in Pharmacology. 7, 107 (2016).
  22. Huettner, J. E., Baughman, R. W. Primary culture of identified neurons from the visual cortex of postnatal rats. Journal of Neuroscience. 6 (10), 3044-3060 (1986).
  23. Kaiser, O., et al. Dissociated neurons and glial cells derived from rat inferior colliculi after digestion with papain. PLoS One. 8 (12), 80490 (2013).
  24. Aoyagi, T., Takeuchi, T., Matsuzaki, A., Kawamura, K., Kondo, S. Leupeptins, new protease inhibitors from Actinomycetes. Journal of Antibiotics (Tokyo). 22 (6), 283-286 (1969).
  25. Kohanski, M. A., et al. Solitary chemosensory cells are a primary epithelial source of IL-25 in patients with chronic rhinosinusitis with nasal polyps. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 142 (2), 460-469 (2018).
  26. Patel, N. N., et al. Solitary chemosensory cells producing interleukin-25 and group-2 innate lymphoid cells are enriched in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. International Forum of Allergy & Rhinology. , (2018).
  27. Kouzaki, H., O’Grady, S. M., Lawrence, C. B., Kita, H. Proteases induce production of thymic stromal lymphopoietin by airway epithelial cells through protease-activated receptor-2. The Journal of Immunology. 183 (2), 1427-1434 (2009).
  28. Cambier, J. C., Vitetta, E. S., Kettman, J. R., Wetzel, G. M., Uhr, J. W. B-cell tolerance. III. Effect of papain-mediated cleavage of cell surface IgD on tolerance susceptibility of murine B cells. The Journal of Experimental Medicine. 146 (1), 107-117 (1977).
  29. Nishikado, H., et al. Cysteine protease antigens cleave CD123, the alpha subunit of murine IL-3 receptor, on basophils and suppress IL-3-mediated basophil expansion. Biochemical and Biophysical Research Communications. 460 (2), 261-266 (2015).

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Citer Cet Article
Ualiyeva, S., Yoshimoto, E., Barrett, N. A., Bankova, L. G. Isolation and Quantitative Evaluation of Brush Cells from Mouse Tracheas. J. Vis. Exp. (148), e59496, doi:10.3791/59496 (2019).

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