Summary

Levator Auris Longus 포유류 신경 근육 학 전송 전압 클램프 조건에서의 시험을 위한 준비

Published: May 05, 2018
doi:

Summary

이 문서에 설명 된 프로토콜 neuromuscular 접속점에 자발적인 기록 마우스 levator auris longus (LAL) 근육 및 신경 갖는 postsynaptic 잠재력 (전류 클램프)과 전류 (전압 클램프)를 사용 합니다. 이 기술 사용 하 여 정상과 질병 조건 하에서 시 냅 시스 전송의 기계 장치에 중요 한 통찰력을 제공할 수 있습니다.

Abstract

이 프로토콜 전류 클램프 및 클램프 전압 조건 하에서 신경 근육 학 교차로에서 기록 시 냅 스 전송 하는 기법을 설명합니다. Levator auris longus (LAL)의 비보 전 준비 때문에 모터 종판에서 합 문 microelectrode에 대 한 신경 근육 접합의 쉽게 시각화를 제공 하는 얇은 근육 사용 됩니다. 이 메서드는 자발적인 미니어처 종판 전위와 전류 (mEPPs 및 mEPCs), 신경 갖는 종판 잠재력 및 전류 (엡 스와 Epc)의 기록 뿐만 아니라 모터 종판 막 속성에 대 한 수 있습니다. 이 방법에서 얻은 결과 quantal 콘텐츠 (QC), 소포 자료 사이트 (n)의 수, 확률의 소포 자료 (p확인해), 시 냅 스 촉진 및 우울증, 근육 막 시간 상수 (τ 포함 m) 및 입력 저항. 인간 질병의 마우스 모델에이 기술 적용 질병 상태에 주요 병 리를 강조 하 고 새로운 치료 전략을 확인할 수 있습니다. 완전히 전압 클램핑 단일 시 냅 스에 의해이 제공 합니다 현재 사용할 수 있는 시 냅 시스 전송의 가장 상세한 분석의 하나.

Introduction

신경 근육 학 교차로에서 시 냅 스 전송 공부 신경 및 골격 근육 시스템의 동적 관계에 통찰력을 제공 하 고 시 냅 스 생리학을 조사 하기 위한 우수한 모델입니다. Levator auris longus (LAL)은 얇은 근육, 쉽게 시각화에 신경 근육 접합부에 대 한 허용. 이전 보고서는 랄을 사용 하 여 시 냅 스 약물과 독 소를 검사 하 고 랄1,2의 골격 근육 섬유 유형 특성을 특징 하 편의 설명 했습니다. 수많은 연구는 신경 근육 학 생리학3,,45,6,7,8을 검사 하는 랄을 사용 했습니다. 전기 생리학, 랄 신경 근육 접합을 쉽게 관찰 하는 능력 모터 종판에 microelectrodes의 정확한 배치에 대 한 수 및 시 냅 스 전송 기록에 공간 클램프 문제를 크게 감소 시킨다. 전류 클램프 녹음 근육 막 속성 막 시간 상수 (τm) 및 (R에서) 입력된 저항 등의 쉽게 얻을 수 있습니다. 또한, 이러한 속성은 신경 근육 학 전송, 시 냅 스 기능 근육 막 속성의 직접적인 비교에 대 한 수를 기록 하는 데 사용 하는 동일한 근육 섬유에서 측정할 수 있습니다. 이러한 데이터의 분석의 많은 신경 근육 학 질병 및 변경 된 활동의 상태 물리적 메커니즘에 중요 한 통찰력을 제공할 수 있습니다.

여기에 설명 된 기술의 핵심 요소는 비선형 전류 클램프에 적용 되지 않습니다 하 고 근육 막 속성의 독립은 시 냅 스 녹음에 대 한 전압 클램프의 사용 이다. 전류 클램프 반대 전압 클램프를 사용 하 여 신경 근육 학 전송 검사의 장점은 개척 1950 년대9에서 노력에 의해 설립 되었다. 전류 클램프에서 진폭에서 10-15 mV를 초과 하는 EPPs mEPP 진폭9의 선형 제품 않습니다. 예를 들어, 평균 mEPP 1 mV, 5의 EPP mV 5 mEPPs 5 (QC);의 제품으로 간주 수 있습니다 반면, 40의 EPP mV 이상의 40 mEPPs의 제품 될 것입니다. 이 비선형 큰 EPPs에 막 잠재력과 아 세 틸 콜린 수용 체에 대 한 평형 잠재력의 차이 EPP에 대 한 강제 운전 때문에 발생 (~-10 mV), 실질적으로 큰 EPPs는 동안 감소. 근육 막 잠재력 전압 클램프 실험 기간 동안 변경 되지 않습니다 때문에이 문제는 전압 클램프 실험에서 피할 수 있습니다. 결점은 전압 클램프 실험은 전류 클램프 녹음 보다 완료 하는 데 기술적으로 어렵습니다. 이 염두에서에 두고, McLachlan와 마틴 엡 스10의 전류 클램프 녹음에서 비선형 차지 간단 수학 교정 개발. 수정11,,1213, 잘 작동 하지만 중요 한 것은, 근육 막 속성 방해 하지는 가정.

근육 막 속성은 특히 공부 하는 조건 또는 질병 상태는 근육을 방해 하는 경우를 고려 하는 것이 중요 합니다. 예를 들어, Huntington의 질병의 R6/2 유전자 변형 모델에서 골격 근육 휴식 염화 칼륨 전류14,15에서 hyperexcitable 진보적인 감소 때문입니다. 결과적으로, mEPPs와 엡 스 R6/2 골격 근육에서 증폭 됩니다. 물론, 추가 요소는 mEPPs와 엡 스를 변경할 수 있습니다. 올 무-단백질8관련이 있을 듯 EPPs에 변화를 발견 Huntington의 질병 쥐는 (R6/1)의 다른 모델을 사용. 변경 된 신경 근육 학 전송을 일으키는 메커니즘을 평가 하는 전압 클램프를 사용 하 여 변경 된 근육 막 속성의 영향을 제거 도움이 것입니다. 최근 연구에서 R6/2 신경 근육 학 전송 여기 설명 된 기술을 사용 하 여 두 전류 및 전압 클램프 조건에서 연구 했다. 모터 종판 전체 종판16의 길이 상수 내에서 두 개의 microelectrodes를 배치 하 여 전압 고정으로 적은 1% 오류 보다 했다. 그것은 그 전압 클램프를 표시 했다 고 나왔고 R6/2 근육에 신경 근육 학 전송의 대조 측정 전류 클램프 레코드 수정. 이 근육 막 속성 변경 하는 경우 비선형에 대 한 엡 스를 해결 하는 것이 어려울 수 있습니다 강조 하 고 근육 막 속성의 독립적인 전압 클램프 레코드의 혜택을 보여줍니다. 여기에 소개 하는 프로토콜은 조건 또는 시 냅 스 전송 및 postsynaptic 막 속성에 영향을 주는 질병 상태를 검사 합니다.

Protocol

동물 관리 및 사용 위원회의 라이트 주립 대학 모든 동물 절차 수행 했다. 1. 마우스 안락사 증기 두건에서 마비 챔버는 밀폐 유리에 마우스를 놓습니다. 마우스 isoflurane (포화, 또는 25%)의 치명적인 복용량을 흡입을 통해 노출 합니다. 아니 호흡 관찰 될 수 있다 때까지 챔버에 마우스를 둡니다. 상공에서 마우스를 제거 하 고 안락사의 보조 방법으로 자 ?…

Representative Results

그림 8 12 주 된 야생 타입 R6/2 마우스에서에서 현재 펄스 (그림 8A)와 전류 클램프 아래 한 LAL 섬유에서 전압 응답 (그림 8B)의 예가 나와 있습니다. MEPPs의이 레코드 모터 종판에서 찍은 나타냅니다. 레코드는 정상적인 생리 염 분 해결책에서 얻은 했다. 이러한 전류 클램프 레코드 R에 그리고 τm</…

Discussion

여기에 설명 된 준비 및 신경 근육 학 전송 전류 또는 전압 클램프 조건 하에서 측정에 대 한 마우스 랄 근육의 사용 이다. 랄 개 해 부에 대 한 고려해 야 할 몇 가지 중요 한 포인트가 있다. 전극으로 전극 합 문 근육 에이즈에서 초과 결합 조직 청소 때 합 문에 대 한 위치 결합 조직 퍼 가기 수 있습니다. 그러나, 멀리 취할 수 있는 결합 조직 제거 쉽게 근육 손상의 기회를 제한 하기. 그것은 매우 ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리 감사 닥터 마크 M. 부자와 다니엘 미 란다 편집 의견, 아마 드 Khedraki이 기술, 그리고 라이트 주립 대학 재정 지원 (A.A.V. 시작 기금)에 대 한 설정 도움.

Materials

Olympus Compound Microscope Olympus BX51WI
10x Objective Olympus UMPLFLN10XW
40x Objective Olympus LUMPLFLN40XW
Borosilicate Glass Sutter Instruments BF150-86-7.5
CCD Camera Santa Barbara Instruments Group ST-7XMEI
Axoclamp 900A Amplifier Molecular Devices 2500‐0179  
Mater-9 Pulse Generator AMPI
Iso-flex Stimulus Isolator AMPI
pCLAMP 10 Data Acquisition and Analysis Software Molecular Devices 1-2500-0180
Concentric Bipolar Electrode FHC CBDSH75
Ball-joint Manipulator Narishige 
Non-metalic Syringes 34 Gauge World Precision Instruments MF34G-5
Nikon Stereomicroscope Nikon SMZ800N
No. 5 Forceps Fine Science Tools
Spring Scissors Fine Science Tools 15006-09
No. 2 Forceps Roboz RS-5Q41
Microdissecting Scissors Roboz RS-5912SC
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Dow Corning 2404019862
Hair Removal Cream Nair
Grass SD9 Stimulator Grass Medical
Model P-1000 Micropipette Puller Sutter Instruments P-1000
Axon Digidata 1550 Low-noise Data Acuisition System Molecular Devices
Low Pass Bessell Filter Warner Instrument Corp. LPF-8
Left-handed Micromanipulator Siskiyou Corp. MX1641/45DL
Right-handed Micromanipulator Siskiyou Corp. MX1641/45DR
Single Motion Controler Siskiyou Corp. MC100e
Crossed Roller Micromanipulator Siskiyou Corp. MX1641R This was added to the Z-axis of the Left and Right-handed micromanipulators to allow the z axis to be motorized. This custom set-up is cheaper and less bulky than buying a 4-axis motorized micromanipulator. It also allows us to control both micromanipulators with one controller
All chemicals were orded from Fisher except,
BTS Toronto Research Chemicals B315190
CTX Alomone Labs C-270
4-Di-2-Asp Molecular Probes Molecular probes is no longer a company. Now ordered through Fisher

References

  1. Angaut-Petit, D., Molgo, J., Connold, A. L., Faille, L. The levator auris longus muscle of the mouse: a convenient preparation for studies of short- and long-term presynaptic effects of drugs or toxins. Neurosci Lett. 82 (1), 83-88 (1987).
  2. Erzen, I., Cvetko, E., Obreza, S., Angaut-Petit, D. Fiber types in the mouse levator auris longus muscle: a convenient preparation to study muscle and nerve plasticity. J Neurosci Res. 59 (5), 692-697 (2000).
  3. Bertone, N. I., et al. Carbonic anhydrase inhibitor acetazolamide shifts synaptic vesicle recycling to a fast mode at the mouse neuromuscular junction. Synapse. , (2017).
  4. Garcia-Chacon, L. E., Nguyen, K. T., David, G., Barrett, E. F. Extrusion of Ca2+ from mouse motor terminal mitochondria via a Na+-Ca2+ exchanger increases post-tetanic evoked release. J Physiol. 574 (Pt 3), 663-675 (2006).
  5. Murray, L. M., et al. Selective vulnerability of motor neurons and dissociation of pre- and post-synaptic pathology at the neuromuscular junction in mouse models of spinal muscular atrophy. Hum Mol Genet. 17 (7), 949-962 (2008).
  6. Nadal, L., et al. Presynaptic muscarinic acetylcholine autoreceptors (M1, M2 and M4 subtypes), adenosine receptors (A1 and A2A) and tropomyosin-related kinase B receptor (TrkB) modulate the developmental synapse elimination process at the neuromuscular junction. Mol Brain. 9 (1), 67 (2016).
  7. Rousse, I., St-Amour, A., Darabid, H., Robitaille, R. Synapse-glia interactions are governed by synaptic and intrinsic glial properties. Neurosciences. 167 (3), 621-632 (2010).
  8. Rozas, J. L., Gomez-Sanchez, L., Tomas-Zapico, C., Lucas, J. J., Fernandez-Chacon, R. Increased neurotransmitter release at the neuromuscular junction in a mouse model of polyglutamine disease. J Neurosci. 31 (3), 1106-1113 (2011).
  9. Takeuchi, A., Takeuchi, N. Further analysis of relationship between end-plate potential and end-plate current. J Neurophysiol. 23, 397-402 (1960).
  10. McLachlan, E. M., Martin, A. R. Non linear summation of end plate potentials in the frog and mouse. The Journal of Physiology. 311 (1), 307-324 (1981).
  11. Obis, T., et al. The novel protein kinase C epsilon isoform modulates acetylcholine release in the rat neuromuscular junction. Mol Brain. 8 (1), 80 (2015).
  12. Silveira, P. E., et al. Ryanodine and inositol triphosphate receptors modulate facilitation and tetanic depression at the frog neuromuscular junction. Muscle Nerve. 52 (4), 623-630 (2015).
  13. Wood, S. J., Slater, C. R. Safety factor at the neuromuscular junction. Prog Neurobiol. 64 (4), 393-429 (2001).
  14. Miranda, D. R., et al. Progressive Cl- channel defects reveal disrupted skeletal muscle maturation in R6/2 Huntington’s mice. J Gen Physiol. 149 (1), 55-74 (2017).
  15. Waters, C. W., Varuzhanyan, G., Talmadge, R. J., Voss, A. A. Huntington disease skeletal muscle is hyperexcitable owing to chloride and potassium channel dysfunction. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (22), 9160-9165 (2013).
  16. Khedraki, A., et al. Depressed Synaptic Transmission and Reduced Vesicle Release Sites in Huntington’s Disease Neuromuscular Junctions. Journal of Neuroscience. 37 (34), 8077-8091 (2017).
  17. Greene, E. C. . The anatomy of the rat. , (1955).
  18. Magrassi, L., Purves, D., Lichtman, J. W. Fluorescent probes that stain living nerve terminals. J Neurosci. 7 (4), 1207-1214 (1987).
  19. Jack, J. J. B., Noble, D., Tsien, R. W. . Electric current flow in excitable cells. , (1983).
  20. Voss, A. A. Extracellular ATP inhibits chloride channels in mature mammalian skeletal muscle by activating P2Y(1) receptors. Journal of Physiology-London. 587 (23), 5739-5752 (2009).
  21. Albuquerque, E. X., McIsaac, R. J. Fast and slow mammalian muscles after denervation. Experimental Neurology. 26 (1), 183-202 (1970).
  22. Santafe, M. M., Urbano, F. J., Lanuza, M. A., Uchitel, O. D. Multiple types of calcium channels mediate transmitter release during functional recovery of botulinum toxin type A-poisoned mouse motor nerve terminals. Neurosciences. 95 (1), 227-234 (2000).
  23. Gaffield, M. A., Betz, W. J. Synaptic vesicle mobility in mouse motor nerve terminals with and without synapsin. J Neurosci. 27 (50), 13691-13700 (2007).
  24. Zhang, Z. S., Nguyen, K. T., Barrett, E. F., David, G. Vesicular ATPase Inserted into the Plasma Membrane of Motor Terminals by Exocytosis Alkalinizes Cytosolic pH and Facilitates Endocytosis. Neuron. 68 (6), 1097-1108 (2010).

Play Video

Citer Cet Article
Burke, S. R. A., Reed, E. J., Romer, S. H., Voss, A. A. Levator Auris Longus Preparation for Examination of Mammalian Neuromuscular Transmission Under Voltage Clamp Conditions. J. Vis. Exp. (135), e57482, doi:10.3791/57482 (2018).

View Video