Summary

Bruke<em> Ex Vivo</em> Upright Droplet Kulturer av Whole føtale organer å studere utviklingsprosesser i løpet Mouse organogenesen

Published: October 21, 2015
doi:

Summary

The ex vivo upright droplet culture is an alternative to current in vitro and in vivo experimental techniques. This protocol is easy to perform and requires smaller amounts of reagent, while permitting the ability to manipulate and study fetal vascularization, morphogenesis, and organogenesis.

Abstract

Gransker organogenesen i utero er en teknisk krevende prosess i placenta pattedyr på grunn av utilgjengelighet av reagenser til embryoer som utvikler i livmoren. En nyutviklet ex vivo oppreist dråpe kultur metoden gir et attraktivt alternativ til studier utført i livmoren. Den ex vivo dråpe kultur gir mulighet til å undersøke og manipulere cellulære interaksjoner og ulike signalveier gjennom bruk av ulike blokkering og aktiverende forbindelser; i tillegg kan effekten av forskjellige farmakologiske reagenser om utvikling av spesifikke organer studeres uten uønskede bivirkninger av systemisk medikamentavgivelse in utero. I forhold til andre in vitro-systemer, dråpe kulturen ikke bare tillater muligheten til å studere tredimensjonale morfogenese og celle-celle-interaksjoner som ikke kan reproduseres i pattedyrcellelinjer, men også krever betydelig mindre reagents enn andre ex vivo og in vitro-protokoller. Dette dokumentet viser riktig musefoster organ disseksjon og stående dråpe kultur teknikker, etterfulgt av hele organet immunofluorescens for å demonstrere effektiviteten av fremgangsmåten. Den ex vivo dråpedyrkningsmetode som tillater dannelse av organ arkitektur kan sammenlignes med hva som er observert in vivo og kan anvendes for å studere ellers er vanskelige å studere fremgangsmåter på grunn av embryonisk dødelighet in in vivo-modeller. Som en modell søknadssystem, vil et lite molekyl-inhibitor anvendes for å undersøke rollen til vaskularisering i testiklene morfogenese. Denne eks vivo dråpedyrkningsmetode kan utvides til andre fosterorgansystemer, som for eksempel lunge- og potensielt andre, selv om hvert organ må være grundig studert for å bestemme eventuelle organspesifikke modifikasjoner i protokollen. Dette organet kultur system gir fleksibilitet i eksperimentering med føtale organer, og resultater som ble oppnåddd hjelp av denne teknikken vil hjelpe forskere få innsikt i fosterutviklingen.

Introduction

Organ regenerering in vivo hos mennesker er svært begrenset; derfor, tissue engineering, utvikling av vev og organer fra enkeltceller donert av en vert, blir en attraktiv potensiell terapi for orgel erstatning. Men for denne terapeutisk strategi for å være vellykket, faktorer og cellulære reaksjoner som er involvert i morfogenesen av organet må være grundig studert og godt forstått. På grunn av manglende evne til å studere utvikling av spesifikke organer med tradisjonelle tilnærminger, har forskerne slått til alternative hele embryo eller hele organkulturer. Kalaskar et al. 1 har vist at ex vivo hele embryogenese kultur gir sammenlignbare resultater (i 58% av kultur embryo) til i utero utviklingen, noe som tyder på at ex vivo kultur metoder er et mulig alternativ for organ studier.

En individualisert organkultursystem, slik som denne ex vivo hydroPlet kultur system, åpner for helt organ analyse uavhengig av systemiske effekter, mens tillater manipulering av et bestemt signalveien eller cellulære interaksjoner via tilsetting av farmakologiske reagenser eller antistoffer. Tradisjonelt har studier av fosterets organutvikling vært begrenset til transgene og knockout mus teknologier, i tillegg til farmakologiske reagenser levert matern. Men det er tekniske problemer som involverer disse teknikkene og behandlinger i vivo; de fleste bekymringer dreie seg om virkningene av å påvirke ulike organer samtidig som ofte resulterer i embryonale dødelighet. En ekstra bekymring for studier manipulere fosterutvikling farmakologisk er mors effekten av narkotika på embryonal utvikling i livmoren (for eksempel mors metabolismen av stoffet før det når embryo) og hvis slike reagenser kan passere gjennom placenta.

Hele organ kultur teknikken beskrevether ble tilpasset fra en protokoll som først beskrevet av Maatouk et al. 2, hvor hele føtale gonader inkuberes i ex vivo oppreist dråpe kulturer. En vesentlig fordel med dyrking foster gonadene er at små-molekyl hemmere kan lett få tilgang til hele organet ved enkel diffusjon. . DeFalco et al har vist at bruk av denne ex vivo dråpedyrkningsmetode i forbindelse med små-molekyl-inhibitorer kan anvendes til å studere aliserte prosesser og interaksjoner som forekommer i løpet av gonade utvikling 3; Disse fremgangsmåter ville være vanskelig å undersøke in vivo på grunn av tekniske utfordringer (f.eks passasje av medikamenter gjennom placenta eller letalitet til å påvirke flere organer ved hjelp av genetiske eller farmakologiske metoder).

Dråpen kultur er ikke bare en forbedring i visse aspekter enn i utero eksperimentering, men også at det er en forbedring av in vitro og ex viVo systemer. Bruken av cellelinjer for å studere morphogenesis er meget vanskelig fordi de mangler de forskjellige celletypene, mangler kritiske ekstracellulære matriks (ECM) komponenter som tillater dannelse av organ-arkitektur, og kan fremvise gjenstander i signaleringskaskader. Selv tissue engineering har gjort betydelige forbedringer i å skape stillaser simulere ECM, gjør mangel på kunnskap med hensyn til hvilke signaler som kreves av hver celletype under organ det utfordrende å bygge et organ system in vitro. Andre ex vivo-systemer tidligere har blitt etablert for å studere organogenesen, eller mer spesifikt morphogenesis, og har vært svært vellykket for live avbildning av føtale organer i agar 4, transwells 5, filtre 6, og andre stillas matriser 7,8. Fordelen med dråpe kulturen system er at det tillater studiet av morfogenese ved å tilveiebringe evnen til å utnytte mindre reagenser, som er often kostbare, men også å gi organ overflatespenning, noe som er viktig for vekst og signaleringsfunksjoner 9.

I mus, tar innledende testis morphogenesis sted mellom embryonale (E) iscenesetter E11.5 og E13.5; disse trinn omfatter den optimale tidsvinduet for behandlingen av faktorer som påvirker kjønnsspesifikke differensiering. Blant de kritiske prosesser som oppstår under testis dannelse er generering av testis ledning arkitektur og dannelse av en testikkel-spesifikke vaskulære nettverk. Ved hjelp av denne ex vivo hele organet dråpekultursystem, er man i stand til å endre hann-spesifikke vaskularisering og hemme testis morphogenesis ved bruk av et lite molekyl-inhibitor som blokkerer aktiviteten av reseptorer for vaskulær endotelial vekstfaktor (VEGF); VEGF-mediert vaskulær remodellering er kritisk for utvikling testis 10-12. Denne teknikken kan med hell brukes til andre organer og kan målrette bestemt tidspunktvinduer med utvikling. Hel-mount organ bildebehandling tillater visualisering av vitale strukturer samt strukturelle og celleforandringer som følge av bruk av ulike hemmere. Viktigere, er dette systemet en fordel ved at forskeren kan omgå potensielle konfunderende effekter fra mors Drug Administration eller systemisk avbrudd under in vivo målrettede genet strategier. Dermed kan hele dette organet ex vivo dråpe kultur system betydelig forbedre evnen til å forstå samspillet og varslere som oppstår spesielt innenfor bestemte organer under fosterutviklingen.

Protocol

Alle mus ble brukt i disse studiene var CD-1-mus ble oppnådd fra Charles River Laboratories. Tidligere forsøk kultur er også blitt utført på andre stammer, slik som C57BL / 6J (data ikke vist), men en hvilken som helst stamme kan anvendes. Gravide voksne kvinner var ca 2-3 måneder gammel og ble avlivet via CO 2 innånding fulgt ved halshugging og bilateral torakotomi før embryo fjerning. Mus ble plassert i samsvar med NIH retningslinjer, og eksperimentelle protokoller ble godkjent av Institutional Anim…

Representative Results

Ex vivo dråpe kultur gjør det mulig å manipulere hele organer, slik som gonade, for å studere cellulære interaksjoner og dynamikk. Figur 1 viser i en trinnvis måte hvordan å forberede en E11.5 gonadesystemet dråpe kultur. De første trinn i kultur protokollen omfatter den innledende fjerning av embryoet holdige livmor fra moder mus (figur 1A og 1B). Etter fjerning av livmoren fra moren, er livmorveggen kuttet og embryoene blir frigjort fra plommesekken i PBS for ytterli…

Discussion

Denne studien viser en ex vivo hele organ dråpe metode som har mange mulige bruksområder for å studere fosterutvikling. Denne teknikken kan brukes til flere organer, og tillater forskeren å løse biologiske spørsmål som er vanskelig å undersøke ved hjelp av in vivo nærmer grunnet utilgjengelighet av embryoer og potensial embryonale dødelighet. Denne kulturen metode har flere fordeler fremfor andre in vitro tilnærminger, slik som pattedyrcellelinjer: hele organer kan benytte…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors were supported by: a CancerFree KIDS Research Grant, a March of Dimes Basil O’Connor Starter Scholar Award (#5-FY14-32), a Cincinnati Children’s Hospital Medical Center (CCHMC) Trustee Grant Award; a CCHMC Research Innovation and Pilot Funding Award; and CCHMC developmental funds. Authors also acknowledge the Capel laboratory for the initial optimization of this technique.

Materials

Superfrost Plus Microscope Slides Fisherbrand 12-550-15
Cover Glasses: Squares (22 mm x 22 mm, No. 1.5) Fisherbrand 12-541B
Sally Hansen Xtreme Wear Nail Polish, Invisible Sally Hansen N/A
8-Strip 0.2 mL PCR Tubes & Detached Flat Caps GeneMate T3218-1
Pipetman L P1000L, P200L, P20L, P10L, P2L Gilson FA10006M, FA10005M, FA10003M, FA10002M, FA10001M
Dumont #5 Forceps FST 91150-20
Fine Scissors FST 91460-11
Posi-Click 1.7 ml microcentrifuge tubes Denville C2170
Posi-Click 0.6 ml microcentrifuge tubes Denville C2176
10 μl SHARP Precision Barrier Tips Denville P1096FR
20 μl SHARP Precision Barrier Tips Denville P1121
200 μl SHARP Precision Barrier Tips Denville P1122
1000 μl SHARP Precision Barrier Tips Denville P1126
1 ml syringe with 27gauge needles BD PrecisionGlide 309623
10 ml syringe BD 305559
0.2 μM PES syringe filter VWR 28145-501
Grade 3 Qualitative Filter Paper Standard Grade, circle, 185 mm Whatman 1003-185
Primaria 35mm Easy Grip Style Cell Culture Dish Falcon/Corning 353801
Petri Dishes, Sterile (100 mm x 15 mm) VWR 25384-088
New Brunswick Galaxy 14 S CO2 Incubator Eppendorf CO14S-120-0000
Biosafety Cabinet Nuare NU-425-400
Mini-centrifuge  Fisher Scientific 05-090-100
BioExpress GyroMixer Variable XL GeneMate R-3200-1XL
Mastercycler Pro Thermal Cycler with control panel Eppendorf 950040015
SMZ445 stereomicroscope Nikon SMZ445
MultiImage Light Cabinet with AlphaEase Software Alpha Innotech Corporation Discontinued
Absolute 200 proof Ethanol Fisher BP2818-500
Triton X-100 Fisher BP151-100
Sodium Phosphate (Dibasic MW 142) Na2HPO4 Fisher S374-1
Potassium Phosphate (Monobasic MW 136) KH2PO4 Sigma-Aldrich P5379-1KG
Sodium Chloride (NaCl) Fisher S671-3
Potassium Chloride (KCl) Sigma-Aldrich P3911-1KG
Magnesium Chloride (MgCl2) Sigma M2393-100g
Calcium Chloride (CaCl2) Sigma C5670-100g
Ambion Nuclease-Free Water Life Technologies AM9938 
XY PCR Primer  IDT N/A
Glacial Acetic Acid Fisher A38-500
Ethylenediamine Tetraacetic Acid (EDTA) Fisher BP2482-1
1% Ethidium bromide solution Fisher BP1302-10 Toxic
Agarose GeneMate E-3120-500
Sodium Hydroxide (NaOH) Sigma-Aldrich 367176-2.5KG
Trizma Base Sigma T1503-1KG
dNTP Set, 100 mM Solutions Thermo Scientific R0182
DNA Choice Taq polymerase with 10x Buffer Denville CB-4050-3
Paraformaldehyde Fisher O4042-500 Toxic
FluorMount-G Southern Biotech 0100-01
Hydrogen Chloride (HCl) Fisher A144212
Bovine Serum Albumin (BSA), powder, Fraction V, Heat shock isolation Bioexpress 0332-100g
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)  Life Technologies 11965-092
Fetal Bovine Serum (FBS), triple 100-nm filtered Fisher 03-600-511 Heat-inactivate before using
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Life Technologies 15140-122 Use at 1:100
Dimethyl sulfoxide (DMSO), Hybri-max, sterile-filtered Sigma D2650
VEGFR Tyrosine Kinase Inhibitor II – CAS 269390-69-4 – Calbiochem EMD Millipore 676481
Rabbit Anti-Sox9 Antibody Millipore AB5535 Use at dilution: 1:4,000
Rat Anti-Mouse PECAM1 (CD31) Antibody BD Pharmingen 553370 Use at dilution: 1:250
Rabbit Cleaved Caspase-3 (Asp175) Antibody Cell Signaling 9661S Use at dilution: 1:250
Rat E-cadherin / CDH1 Antibody (ECCD-2) Life Technologies 13-1900 Use at dilution: 1:500
Hoechst 3342, trihydrochloride, trihydrate Invitrogen (Molecular Probes) H1399 Use at 2ug/ml
Cy3 AffiniPure Donkey Anti-Rat IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 712-165-153 Use at dilution: 1:500
Alexa Fluor 647 AffiniPure Donkey Anti-Rat IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 712-605-153 Use at dilution: 1:500
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate Life Technologies A31572 Use at dilution: 1:500
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 conjugate Life Technologies A21206 Use at dilution: 1:500
Donkey anti-Rat IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 conjugate Life Technologies A21208 Use at dilution: 1:500
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 647 conjugate Life Technologies A31573 Use at dilution: 1:500

References

  1. Kalaskar, V. K., Lauderdale, J. D. Mouse embryonic development in a serum-free whole embryo culture system. J. Vis. Exp. (85), e50803 (2014).
  2. Maatouk, D. M., et al. Stabilization of beta-catenin in XY gonads causes male-to-female sex-reversal. Hum. Mol. Genet. 17, 2949-2955 (2008).
  3. DeFalco, T., Bhattacharya, I., Williams, A. V., Sams, D. M., Capel, B. Yolk-sac-derived macrophages regulate fetal testis vascularization and morphogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 111, E2384-E2393 (2014).
  4. Coveney, D., Cool, J., Oliver, T., Capel, B. Four-dimensional analysis of vascularization during primary development of an organ, the gonad. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 7212-7217 (2008).
  5. Walton, K. D., Kolterud, A. Mouse fetal whole intestine culture system for ex vivo manipulation of signaling pathways and three-dimensional live imaging of villus development. J. Vis. Exp. (91), e51817 (2014).
  6. Delmarcelle, A. S., Villacorte, M., Hick, A. C., Pierreux, C. E. An ex vivo culture system to study thyroid development. J. Vis. Exp. (88), e51641 (2014).
  7. Costantini, F., Watanabe, T., Lu, B., Chi, X., Srinivas, S. Dissection of embryonic mouse kidney, culture in vitro, and imaging of the developing organ. Cold Spring Harb. Protoc. 2011, (2011).
  8. Petzold, K. M., Spagnoli, F. M. A system for ex vivo culturing of embryonic pancreas. J. Vis. Exp. (66), e3979 (2012).
  9. Foty, R. A simple hanging drop cell culture protocol for generation of 3D spheroids. J. Vis. Exp. (51), e2720 (2011).
  10. Combes, A. N., et al. et al.Endothelial cell migration directs testis cord formation. Dev. Biol. 326, 112-120 (2009).
  11. Bott, R. C., McFee, R. M., Clopton, D. T., Toombs, C., Cupp, A. S. Vascular endothelial growth factor and kinase domain region receptor are involved in both seminiferous cord formation and vascular development during testis morphogenesis in the rat. Biol. Reprod. 75, 56-67 (2006).
  12. Cool, J., DeFalco, T. J., Capel, B. Vascular-mesenchymal cross-talk through Vegf and Pdgf drives organ patterning. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 167-172 (2011).
  13. Clapcote, S. J., Roder, J. C. Simplex PCR assay for sex determination in mice. BioTechniques. 38, 702, 704-706 (2005).
  14. Nel-Themaat, L., et al. et al.Morphometric Analysis of Testis Cord Formation in. Dev. Dyn. 238, 1100-1110 (2009).
  15. Kent, J., Wheatley, S. C., Andrews, J. E., Sinclair, A. H., Koopman, P. A male-specific role for SOX9 in vertebrate sex determination. Development. 122, 2813-2822 (1996).
  16. Morais da Silva, S., et al. et al.Sox9 expression during gonadal development implies a conserved role for the gene in testis differentiation in mammals and birds. 14, 62-68 (1996).
  17. Rockich, B. E., et al. Sox9 plays multiple roles in the lung epithelium during branching morphogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110, E4456-E4464 (2013).
  18. Si-Tayeb, K., Lemaigre, F. P., Duncan, S. A. Organogenesis and development of the liver. Dev. Cell. 18, 175-189 (2010).
  19. Brennan, J., Capel, B. One tissue, two fates: Molecular genetic events that underlie testis versus ovary development. Nat. Rev. Genet. 5, 509-521 (2004).
  20. Martineau, J., Nordqvist, K., Tilmann, C., Lovell-Badge, R., Capel, B. Male-specific cell migration into the developing gonad. Curr. Biol. 7, 958-968 (1997).
  21. Yokonishi, T., Sato, T., Katagiri, K., Ogawa, T. In vitro spermatogenesis using an organ culture technique. Methods Mol. Biol. 927, 479-488 (2013).
  22. Sato, T., et al. In vitro production of functional sperm in cultured neonatal mouse testes. Nature. 471, 504-507 (2011).
  23. Gohbara, A., et al. In vitro murine spermatogenesis in an organ culture system. Biol. Reprod. 83, 261-267 (2010).

Play Video

Citer Cet Article
Potter, S. J., DeFalco, T. Using Ex Vivo Upright Droplet Cultures of Whole Fetal Organs to Study Developmental Processes during Mouse Organogenesis. J. Vis. Exp. (104), e53262, doi:10.3791/53262 (2015).

View Video