Neutrophils play an important role not only in host defense against invading microorganisms, but are also involved in the immune surveillance of tumor cells. Here, we describe techniques related to the isolation of neutrophils with anti-tumor properties and methods for monitoring anti-tumor neutrophil function in vitro and in vivo.
Neutrofili, il più abbondante di tutte le cellule bianche del sangue nella circolazione umana, svolgono un ruolo importante nella difesa dell'ospite contro microrganismi invasori. Inoltre, i neutrofili giocano un ruolo centrale nella sorveglianza immunitaria di cellule tumorali. Essi hanno la capacità di riconoscere le cellule tumorali e indurre la morte delle cellule tumorali tramite un meccanismo di contatto-dipendente delle cellule coinvolgono il perossido di idrogeno o attraverso citotossicità cellulo-mediata anticorpo-dipendente (ADCC). I neutrofili con attività anti-tumorale possono essere isolate dal sangue periferico di pazienti affetti da cancro e di topi portatori di tumore. Questi neutrofili sono chiamati neutrofili tumore trascinato (TEN) per distinguerli dai neutrofili di soggetti sani o topi ingenua che non mostrano una significativa attività citotossica tumorale. Rispetto ad altri globuli bianchi, neutrofili mostrano diversa galleggiabilità rendendo così possibile ottenere a> 98% popolazione neutrofili puro quando sottoposto ad un gradiente di densità. Tuttavia, in aggiuntaalla popolazione normale neutrofili alta densità (HDN), in pazienti affetti da cancro, in topi portatori di tumore, come pure in condizioni infiammatorie croniche, popolazioni neutrofili bassa densità distinti (LDN) appaiono nella circolazione. LDN co-purificare con la frazione mononucleare e può essere separato dalle cellule mononucleari utilizzando sia strategie di selezione positiva o negativa. Una volta che la purezza dei neutrofili isolati è determinata mediante citometria di flusso, possono essere utilizzati per in vitro e in vivo saggi funzionali. Descriviamo tecniche per il monitoraggio dell'attività antitumorale di neutrofili, la loro capacità di migrare e per produrre specie di ossigeno reattive, così come il controllo della loro capacità fagocitica ex vivo. Descriviamo ulteriormente le tecniche per etichettare i neutrofili per il monitoraggio in vivo, e di determinare la loro capacità anti-metastatica in vivo. Tutte queste tecniche sono essenziali per capire come ottenere e caratterizzare neutrofili con antitumoralefunzione.
I neutrofili sono stati inizialmente caratterizzati come le cellule immunitarie innate che servono come prima linea di difesa contro i microrganismi invasori. Oggi è noto che i neutrofili hanno più funzioni di vasta portata, essere coinvolti in montaggio le risposte immunitarie adattive contro antigeni estranei 1,2, regolando emopoiesi 3, l'angiogenesi e la guarigione delle ferite 4 5. Inoltre, i neutrofili possono influenzare la crescita tumorale e nella progressione metastatica in virtù delle loro pro e anti-tumorali attività 6,7. I neutrofili sono caratterizzati da un nucleo segmentato polimorfico (quindi definito polimorfonucleati (PMN) leucociti) e contenere almeno tre sottoclassi distinte di granuli e vescicole secretorie 8 (Figura 1A-C).
I neutrofili possiedono elevata capacità fagocitica e alta NADPH ossidasi critico per l'eliminazione microbica, e secernono una vasta gamma di chemochine importanti da untrazione dei neutrofili supplementari e di altre cellule immunitarie al sito di infiammazione 8,9. I neutrofili si caratterizzano per l'espressione di una grande quantità di recettori di superficie, tra cui i recettori Toll-like (TLR), C-type lectina recettori (CLR), completano il recettore 3 (CD11b / CD18) e altre molecole di adesione (per esempio, L-selectina, LFA-1, VLA-4 e Carcinoembrionario legati molecola di adesione delle cellule 3 (CEACAM3 / CD66b)), recettori per chemochine (ad esempio, CXCR1, CXCR2, CCR1, CCR2), i recettori chemotattiche (ad esempio, PAFR, LTB 4 R e C5aR) , i recettori delle citochine (ad esempio, G-Cecoslovacchia, IL-1R, IL-4R, IL-12R, IL-18R, TNFR), formil-peptidi recettori (ad esempio, FPR1-3) e recettori Fc (ad esempio, CD16 (FcγRIII ), CD32 (FcγRII) e CD64 (FcγRI) 10. Nei topi, i neutrofili sono solitamente identificati come CD11b + Ly6G +, mentre neutrofili umani vengono identificati utilizzando i marcatori di leucociti CD11b, CD15, CD16 e CD66b. Inoltre, è generalmente accettato di macchia per il proteine granuli mieloperossidasi (MPO) e neutrofila (NE) per la rilevazione dei neutrofili nei tessuti.
Non è ancora chiaro se le diverse funzioni dei neutrofili sono mediate dalla stessa cellula o di cellule distinte sottopopolazioni. Dati accumulando suggeriscono la presenza di una popolazione eterogenea neutrofili che presenta un elevato grado di plasticità colpiti da stimoli pro-infiammatori e il microambiente 11,12. Fridlender et al. 13 hanno grossolanamente diviso i neutrofili nel cancro in due grandi sotto-popolazioni chiamato N1 con proprietà anti-tumorali e N2 con proprietà pro-tumorali. Nel cancro, nonché in infiammazione cronica, vi è una sotto-popolazione supplementare composto di cellule mieloidi granulocitari derivate soppressori (G-MDSCs) che sopprimono le risposte delle cellule T 14. G-MDSCs sono considerati cellule mieloidi immature caratterizzate da un CD11b + Ly6Cbasso Ly6G fenotipo hi nei topi 15, pur avendo una CD15 + / CD16 basso fenotipo in umano 16. G-MDSCs esprimono alti livelli di arginasi e mieloperossidasi, mentre bassi livelli di citochine e chemochine che normali neutrofili circolanti. Sono meno fagociti e migratoria, ma producono alti livelli di ROS 15,17,18. Nel presente lavoro descriveremo alcune metodologie di base per l'isolamento e la caratterizzazione dei neutrofili con proprietà antitumorali.
Mentre neutrofili costituiscono la più grande popolazione di tutte le cellule bianche del sangue nella circolazione umana (45 – 70%; 1.800 – 6.000 / ml), nei topi, in condizioni normali, sono piuttosto scarse (10 – 15%; 300-500 / ml ). La conta dei neutrofili aumenta costantemente su infiammazione e, occasionalmente, nel cancro, che rappresenta uno stato di infiammazione cronica 7. I neutrofili si sviluppano da multipotenti precursore mieloide comune (CMP) cells nel midollo osseo, attraverso un processo di differenziazione che passano le fasi di mieloblasti (MB), promielociti (PM), mielociti (MC), metamielociti (MM) e cellule della band (BC) 8. I maturi, neutrofili post-mitotico possono rimanere all'interno del midollo osseo per 4-7 giorni prima di essere rilasciati alla circolazione 8. Fatturato dei neutrofili nel sangue è di solito rapido con una emivita media di 6-12 ore, che può essere prolungata in condizioni infiammatorie. Neutrofili non stimolate hanno limitato l'attività anti-cancerogena, una caratteristica che può essere acquisita esponendo i neutrofili naïve alle chemochine IL-8 (CXCL2), CCL2, CCL5 e CXCL5 6,19 o artificialmente, esponendoli a estere phorbol phorbol 12 -myristate 13-acetato (PMA) 6.
La breve emivita di neutrofili nel sangue insieme con il basso numero di neutrofili (~ 3-5 x 10 5) ottenuto da 1 ml di sangue di un ingenuo 6-8 settimane di età del mouse, l'hanno fattadifficile da esplorare la funzione di far circolare il mouse neutrofili in vitro. Per superare questa difficoltà, sono state utilizzate altre fonti. Per esempio, un gran numero di neutrofili possono essere ottenute dal midollo osseo 20 o il peritoneo dopo l'induzione dell'infiammazione sterile (ad esempio, dopo l'iniezione intraperitoneale di tioglicolato brodo o Zymosan A). Va notato che i neutrofili ottenuti dalla cavità peritoneale non esercitano alcuna attività anti-cancerogena (osservazioni non pubblicate).
. Granot et al 6 osservato che i topi BALB / c inoculati ortotopicamente con il mouse 4T1 seno linea cellulare di carcinoma sviluppare neutrofilia che aggrava con progressione tumorale 6 (Figura 2A), tale che 20-40.000.000 neutrofili sangue possono essere facilmente isolati da 1 ml di sangue 3 – 4 settimane dopo l'inoculazione del tumore. Questi neutrofili hanno acquisito le attività anti-tumorali, e di conseguenza sono stati coineutrofili ned tumorali trascinato (TEN), al fine di distinguerli dai neutrofili naïve 6 (Figura 2B). Mentre neutrofili alta densità (HDN, Figura 1A) sono altamente anti-oncogeno, neutrofili a bassa densità (LDN, Figura 1B) generate nel contesto di cancro non sono 21. Inoltre, i neutrofili ad alta densità del midollo osseo e milza di topi portatori di tumore hanno attività anti-tumorale (dati non pubblicati). Va notato che, con progressione tumorale milza diventa gradualmente (splenomegalia), con quantità crescenti di neutrofili.
Va notato che TEN vengono generati anche in altri modelli di cancro inclusi sia spontanei (MMTV-PyMT e MMTV-Wnt1 tumori mammari e k-Ras tumori polmonari motrice) e iniettato (AT-3 (MMTV-PyMT) e carcinoma mammario E0771 cellule, LLC Lewis cellule di carcinoma del polmone e cellule B16-F10 melanoma). Tuttavia, la misura di neutrofili mobilitazione in questi tumo modelli è molto meno di topi 4T1-inoculati, raggiungendo 5 – 10 x 10 6 neutrofili in 1 ml di sangue dopo 3 settimane.
I neutrofili sono la più abbondante di tutte le cellule bianche del sangue e sono i primi interventi in caso di infezioni e infiammazioni. Come tali, essi sono molto sensibili a segnali esterni e sono facilmente attivati. Inoltre, i neutrofili hanno una breve emivita e un rapido turnover. Insieme, queste caratteristiche sollevano varie difficoltà nel lavorare con neutrofili, tale che sono richieste uniche strategie sperimentali. Per esempio, ci sono diverse strategie di purificazione dei neutrofili, ognuno con i suoi …
The authors have nothing to disclose.
ZG è sostenuta da sovvenzioni dal Programma I-CORE di The Science Foundation Israele (Grant No. 41/11), la Fondazione Abisch-Frenkel, il Rosetrees Trust, la Israel Cancer Research Foundation (ICRF – Research Career Development Award) e il fondazione PREOCCUPAZIONE. ZGF è sostenuto da sovvenzioni dal Israel Cancer Research Foundation (ICRF – Research Career Development Award), Chief Scientist del Ministero della Salute di Israele e la Israel Lung Association.
CELL LINES | |||
Mouse 4T1 breast carcinoma cells | ADCC | CRL-2539 | Growth medium: DMEM + 10 % heat-inactivated FBS |
PLASTIC WARES AND EQUIPMENTS | |||
24-well Tissue Culture Plate | Falcon | 353047 | Sterile |
100 mm Tissue Culture Plate | Corning | 430167 | Sterile |
25 cm2 Tissue Culture Flask | Nunc | 156340 | Sterile |
90 mm Bacterial Grade Culture Dish | Miniplast, Ein Shemer, Israel | 20090-01-017 | Sterile |
15 ml Sterile Conical Centrifuge Tube | Miniplast, Ein Shemer, Israel | 835015-40-111 | Sterile |
50 ml Sterile Conical Centrifuge Tube | Miniplast, Ein Shemer, Israel | 835050-21-111 | Sterile |
Falcon 12×75 mm Round-Bottom Polystyrene Tube | Becton Dickinson | 352058 | Sterile |
Millicell 24 Migration Plate with a pore size of 5μm | Merck Millipore | PSMT010R1 | Sterile |
White 96-Flat-Bottom Well Plate | Costar | 3917 | Sterile |
Cell Strainer (40 mm) | BD Falcon | 352340 | Sterile |
20G 1.5" Needle | BD Microlance 3 | 301300 | Sterile |
23G 1" Needle | BD Microlance 4 | 300800 | Sterile |
25Gx5/8" Needle | BD Microlance 5 | 300600 | Sterile |
0.3 ml Syringe with a 30Gx8mm Needle | BD Micro-Fine Plus Demi | 320829 | Sterile |
9 mm Clips | BD, AutoClip | 427631 | Sterile |
EasySep Magnet | STEMCELL Technologies | 18000 | |
MACS LS Separation Column | Miltenyi Biotech | 130-042-201 | Sterile |
MidiMACS Separator Magnet | Miltenyi Biotech | 130-042-302 | |
MACS MultiStand | Miltenyi Biotech | 130-042-303 | |
Microscope Glass Slide | Menzel-Gläser Superfrost Plus Thermo | J1800AMNZ | |
Orbital Shaker | Sky line, ELMI | S-3.02.10L | |
Plate Reader | TECAN | InfiniteF200Pro | |
POWDER | |||
Bovine serum albumin (BSA), fraction V | Sigma | A7906 | |
Bromodeoxyuridine (BrdU) | BD Pharmingen | 550891 | Sterile |
CFSE (5-(and 6-)-Carboxyfluorescein diacetate, succinimidyl ester) | Molecular Probes | C1157 | |
Dextran T500 | Sigma | 31392 | |
Heparin sodium salt from porcine intestinal mucosa | Sigma | H3149 | |
Sodium azide (NaN3) | Sigma | S8032 | Highly toxic, handle with care |
Thioglycollate powder | Difco | 225650 | |
Zymosan A | Sigma | Z4250 | |
MEDIA AND SUPPLEMENTS | |||
Dulbecco's modified Eagle medium (DMEM) | Sigma | D5796 | Sterile |
Opti-MEM® I reduced serum medium | Life Technologies | 31985062 | Sterile |
Roswell Park Memorial Institute (RPMI)-1640 medium | Sigma | R8758 | Sterile |
Foetal bovine serum (FBS), heat-inactivated | Sigma | F9665 | Sterile |
L-Glutamine | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 03-020-1A | Sterile |
Sodium pyruvate | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 03-042-1B | Sterile |
Penicillin Streptomycin x1000 solution | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 03-031-5 | Sterile |
Phosphate buffered saline (PBS) without Mg2+ and Ca2+ | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 02-023-1 | Sterile |
PBSx10 without Ca2+ and Mg2+ | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 02-023-5A | Sterile |
HPLC grade water | J.T. Baker | 4218-03 | Autoclave |
SOLUTIONS | |||
ACK – Ammonium-Chloride-Potassium | Life Technologies | A10492-01 | |
Bromodeoxyuridine (BrdU) solution (10 mg/ml) in PBS | Dissolve 10 mg of BrdU in 1 ml PBS and sterile filter. | ||
CFSE, 5 mM in DMSO | Dissolve 2.8 mg of CFSE in 1 ml DMSO. Divide into 10 ml aliquots in sterile 200 ml tubes and store in the dark at -20oC. | ||
Eosin Y solution | Sigma | HT110-2-32 | |
Hanks' balanced salt solution | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 02-016-1A | Sterile |
Heparin, 20 mg/ml in PBS | Dissolve 100 mg Heparin in 5 ml sterile PBS, and sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
Histopaque-1119 | Sigma | 11191 | Sterile filter through a 0.2 mm filter. |
Histopaque-1077 | Sigma | 10771 | Sterile filter through a 0.2 mm filter. |
Luciferase cell culture lysis buffer x5 | Promega | E153A | Dilute 1:5 in sterile water just before use. |
Luciferase assay solution | Promega | E1501 | Contains luciferase assay substrate powder (E151A) and luciferase assay buffer (E152A) |
Mayer's Hematoxylin solution | Sigma | MHS-32 | |
PBS+0.5% BSA | Dissolve 2.5g BSA in 500 ml PBS, and sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
PBS+1% BSA | Dissolve 1g BSA in 100 ml PBS, and sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
5x PBS with 2.5% BSA | Dissolve 12.5g BSA in a mixture of 250 ml sterile HPLC-grade water and 250 ml PBSx10, and sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
PBS containing 0.5% BSA and 2 mM EDTA | Dissolve 250 mg BSA in 50 ml sterile PBS and add 200 ml of 0.5M EDTA pH 8.0, sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
FACS buffer (PBS containing 0.5% BSA, 2 mM EDTA and 0.02% NaN3) | Dissolve 250 mg BSA in 50 ml sterile PBS and add 200 ml of 0.5M EDTA pH 8.0 and 500 ml of 2% NaN3, sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
Saline (0.9% NaCl) | Dissolve 9 g NaCl in 1000 ml ddw, autoclave | ||
0.2% NaCl solution | Dissolve 2 g NaCl in 1000 ml ddw, autoclave | ||
1.6% NaCl solution | Dissolve 16 g NaCl in 1000 ml ddw, autoclave | ||
2 % Sodium azide | Dissolve 1g sodium azide in 50 ml sterile ddw, keep at 4oC. Highly toxic. | ||
3% Thioglycollate solution | Dissolve 3 g of thioglycollate powder in 100 ml ddw. Boil until solution becomes yellow and autoclave. | ||
Trypan blue solution (0.4%) | Sigma | T8154 | Dilute 1:10 in PBS to get a 0.04% solution. |
Trypsin solution B | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 03-046-1 | Sterile |
1 mg/ml Zymosan A | Resuspend 1 mg Zymosan A in 1 ml sterile PBS in an Eppendorf tube. Vortex vigorously and incubate the tube at 37 oC for 30 min. Do not autoclave. Prepare the solution freshly before use. | ||
KITS | |||
EasySep PE selection kit | STEMCELL Technologies | 18557 | |
EasySep PE selection cocktail | STEMCELL Technologies | 18151 | |
the EasySep magnetic nanoparticles | STEMCELL Technologies | 18150 | |
Anti-Ly6G mouse MicroBead Kit | Miltenyi Biotec | 130-092-332 | |
EasySep Mouse Neutrophil Enrichment Kit | STEMCELL Technologies | 19762 | |
EasySep Human Neutrophil Enrichment Kit | STEMCELL Technologies | 19257 | |
FITC BrdU flow kit | BD Pharmingen | 559619 | |
MACS Neutrophil isolation kit | Miltenyi Biotec | 130-097-658 | |
Phagocytosis Assay Kit | Cayman Chemical Company | 500290 | |
ANTIBODIES | |||
FcR blocking antibody | Biolegend | 101302 | |
Purified rat anti-Ly6G antibody | BD Pharmingen | 551459 | Clone 1A8 |
PE-conjugated rat anti-mouse Ly6G antibody | Biolegend | 127608 | Clone 1A8 |
FITC-conjugated rat anti-mouse Ly6G | BD Pharmingen | 551460 | Clone 1A8 |
PerCP-Cy5.5 rat anti-mouse Ly6G | TONBO Biosciences | 65-1276 | Clone 1A8 |
violetFluor 450-conjugated rat anti-mouse Ly6G | TONBO Biosciences | 75-1276 | Clone 1A8 |
FITC-conjugated rat anti-mouse CD11b | BD Pharmingen | 553310 | Clone M1/70 |
FITC-conjugated rat anti-mouse Ly-6G and Ly-6C (GR-1) | BD Pharmingen | 553127 | Clone RB6-8C5 |
PE-conjugated rat anti-mouse CD45 | BD Pharmingen | 553081 | Clone 30-F11 |
FITC-conjugated rat anti-mouse F4/80 | Abcam | ab60343 | Clone BM8 |
FITC-conjugated mouse anti-human CD66b | Biolegend | 305103 | Clone G10F5 |
Purified rat isotype control antibody (IgG2a, k) | BD Pharmingen | 553927 | Clone R35-95 |
LEAF purified Armenian hamster anti-mouse CD3e antibody | BioLegend | 100314 | Clone 145-2C11 |