Summary

センサー蛍光蛋白質生きているセルおよびバルク量を定量化する方法

Published: January 07, 2019
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Summary

遺伝的結合スペクトルの光活性化・蛍光タンパク質を含むプロトコルを紹介します。これらの蛍光タンパク質のキメラは photoactivation 効率すなわち、蛍光、するセンサーは、PA FP 端数の数量を許可します。プロトコルでは、光の異なるモードが異なる光効率をもたらすことを明らかにします。

Abstract

光活性化・転換蛍光タンパク質 (PA FPs) は、細胞やタンパク質のアンサンブルのダイナミクスを分析するため生細胞の蛍光顕微鏡に使用されています。これまでのところ、方法がない一括で定量化されているし、ライブで PA FPs の数を表明した細胞が蛍光を発するにセンサー。

ここでは、内部の支配者を含むプロトコルを提案する、すなわち、遺伝子 ratiometrically に異なるスペクトル (活性型) 蛍光蛋白質を結合するをオンにセルで表されるすべての PA-FPs の割合を数値化蛍光。Photoactivation の異なるモードが異なる光効率を得られたことを示すこのプロトコルを使用して、.共焦点レーザー走査顕微鏡 (CLSM) で短いハイパワー光と CLSM で適用される低レベルの曝露や広視野照明によって適用される短パルスの数百人よりも 4 倍低い光効率までなりました。プロトコルは GFP (PA-) と (PA-) 桜のここで例示していて、間それ原則的に適用できます任意のスペクトルの異なる活性型または蛍光蛍光タンパク質ペアとすべての実験の設定。

Introduction

2002 年に、最初に広く適用光活性化 (PA GFP1) ・蛍光 (楓2) 蛍光タンパク質が記述されていた。これら光蛍光蛍光タンパク質 UV 光、すなわち照射時にそのスペクトル特性を変更彼らが明るいになる (活性型蛍光蛋白質、すなわち、 PA FPs)、または (蛍光色を変更します。FPs)。日には、いくつか可逆・不可逆的な光活性化・光変換蛍光蛋白質は開発3,4をされています。アンサンブルや一括学全体の細胞やタンパク質のダイナミクスと細胞内コンパートメントの接続を勉強する光蛍光ペンを使用されています。さらに、単一分子光蛍光ペンを有効に基づく超解像イメージング技術のパーム5 FPALM6などです。

中に、写真化学処理が photoactivation の前後には、photoactivation または変換には多くの光の蛍光ペンとも結晶構造について記載されている/- 変換を行われているご利用いただけます7,8、光変換の基になる写真物理機構が完全に理解されていません。さらに、これまでだけ粗見積もり存在の photoactivation、変換の効率は、つまり蛍光タンパク質の割合実際に photoconverted または蛍光するセンサー。吸収スペクトルとネイティブの量の変化を定量化し、ゲル9,10,11にタンパク質を活性化、アンサンブルin vitro研究が報告されています。

ここでは、蛍光タンパク質センサー蛍光タンパク質一括と生きている細胞の割合を評価するためにキメラを含むプロトコルを提案する.遺伝子符号化された蛍光蛋白質を使用、必ずタンパク質の絶対量は細胞から細胞への変化し、は知られています。PA FP を表現する 1 つのセルは他のセルよりも光後明るい信号を示している場合、この明るい信号 PA FP の高い表現や PA FP のより効率的な photoactivation のためが場合区別することはできません。細胞で発現レベルを標準化するには、遺伝子結合スペクトルの異なる蛍光蛋白質の内部支配者を紹介します。カップリング、スペクトルの異なる常に蛍光蛋白質、内部支配者活性型蛍光タンパク質の遺伝情報が作成されますが、まだ表現される未知の合計量ですが固定かつ知られている相対的な量1:1. この方法により別紫外線 photoactivation のスキーム、すなわち定量化の photoactivation、異なるモードでセンサーをすることができます、それによって許可 PA FPs の相対的な量の評価他の人よりも効果的 photoactivation スキームを定義します。さらに、この戦略は、原則として、センサー PA FP の端数の絶対定量評価をできます。このためには、実現するために提示されたアンサンブル研究強度に基づくこのプロトコルより複雑な解析になる重要です。蛍光強度、すなわち、別の分子の明るさ、吸光度発光スペクトルとフレットの効果を決定するパラメーターは、異なる蛍光タンパク質の蛍光強度を比較するときに考慮する必要があります。

光効率の提示のレシオ メトリック強烈さベース定量化 PA GFP および生きているセルの PA 桜の例示しますが、原則として広く適用といずれかに任意の活性型蛍光タンパク質に使用できます。実験の条件。

Protocol

1. プラスミド構築 2 色のフュージョン プローブを生成します。哺乳動物細胞発現ベクターを使用 (材料の表を参照) を mCherry112と PA mCherry113制限に挿入されているサイトの上井とBsrGI 。 EGFP と A206K の突然変異、すなわちmEGFP、 SalI 病原フラグメントとして停止コドンせず PA mEGFP14を含む…

Representative Results

ここで提示されたプロトコルは、センサー蛍光する蛍光タンパク質の分画のレシオ メトリック定量化を示しています (図 1)。この画分は、光のモードによって異なります。 共焦点レーザー走査顕微鏡 (CLSM) で短時間高出力の photoactivation を使用して典型的な結果を図 2 cに示しま…

Discussion

これまでのところ、PA-FPs の生きている細胞に発現する蛍光センサーである分数を一括で確認する方法は存在しません。提案するプロトコルは、任意の波長の異なる蛍光タンパク質ペアに対して使用できます。PA FPs PA GFP と PA 桜の不可逆的にここで代表される、このアプローチは、蛍光タンパク質を同様に適用可能な原則です。しかし、波長の異なる蛍光タンパク質はことを考えると光変換蛍…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我々 はこのプロジェクトの設備やスペースを提供するため Dorigo 研究所、スタンフォード大学医学部で神経イメージング サービスを感謝したいです。

Materials

pEGFP-N1 mammalian cell expression vector Clontech
DMEM w/o phenol red Thermo Fisher Scientific 11054020
Trypsin w/o phenol red Thermo Fisher Scientific 15400054
L-Glutamine (200 mM) Thermo Fisher Scientific 25030081
HEPES Thermo Fisher Scientific 15630080
LabTek 8-well chambers #1.0 Thermo Fisher Scientific 12565470
Fugene 6 Promega E2691

References

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Citer Cet Article
Chen, V., Renz, M. How to Quantify the Fraction of Photoactivated Fluorescent Proteins in Bulk and in Live Cells. J. Vis. Exp. (143), e58588, doi:10.3791/58588 (2019).

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