Summary

Ett protein framställningsmetod för hög kapacitet Identifiering av proteiner interagerar med en kärnteknisk Cofactor Använda LC-MS / MS-analys

Published: January 24, 2017
doi:

Summary

Vi har etablerat en metod för rening av samregleringssystem interaktionsproteiner med hjälp av LC-MS / MS-systemet.

Abstract

Transcriptional coregulators are vital to the efficient transcriptional regulation of nuclear chromatin structure. Coregulators play a variety of roles in regulating transcription. These include the direct interaction with transcription factors, the covalent modification of histones and other proteins, and the occasional chromatin conformation alteration. Accordingly, establishing relatively quick methods for identifying proteins that interact within this network is crucial to enhancing our understanding of the underlying regulatory mechanisms. LC-MS/MS-mediated protein binding partner identification is a validated technique used to analyze protein-protein interactions. By immunoprecipitating a previously-identified member of a protein complex with an antibody (occasionally with an antibody for a tagged protein), it is possible to identify its unknown protein interactions via mass spectrometry analysis. Here, we present a method of protein preparation for the LC-MS/MS-mediated high-throughput identification of protein interactions involving nuclear cofactors and their binding partners. This method allows for a better understanding of the transcriptional regulatory mechanisms of the targeted nuclear factors.

Introduction

Protein-proteininteraktioner spelar en viktig roll i många biologiska funktioner. Som sådana har dessa interaktioner varit inblandade i signaltransduktion; transportprotein över cellmembran; cellernas ämnesomsättning; och flera kärnprocesser, inklusive DNA-replikation, DNA-skador reparation, rekombination, och transkription ett, två, tre, fyra. Identifiera proteiner som är inblandade i dessa interaktioner är därför avgörande för att öka kunskaperna om dessa cellulära processer.

Immunoprecipitation (UP) är en validerad metod som används för att analysera proteinproteininteraktioner. För att underlätta identifieringen av co-immunoprecipiterade proteiner är masspektrometri används ofta 5, 6, 7, 8,9. Genom att rikta en känd medlem av ett proteinkomplex med en antikropp, är det möjligt att isolera den proteinkomplexet och att därefter identifiera dess okända komponenter via masspektrometrianalys. ARIP4 (androgenreceptorn-interagerande protein 4), en transkriptions coregulator, interagerar med nukleära receptorproteiner för att aktivera eller undertrycka sitt mål initiativtagare i en situationsberoende sätt 9, 10. För att bättre förstå de transkriptionsreglerande mekanismer som styr dessa nukleära faktorer, beskriver vi en omfattande metod för att rena och identifiera ARIP4 interagerar proteiner med hjälp av LC-MS / MS-systemet.

Protocol

1. Transfektion Seed HEK293-celler i 100-mm odlingsplattor (2 x 10 6 celler / skål). Odla cellerna i Dulbeccos modifierade Eagles medium kompletterat med 10% fetalt kalvserum, 100 | ig / ml streptomycin och 100 enheter / ml penicillin. Inkubera cellerna i en fuktad inkubator vid 5% CO2 och 37 ° C. Nästa dag, transfektera cellerna med 10 ^ g av FLAG-märkt ARIP4 plasmid med användning 40 pl transfektionsreagens enligt tillverkarens anvisningar 11. </l…

Representative Results

Vi identifierade en stark ARIP4 signal, cirka 160 KDa, såväl som de hos en mock kontrollprov och flera andra okända proteiner (Figur 1). LC-MS / MS-analys identifierat både ARIP4 komplexa peptider och de potentiella peptid kofaktorer inom den del av FLAG pärlor (tabell 1). p62 (Sequestosome1), var en känd ARIP4 cofaktor 11 identifierats i analysen (tabell 1), vilket bekräftar effekten av detta system <sup c…

Discussion

Effektiv transfektion är viktigt att få ett lyckat resultat med detta protokoll. Följaktligen rekommenderar vi användning av Western blot-analys för att bestämma de immunoprecipiterade FLAG-märkt proteinnivåer. Detta steg gör det möjligt för användare att kontrollera att deras proteinet av intresse är korrekt överuttryckt och dessutom att IP utfördes framgångsrikt. bör också kontrolleras FLAG-taggade proteinnivåer före analysen masspektrometri.

Ett mock prov bör använda…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This study was supported by the Astellas Foundation for Research on Metabolic Disorders (HT), the Takeda Science Foundation (HT), and by a Japan Society for the Promotion of Science Grants-in-Aid for Young Scientists (B) to HT.

Materials

Lipofectamine 2000 Transfection Reagent Thermo Fisher Scientific 11668019
Protease Inhibitor Cocktail (EDTA free) (100x) nacalai tesque 03969-21
ANTI-FLAG M2 Affinity Gel Sigma-Aldrich A2220
Micro Bio-Spin Columns BIO-RAD 732-6204

References

  1. De Las Rivas, J., Fontanillo, C. Protein-protein interactions essentials: key concepts to building and analyzing interactome networks. PLoS Comput.Biol. 6 (6), e1000807 (2010).
  2. Westermarck, J., Ivaska, J., Corthals, G. L. Identification of protein interactions involved in cellular signaling. Mol.Cell.Proteomics. 12 (7), 1752-1763 (2013).
  3. MacPherson, R. E., Ramos, S. V., Vandenboom, R., Roy, B. D., Peters, S. J. Skeletal muscle PLIN proteins, ATGL and CGI-58, interactions at rest and following stimulated contraction. Am.J.Physiol.Regul.Integr.Comp.Physiol. 304 (8), 644-650 (2013).
  4. Qin, K., Dong, C., Wu, G., Lambert, N. A. Inactive-state preassembly of G(q)-coupled receptors and G(q) heterotrimers. Nat.Chem.Biol. 7 (10), 740-747 (2011).
  5. Ogawa, H., Ishiguro, K., Gaubatz, S., Livingston, D. M., Nakatani, Y. A complex with chromatin modifiers that occupies E2F- and Myc-responsive genes in G0 cells. Science. 296 (5570), 1132-1136 (2002).
  6. Shi, Y., et al. Coordinated histone modifications mediated by a CtBP co-repressor complex. Nature. 422 (6933), 735-738 (2003).
  7. Huh, K. W., DeMasi, J., Ogawa, H., Nakatani, Y., Howley, P. M., Munger, K. Association of the human papillomavirus type 16 E7 oncoprotein with the 600-kDa retinoblastoma protein-associated factor, p600. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 102 (32), 11492-11497 (2005).
  8. Huang, B. X., Kim, H. Y. Effective identification of Akt interacting proteins by two-step chemical crosslinking, co-immunoprecipitation and mass spectrometry. PLoS One. 8 (4), 61430 (2013).
  9. ten Have, S., Boulon, S., Ahmad, Y., Lamond, A. I. Mass spectrometry-based immuno-precipitation proteomics – the user’s guide. Proteomics. 11 (6), 1153-1159 (2011).
  10. Ogawa, H., Komatsu, T., Hiraoka, Y., Morohashi, K. Transcriptional Suppression by Transient Recruitment of ARIP4 to Sumoylated nuclear receptor Ad4BP/SF-1. Mol.Biol.Cell. 20 (19), 4235-4245 (2009).
  11. Tsuchiya, M., et al. Selective autophagic receptor p62 regulates the abundance of transcriptional coregulator ARIP4 during nutrient starvation. Sci.Rep. 5, 14498 (2015).
  12. Watanabe, T., Matsuo, I., Maruyama, J., Kitamoto, K., Ito, Y. Identification and characterization of an intracellular lectin, calnexin, from Aspergillus oryzae using N-glycan-conjugated beads. Biosci.Biotechnol.Biochem. 71 (11), 2688-2696 (2007).
  13. Sitz, J. H., Tigges, M., Baumgartel, K., Khaspekov, L. G., Lutz, B. Dyrk1A potentiates steroid hormone-induced transcription via the chromatin remodeling factor Arip4. Mol.Cell.Biol. 24 (13), 5821-5834 (2004).
  14. Mohammed, H., Taylor, C., Brown, G. D., Papachristou, E. K., Carroll, J. S., D’Santos, C. S. Rapid immunoprecipitation mass spectrometry of endogenous proteins (RIME) for analysis of chromatin complexes. Nat.Protoc. 11 (2), 316-326 (2016).
  15. Fonslow, B. R., Yates, J. R. Capillary electrophoresis applied to proteomic analysis. J.Sep.Sci. 32 (8), 1175-1188 (2009).

Play Video

Citer Cet Article
Tsuchiya, M., Karim, M. R., Matsumoto, T., Ogawa, H., Taniguchi, H. A Protein Preparation Method for the High-throughput Identification of Proteins Interacting with a Nuclear Cofactor Using LC-MS/MS Analysis. J. Vis. Exp. (119), e55077, doi:10.3791/55077 (2017).

View Video