Summary

En ny mammarfettpute-transplantasjonsteknikk for å visualisere fartøygenerering av vaskulære endotelceller

Published: August 03, 2017
doi:

Summary

Dette arbeidet demonstrerer en ny tilnærming til å vurdere spredning, differensiering og fartøydannende potensial av vaskulære endotelceller (VESCs) gjennom brystfettpute-transplantasjon etterfulgt av helfestet vevsberedning for mikroskopisk observasjon. En linjesporingsstrategi for å undersøke oppførselen til VESCs in vivo presenteres også.

Abstract

Endotelceller (EC) er de grunnleggende byggeblokkene i den vaskulære arkitekturen og formidler vaskulær vekst og remodeling for å sikre riktig karutvikling og homeostase. Imidlertid forblir studier på endotel-lineærhierarki unnvikende på grunn av mangel på verktøy for å få tilgang samt å evaluere deres oppførsel in vivo direkte . For å løse denne mangelen er det utviklet en ny vevsmodell for å studere angiogenese ved bruk av brystfettpute. Mammekirtlen utvikler seg hovedsakelig i postnatalstadier, inkludert pubertet og graviditet, i løpet av hvilken robust epitelutbredelse er ledsaget av omfattende vaskulær remodeling. Mammarfettputer gir plass, matrise og rike angiogene stimuli fra det voksende brystepitelet. Videre er brystfettputer lokalisert utenfor bukhulen, noe som gjør dem til et lett tilgjengelig podningssted for å vurdere det angiogene potensialet til eksogene celler. Dette arbeidet beskriver også en effektivitetNt-sporingstilnærming ved bruk av fluorescerende reportermus for spesifikt å merke den målrettede populasjonen av vaskulære endotelceller (VESCs) in vivo . Denne linjesporingsmetoden, kombinert med etterfølgende fullmikroskopi av vev, muliggjør direkte visualisering av målrettede celler og deres etterkommere, hvorved spredningskapasiteten kan kvantifiseres og differensieringsforpliktelsen kan være skjebnesvart. Ved bruk av disse metodene har en populasjon av bipotent protein C-reseptor (Procr) som uttrykker VESCs nylig blitt identifisert i flere vaskulære systemer. Procr + VESC, som gir opphav til både nye EC og pericytter, bidrar aktivt til angiogenese under utvikling, homeostase og skadereparasjon. Samlet beskriver dette manuskriptet en ny brystfettpudstransplantasjon og in vivo linjesporingsteknikker som kan brukes til å evaluere stamcelleegenskapene til VESCs.

Introduction

Under utvikling og homeostase skjer vaskulær vekst og remodeling trofast i samsvar med organs vekst og reparasjon. Angiogenese beskriver genereringen av nye fartøyer fra eksisterende blodkar og anses som en stor styrke som formidler disse dynamiske vaskulære endringene. Hvert blodkar er innert med et lag av endotelceller (EC), og de ser ut til å være grunnlaget for fartøyarkitekturen. I lang tid forblir mekanismen gjennom hvilken EC-bassenget fylles under homeostase, uklart, og argumenter ble hevet over hvorvidt vaskulær omsetning er et resultat av moden EC-proliferasjon eller er bidraget av vaskulær stamme / stamcelleraktivitet. På grunn av mangelen på direkte fysiologiske bevis forblir eksistensen og den cellulære identiteten til vaskulære endotelceller (VESCs) også kontroversielle.

En av de vanligste tilnærmingene som brukes til å verifisere stamcelleadferd er gjennom transplanenTasjon av formodede stamceller i mottakermus. Denne metoden måler stammen potensialet av kandidat stamceller in vivo. Transplantasjon ble først brukt på studien av knoglemarvstamceller 1 , som bidro til etableringen av de hierarkiske karakteristikkene til det hematopoietiske systemet 2 . I endotelfeltet er en basementmembranmatriksmatrise ( f.eks. Matrigel) -plugg satt subkutant under flankehuden et standard in vivo angiogenese-assay som brukes til å adressere fartøydannelsesevnen til transplanterte ECs. Flere eksperimentelle metoder, inkludert kolonidannelse i 3D-kultursystemer og transplantasjon, har foreslått potensielle EC-progenitor / VESC-populasjoner 3 , 4 , 5 , 6 . Imidlertid, siden ECs innebygd i kjellermembranmatrisen er relativt adskilt fraDet omkringliggende vevet, gir dette ikke det optimale nisjemiljøet som kreves for å fullt ut undersøke det angiogene potensialet for transplanterte celler. Som et resultat er kar som er dannet i matrikspluggen overveiende kapillærlignende og funksjonelt uimplementerbare.

Mammekirtlen utvikler seg postnatalt, med den mest robuste veksten som oppstår under pubertet og graviditet. I pubertetstadiet gjennomgår brystepitelet en rask ekspansjon, for å oppta hele brystfettpuden, ledsaget av effektiv remodeling av de omkringliggende vaskulære strukturer. Dermed gir brystkjertelen en utmerket modell for studier av angiogenese. Det gir rom, matrise og rike angiogene stimuli fra det voksende brystepitelet og er derfor et ideelt podningssted for å vurdere det angiogene potensialet til eksogene celler. I tillegg tillater brystfettpuden at de dannede eksogene karene integreres med vertscirkulasjonssystemet, hvilket muliggjør videre fUunksjonell evaluering og representerer en fordel over subkutan transplantasjon.

Selv om in vitro- dyrking og transplantasjonsanalyser er like effektiv måte å undersøke regenereringsegenskapene til en cellepopulasjon på, er det kjent at slike analyser kan stimulere plastisitet når celler tas bort fra deres native habitater, og endringer kan bli indusert når celler frakobles fra Deres fysiologiske omgivelser 7 . Derfor er oppnåelse av direkte in vivo bevis på celle skjebne nøkkelen til å fremme den nåværende forståelsen av endotel-populasjoners adferd.

Genetisk skjebne kartlegging ( dvs. in vivo lineage tracing) er viktig for identifisering av VESCs og for undersøkelse av deres egenskaper i kroppens system, da det kan avsløre in vivo stamcelleadferd i sin fysiologiske kontekst, og den faktiske stammen kan være vurdert. Lineage traciNg gir direkte bevis på langsiktig utholdenhet ( dvs. selvfornyelse) av kandidat VESCs og deres evne til å produsere celletyper for opprinnelsesvevet ( dvs. differensieringspotensial).

Denne protokollen beskriver en ny brysttransplantasjonsteknikk for brystfettfett og en linjesporingsmetode for å observere fartøygenerasjonsegenskapen til VESCs. Disse teknikkene overvinne mangler av tilgjengelige analyser og gir en ny måte å optimalisere stamcelleegenskapene til VESCs. Disse tilnærmingene er effektive verktøy som kan brukes til å vurdere endotel-populasjoners adferd og fartøyformende egenskaper, samt å bestemme endring av vaskulærcellepotensial i et patologisk miljø.

Protocol

Eksperimentelle prosedyrer ble godkjent av dyrepleie- og brukskomiteen ved Shanghai Institute of Biochemistry and Cell Biology, kinesisk vitenskapsakademi i henhold til den godkjente protokollen SIBCB-NAF-15-002-S335-003. 1. Isolering av VESC fra Mus Mammary Gland Mammary gland høst og vev fordøyelse. Bruk 8 uker gamle Actin-GFP modne jomfru reportermus, med vekter som varierer mellom 20 og 25 g, som vevsgivere. Merk: Celler som kommer f…

Representative Results

Mammary VESCs Isolasjon: For å isolere endotel-populasjonen for den resulterende transplantasjonsanalysen, modne (8 uker gamle), ble jomfrukjertler med jomfru høstet som donormateriale. Endotelceller ble isolert ved anvendelse av en antistoffbasert cellesorteringsteknikk. Representative plott av FACS-analysen av VESC-populasjonen i 8-ukers C57BL / 6-brystkirtel ECs er vist i Figur 1 (Figur tilpasse…

Discussion

Angiogenese-analyser representerer en god eksperimentell tilnærming til å studere vaskulær dynamikk. Mus retinal vaskulatur, som utvikler seg postnatalt, har vist seg å være en attraktiv modell for å studere angiogenese 12 . Til tross for at den er relativt tilgjengelig, er faktisk manipulering i retina vaskulærsengen ganske vanskelig. Hittil har den best beskrevne in vivo transplantasjonen vært plug-analysen, som omslutter celler inne i en kjellermembranmatriksmasse og kirurgisk…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Natural Science Foundation of China (31530045 og 31371500 til YAZ, 31401245 til QCY), Kinas departement for vitenskap og teknologi (2014CB964800), Det kinesiske vitenskapsakademiet (XDB19000000 til YAZ) og den kinesiske Society of Cell Biology (Early Career fellesskap til QCY).

Materials

0.05% Trypsin-Ethylene Diamine Tetraacetic Acid(EDTA) (1X) Gibco (Life Technologies) 25300-062 0.05% Trypsin
0.22 µm Filter Unit Merck Millipore Ltd. SLGP033RB 0.22 µm Filter
2-Methylbutanol-2, ReagentPlus Sigma-Aldrich 24, 048-6 Tert Amyl Alcohol
222, Tribromethanol Sigma-Aldrich T48402-25g 222, Tribromethanol
4',6-diamidino-2-phenylindole(DAPI) Invitrogen D1306 DAPI
70 µm Cell Strainer BD FAL 352350 70 µm Cell Strainer
Adhesion Microscope Slides CITOGLAS 188105 Glass slides
Anti-mouse CD105 APC eBioscience 17-1051-82, clone MJ7/18 for FACS analusis use at 1 µg/mL
Anti-mouse CD201 Biotin eBioscience 13-2012-82 for FACS analusis use at 2.5 µg/mL
Anti-mouse CD31 PE-Cyanine 7 eBioscience 25-0311-82, clone 390 for FACS analusis use at 1 µg/mL
BD FACSJazz Cell Sorter BD Biosciences 655489 FACS
Bovine Serum Albumin Sigma 100190332 BSA
Centrifuge Eppendorf 5810R Centrifuge
Collagenase type 3 Worthington-Biochem #LS004183 Collagenase III
Confocal microscopy Leica sp8 Confocal
Deoxyribonuclease I from bovine pancreas Sigma D2463-5VL Dnase I
Donkey anti-Rat Cy3 Jackson ImmunResearch 712-165-150 Secondary antibody, use at 0.5 µg/mL
Dumont Forceps WPI 500342 Froceps
Dumont Forceps – Micro-Blunted Tips FST 11253-20 Forceps
Fetal Bovine Serum Hyclone SH30396.03 FBS
FITC Ms CD3/Gr1/CD11b/CD45R(B220)/Ter-119 BioLegend 78022 Blood lineage cocktail for FACS analysis, use at 25 µl per test
Glycerol Sigma G6279 Glycerol
Iscov's Modified Dulbecco's Medium Gibco (Life Technologies) 12440-053 IMDM
Isolectin GS-IB4 from Griffonia Simplicifolia, Alexa Fluora  647 Invitrogen Z32450 Isolectin-647
Matrigel  Matrix (growth factor reduced) BD 356231 Matrigel
Mouse strain (Actin-GFP) Jax Laboratories 3773 Actin-GFP
Mouse strain (C57BL/6) SLAC C57BL/6 C57BL/6
Mouse strain  (BALB/c nude) SLAC BALB/c nude Nude mice
Paraformaldehyde Sigma P6148 PFA
Penicilin Streptomycin Gibco (Life Technologies) 5140-122 Pen/Strep
Phosphate Buffered Saline (pH7.2) 1X Gibco (Life Technologies) c20012500BT PBS
PRIM1640 Gibco (Life Technologies) c11875500CP PRIM1640
ProLong Gold antifade reagent Life Technologies P36934 Mounting Medium
Rat anti CD144 BD Biosciences 550548 for whole-mount analysis, anti-VE-Cadherin / Cdh5 antibdy for endothelial tight junction, use at 2.5 µg/mL
Rat anti CD31-biotin BD Biosciences 553371 for whole-mount analusis, anti-CD31/PECAM1 antibody for endothelial surface adhesion molecule, use at 10 ug/mL
Red Cell Lysis Buffer Sigma R7767-100ML Red blood cell lysing buffer
Straight/Sharp-Blunt/10cm FST 14028-10 Fine Scissors
Streptavidin eFluor 450 eBioscience 48-4317-82 for FACS analysis use at 0.5 µg/mL
Tamoxifen Sigma 101551374 TAM
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787-250ML TritonX
Wax Coated Braided Silk (Size 5-0 USP (1 Metric), 18 inches (45 cm) BLACK on C-1 Needle) COVIDIEN S1173 Suture 
Sterile Disposable Scaplels Swann Morton #10 Scalpel
Betadine Yifeng Medical 20160101 Antiseptic solution

References

  1. Thomas, E. D., Lochte, H. L., Lu, W. C., Ferrebee, J. W. Intravenous infusion of bone marrow in patients receiving radiation and chemotherapy. N Engl J Med. 257 (11), 491-496 (1957).
  2. Chao, M. P., Seita, J., Weissman, I. L. Establishment of a normal hematopoietic and leukemia stem cell hierarchy. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 73, 439-449 (2008).
  3. Bompais, H., et al. Human endothelial cells derived from circulating progenitors display specific functional properties compared with mature vessel wall endothelial cells. Blood. 103 (7), 2577-2584 (2004).
  4. Fang, S., Wei, J., Pentinmikko, N., Leinonen, H., Salven, P. Generation of functional blood vessels from a single c-kit+ adult vascular endothelial stem cell. PLoS Biol. 10 (10), e1001407 (2012).
  5. Naito, H., Kidoya, H., Sakimoto, S., Wakabayashi, T., Takakura, N. Identification and characterization of a resident vascular stem/progenitor cell population in preexisting blood vessels. EMBO J. 31 (4), 842-855 (2012).
  6. Yoder, M. C., et al. Redefining endothelial progenitor cells via clonal analysis and hematopoietic stem/progenitor cell principals. Blood. 109 (5), 1801-1809 (2007).
  7. Snippert, H. J., Clevers, H. Tracking adult stem cells. Embo Rep. 12 (2), 113-122 (2011).
  8. Yu, Q. C., Song, W., Wang, D., Zeng, Y. A. Identification of blood vascular endothelial stem cells by the expression of protein C receptor. Cell Res. 26 (10), 1079-1098 (2016).
  9. Rios, A. C., Fu, N. Y., Lindeman, G. J., Visvader, J. E. In situ identification of bipotent stem cells in the mammary gland. Nature. 506, 322-327 (2014).
  10. Barker, N., et al. Identification of stem cells in small intestine and colon by marker gene Lgr5. Nature. 449, 1003-1007 (2007).
  11. Wang, D. S., et al. Identification of multipotent mammary stemcells by protein C receptor expression. Nature. 517, 81-U201 (2015).
  12. Stahl, A., et al. The Mouse Retina as an Angiogenesis Model. Invest Ophth Vis Sci. 51 (6), 2813-2826 (2010).
  13. Mammoto, T., Mammoto, A. Implantation of Fibrin Gel on Mouse Lung to Study Lung-specific Angiogenesis. J. Vis. Exp. (94), e52012 (2014).
  14. Snippert, H. J., et al. Intestinal crypt homeostasis results from neutral competition between symmetrically dividing Lgr5 stem cells. Cell. 143 (1), 134-144 (2010).
  15. Soriano, P. Generalized lacZ expression with the ROSA26 Cre reporter strain. Nat Genet. 21 (1), 70-71 (1999).
  16. Barker, N., et al. Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro. Cell Stem Cell. 6 (1), 25-36 (2010).
  17. Solar, M., et al. Pancreatic exocrine duct cells give rise to insulin-producing beta cells during embryogenesis but not after birth. Dev Cell. 17 (6), 849-860 (2009).

Play Video

Citer Cet Article
Yu, Q. C., Song, W., Lai, D., Zeng, Y. A. A Novel Mammary Fat Pad Transplantation Technique to Visualize the Vessel Generation of Vascular Endothelial Stem Cells. J. Vis. Exp. (126), e55795, doi:10.3791/55795 (2017).

View Video