Summary

用 5-Bromouridine 标记和免疫沉淀 RNA 合成的研究

Published: May 03, 2018
doi:

Summary

该方法可用于测量 RNA 的合成。5-Bromouridine 被添加到细胞中, 并纳入合成 RNA。rna 的合成是通过标记后立即提取 rna 来测量的, 其次是标记 rna 的 5 Bromouridine 靶向免疫沉淀, 并通过反向转录和定量聚合酶链反应进行分析。

Abstract

当在两种情况下比较稳态 RNA 水平时, 不可能区分变化是由生产的改变还是 RNA 的退化引起的。该协议描述了一种测量 rna 生产的方法, 使用了 rna 的 5 Bromouridine 标签, 然后是免疫沉淀, 它能够在短时间内对合成的 rna 进行调查 (例如, 1 小时).5-Bromouridine 标签和免疫沉淀在使用有毒转录抑制剂, 如α amanitin 和放线菌 D 的优点是, 在短期使用中, 对细胞的生存能力没有或非常低的影响。然而, 由于 5-Bromouridine-免疫沉淀只捕获在短标签时间内产生的 rna, 缓慢产生, 以及迅速退化的 rna 可能难以测量的方法。由 5-Bromouridine-免疫沉淀捕获的 5-Bromouridine 标记 RNA 可以通过反向转录、定量聚合酶链反应和下一代测序来分析。可以对所有类型的 RNA 进行研究, 该方法不限于本例中所示的测量 mRNA。

Introduction

5-Bromouridine (老兄) 免疫沉淀 (IP) 允许在简短的标签期间, 对细胞生理学没有或非常有限影响的细胞中 RNA 的产生进行研究 1, 2.该方法的基础是将合成苷衍生物老兄纳入新合成的 rna, 然后使用抗老兄抗体的标记 RNA 的 IP (图 1)。

几十年来, 人们已经知道蛋白质合成可以被转录调控, 转录因子的存在在50年前被推测为3。今天, 已知一些疾病是由转录和 rna 稳定性的失调引起的 (补充图 S1 在参考4), 并且测量 RNA 生产的变化的能力在了解疾病是非常重要的发展。

另一方面, 调控 RNA 生产的工具为治疗因过少或过多的蛋白质表达或诸如帕金森氏病 (PD) 等蛋白质积累而引起的疾病提供了新的可能性。由于α-synuclein 基因的增殖导致家族 pd5, synuclein 中的主要蛋白质积累为不溶性聚集体, α-synuclein 的水平与该病直接相关。此外, α synuclein 聚集在浓度依赖性的方式。下调的α synuclein mRNA 水平是一个有趣的治疗策略, 已经成功地获得了利用 RNA 干扰, 以减少神经元细胞损失的 PD 啮齿动物模型6,7

重要的是要能够测量 RNA 生产的变化引起的任何疾病或治疗干预。测量 RNA 稳态水平的艺术方法, 如反向转录和定量聚合酶链反应 (RT-qPCR), 不能区分转录调节引起的变化或改变RNA 的稳定性。一种广泛应用的 RNA 衰变率调查方法是使用诸如α amanitin 或放线菌 D 等化合物的转录机械阻断, 然后再测量衰变 rna。然而, 在细胞中转录的整体堵塞, 如诱导凋亡8,9, 也存在一些问题。除细胞毒作用之外, 转录抑制剂还存在几个技术问题, 例如 amanitin 细胞的缓慢摄取和放线菌 D 缺乏特异性 (参考文献10)。

为了避免转录的整体堵塞, 核苷酸类似物已经被使用, 如 5-乙炔苷 (5-欧盟), 4-thiouridine (4) 和老兄。这些都很容易被哺乳动物细胞吸收并纳入新合成的 rna 中, 从而在特定的时间范围内对 rna 进行脉冲标记。老兄的毒性低于 5-欧盟和 4, 使其成为首选的模拟选择11,12

老兄可以用来研究 rna 合成的速率和稳定性, 从而区分总 rna 变化的根本原因。本文将重点研究 rna 合成的测量, 并参考2 , 以了解 rna 稳定性的研究情况。为了研究 RNA 的合成, 细胞用老兄例如1 小时的简单标记, 后跟老兄-IP1 (图 1C)。这使得在短标签时间内合成的 rna 的测量和观察到的变化将比通过 qPCR 测量总 rna 的变化来更好地估计 rna 合成中的规则。然而, 应该提到的是, 即使标签时间, 例如, 只有1小时, 退化仍然可能对观察到的 RNA 水平产生影响。

老兄-IP 实验的 RNA 适用于 RT qPCR1或下一代测序2,13的下游分析。其他标准 rna 检测方法, 如北印迹或核糖核酸保护试验, 也可能适用于某些 rna。

Protocol

注: 在室温下执行所有步骤, 除非另有说明, 并在冰上或冰箱中保持缓冲 (除含有 SDS 的洗脱缓冲液)。该协议分为5个部分: RNA 样品的制备;制备用于 IP 的珠子;老兄标记 RNA 与珠子的结合;3步苯酚-苯酚/氯仿-氯仿萃取分离纯化老兄标记 RNARNA 分析 (在这个例子中使用 RT qPCR) 1. RNA 样品的制备 使用自动细胞计数器和种子350万细胞计数 HEK293T 细胞在 10 cm 培养皿10毫升生长培养基 (D…

Representative Results

我们在 AsPC-1 细胞中进行了老兄标记时间的初步测试。细胞老兄0、1、2、4.5 h, 其次为总 RNA 提取和老兄。GAS5 和 GAPDH 的老兄-IP RNA, 这表明 1 h 标签足以达到约9和44倍的变化相比, GAPDH 和 GAS5 的背景 (0 小时) 分别。 老兄和上述分析被用来研究是否在α synuclein mrna 的稳态水平上发现的类似于马球样激酶 2 (PLK-2) 抑制的变化是由 mRNA 合…

Discussion

该协议描述了使用老兄-IP 来确定 rna 生产通过标签新产生的 rna 1 小时与老兄, 然后立即 RNA 提取和免疫沉淀老兄标记 rna。此方法以前在引用16中进行了描述, 本文还包括一些附加步骤以提高 IP 特异性和 RNA 纯度, 方法是先处理低浓度老兄的珠子以及苯酚-氯仿净化步骤, 以增加 RNA 纯度跟随 IP。此外, 我们还通过比较老兄和非老兄治疗细胞中捕获的 RNA, 来展示老兄的特异性。苯酚-氯?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Lundbeck 基金会、奥胡斯大学、Dandrite 和 Lundbeck 支持这项工作。

Materials

Ribolock Rnase inhibitor ThermoFisher EO0381
Dynabeads M-280 Sheep anti-mouse IgG Life Technologies 11202D
α-Bromodeoxyuridine mouse antibody BD Bioscience 555627
Nanodrop 1000 Thermo Fisher Ultraviolet-visible spectrophotometry
Water-Saturated Phenol pH 6.6 ThermoFisher AM9712
Phenol:Chloroform:IAA 25:24:1 pH 6.6 ThermoFisher AM9732
High Pure RNA isolation Kit Roche 11828665001
High Capacity cDNA Reverse Transcription Kit ThermoFisher 4368814
Taqman Fast Advanced Master Mix ThermoFisher 4444557 qPCR Master Mix
Taqman RNA probes ThermoFisher SNCA: Hs01103383_m1, 18sRNA: Hs03928985_g1, ACTB: Hs01060665_g1, HMBS: Hs00609296, NADH: Hs01072843_m1 Flurogenic probes
7500 Fast Real-Time PCR system Applied Biosystems
HEK293T cell line ATCC
Dulbecco's Modified Eagle's Medium Lonza BE12-604F
Fetal calf serum Biochrom S0115
Penicillin/Streptomycin Biochrom A2213
Hank's buffer 5,3 mM KCl, 0.44 mM KH2PO4, 0.2 mM Na2HPO4 and 136.8 mM NaCl pH 6.77, autoclaved.
DEPC-H2O 0.1% diethylpyrocarbonate treated H2O
2xBrU-IP Buffer 40 mM Tris-HCl pH 7.5 and 500 mM NaCl in DEPC H2O
2xBrU-IP+BSA/RNAse inhibitor 2xBrU-IP buffer supplemented with 1 μg/μL BSA and 80 U/mL Ribolock
BrU-IP+ 1 mg/mL heparin 2xBrU-IP buffer diluted 1:1 DEPC-H2O and supplemented with 1mg/mL heparin
1xBrU-IP 2xBrU-IP buffer diluted 1:1 in DEPC-H2O and supplemented with 0.5 μg/μL BSA and 20 U/mL Ribolock
Elution buffer 0.1% SDS in RNAse-free H2O

References

  1. Kofoed, R. H., et al. Polo-like kinase 2 modulates α-synuclein protein levels by regulating its mRNA production. Neurobiol. Dis. 106, 49-62 (2017).
  2. Imamachi, N., et al. BRIC-seq: A genome-wide approach for determining RNA stability in mammalian cells. Methods. 67, 55-63 (2014).
  3. Jacob, F., Monod, J. Genetic regulatory mechanisms in the synthesis of proteins. J. Mol. Biol. 3, 318-356 (1961).
  4. Lee, T. I., Young, R. A. Transcriptional Regulation and its Misregulation in Disease. Cell. 152, 1237-1251 (2014).
  5. Farrer, M., et al. Comparison of kindreds with parkinsonism and α-synuclein genomic multiplications. Ann. Neurol. 55, 174-179 (2004).
  6. Khodr, C. E., Becerra, A., Han, Y., Bohn, M. C. Targeting alpha-synuclein with a microRNA-embedded silencing vector in the rat substantia nigra: Positive and negative effects. Brain Res. , 47-60 (2014).
  7. Cooper, J. M., et al. Systemic exosomal siRNA delivery reduced alpha-synuclein aggregates in brains of transgenic mice. Mov. Disord. 29, 1476-1485 (2014).
  8. Magdalan, J., et al. alpha-Amanitin induced apoptosis in primary cultured dog hepatocytes. Folia Histochem. Cytobiol. 48, 58-62 (2010).
  9. Lu, D. F., et al. Actinomycin D inhibits cell proliferations and promotes apoptosis in osteosarcoma cells. Int. J. Clin. Exp. Med. 8, 1904-1911 (2015).
  10. Bensaude, O. Inhibiting eukaryotic transcription. Which compound to choose? How to evaluate its activity?. Transcription. 2, 103-108 (2011).
  11. Tani, H., et al. . Nuclear Bodies and Noncoding RNAs. Methods in Molecular Biology. 1262, 305-320 (2015).
  12. Meneni, S., et al. 5-Alkynyl-2′-deoxyuridines: chromatography-free synthesis and cytotoxicity evaluation against human breast cancer cells. Bioorg. Med. Chem. 15, 3082-3088 (2007).
  13. Meola, N., et al. Identification of a Nuclear Exosome Decay Pathway for Processed Transcripts. Mol. Cell. 64, 520-533 (2016).
  14. Zhao, B. S., Roundtree, I. A., He, C. Post-transcriptional gene regulation by mRNA modifications. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 18, 31-42 (2016).
  15. Schrader, C., Schielke, A., Ellerbroek, L., Johne, R. PCR inhibitors – occurrence, properties and removal. J. Appl. Microbiol. 113, 1014-1026 (2012).
  16. Paulsen, M. T., et al. Use of Bru-Seq and BruChase-Seq for genome-wide assessment of the synthesis and stability of RNA. Methods. 67, 45-54 (2014).
  17. Dölken, L., et al. High-resolution gene expression profiling for simultaneous kinetic parameter analysis of RNA synthesis and decay. Rna. , 1959-1972 (2008).
  18. Raghavan, A., et al. Genome-wide analysis of mRNA decay in resting and activated primary human T lymphocytes. Nucleic Acids Res. 30, 5529-5538 (2002).
  19. Sharova, L. V., et al. Database for mRNA half-life of 19 977 genes obtained by DNA microarray analysis of pluripotent and differentiating mouse embryonic stem cells. DNA Res. 16, 45-58 (2009).
  20. Pandya-Jones, A., et al. Splicing kinetics and transcript release from the chromatin compartment limit the rate of Lipid A-induced gene expression. RNA. 19, 811-827 (2013).

Play Video

Citer Cet Article
Kofoed, R. H., Betzer, C., Lykke-Andersen, S., Molska, E., Jensen, P. H. Investigation of RNA Synthesis Using 5-Bromouridine Labelling and Immunoprecipitation. J. Vis. Exp. (135), e57056, doi:10.3791/57056 (2018).

View Video