Questo manoscritto presenta un protocollo per la rimozione chirurgica dei neuroni simpatici lombari postgangliari da un topo. Questa procedura faciliterà una moltitudine di studi volti a indagare il ruolo dell’innervazione simpatica nei bersagli tissutali distali.
Le lesioni dei nervi periferici sono comuni e il pieno recupero funzionale dopo la lesione si ottiene solo nel 10% dei pazienti. Il sistema nervoso simpatico svolge molti ruoli critici nel mantenimento dell’omeostasi corporea, ma è stato raramente studiato nel contesto della lesione dei nervi periferici. L’estensione delle funzioni neuronali simpatiche postgangliari nei bersagli distali nella periferia non è attualmente chiara. Per esplorare meglio il ruolo dell’innervazione simpatica di bersagli periferici, un modello chirurgico “knock-out” fornisce un approccio alternativo. Sebbene ciò possa essere ottenuto chimicamente, la distruzione chimica dei neuroni simpatici postgangliari può essere aspecifica e dose-dipendente. L’uso di una simpatectomia lombare chirurgica nei topi, una volta ritenuta “praticamente non praticabile” nei piccoli animali, consente di mirare in modo specifico ai neuroni simpatici postgangliari che innervano gli arti posteriori. Questo manoscritto descrive come rimuovere chirurgicamente i gangli simpatici lombari L2-L5 da un topo come intervento chirurgico di sopravvivenza, che riduce in modo affidabile la risposta al sudore della zampa posteriore e il numero di assoni simpatici nel nervo sciatico.
Le lesioni dei nervi periferici (PNI) possono portare a deficit motori, sensoriali e simpatici in bersagli tissutali distali che raramente recuperano completamente funzionalmente1. La ricerca sul PNI si è spesso concentrata sulla rigenerazione motoria e sensoriale; Tuttavia, quasi un quarto del nervo sciatico di ratto è costituito da assoni simpatici non mielinizzati2. Il ruolo dell’innervazione simpatica nei tessuti periferici, tuttavia, non è completamente compreso3. Il sistema nervoso simpatico svolge un ruolo importante nel mantenimento dell’omeostasi corporea, partecipando alla regolazione immunitaria, alla termoregolazione, al tono vascolare, alla biogenesi mitocondriale e altro ancora 4,5,6,7,8,9,10,11 . Quando l’innervazione simpatica alla giunzione neuromuscolare viene persa, si osserva una persistente debolezza muscolare e instabilità sinaptica nonostante il mantenimento dell’innervazione dei motoneuroni12. È stato dimostrato che questa regolazione simpatica della trasmissione sinaptica alla giunzione neuromuscolare diminuisce con l’invecchiamento13,14, il che contribuisce alla sarcopenia, definita come la riduzione età-dipendente della massa, della forza e della potenza muscolare15. Una migliore comprensione del ruolo dell’innervazione simpatica dei tessuti periferici è necessaria per lo sviluppo di terapie che ottimizzino i risultati funzionali per i pazienti con PNI e altre forme di disfunzione simpatica.
La simpatectomia è un potente strumento sperimentale che consente di studiare il ruolo dell’innervazione simpatica nei tessuti bersaglio distali. In particolare, la rimozione dei gangli simpatici di livello L2-L5 rimuove la maggior parte dell’innervazione simpatica agli arti inferiori, il che è particolarmente utile per gli investigatori interessati al nervo sciatico.
Questo protocollo descrive in dettaglio la rimozione dei neuroni simpatici postgangliari di livello L2-L5 da un topo come intervento chirurgico di sopravvivenza. Questa procedura richiede abilità microchirurgiche nei roditori e familiarità con l’anatomia del topo e, se eseguita in modo efficace, non causa differenze fenotipiche visibili. Una simpatectomia lombare chirurgica è stata utilizzata nella ricerca sui roditori, più nei ratti che nei topi 16,17,18,19,20,21; Tuttavia, attualmente non esiste un protocollo dettagliato che descriva il protocollo. Precedenti studi che utilizzavano la simpatectomia lombare si sono concentrati principalmente sul ruolo dell’innervazione simpatica nella risposta al dolore, che è generalmente attenuata dalla simpatectomia in vari modelli di lesione nervosa. Meno studi hanno utilizzato questa tecnica nei topi22, probabilmente a causa delle dimensioni ridotte dei punti di riferimento anatomici, poiché si riteneva che l’uso della simpatectomia chirurgica fosse “praticamente non praticabile” nei piccoli animali23,24. Le simpatectomie localizzate sotto forma di microsimpatectomia sono state utilizzate anche in modelli di roditori, anche per lo più nel contesto dei comportamenti dolorosivi 25,26,27. La microsimpatectomia, a differenza della simpatectomia lombare totale, utilizza un approccio dorsale attraverso il quale un segmento del ramo grigio di uno specifico nervo spinale viene scollegato e rimosso, consentendo una simpatectomia molto mirata che eviterà effetti collaterali più diffusi.
Poiché i modelli murini sono fondamentali per molti studi che richiedono la manipolazione genetica, questa procedura avrà applicazioni versatili anche al di là dell’ampiezza delle lesioni dei nervi periferici. Utilizzando un approccio transaddominale, i gangli simpatici lombari possono essere visualizzati in modo affidabile e resecati dal topo senza effetti avversi apparenti. Sebbene siano disponibili protocolli per la distruzione chimica dei neuroni simpatici postgangliari, come l’uso di 6-idrossidopamina (6-OHDA)23,24, questa procedura chirurgica consente un targeting anatomicamente specifico dei gangli simpatici lombari postgangliari. L’uso di una simpatectomia chirurgica evita anche i problemi aspecifici e dose-dipendenti legati ai metodi farmacologici28,29.
L’uso di simpatectomie chimiche attraverso la somministrazione di 6-OHDA è stato descritto nel 1967 come un modo semplice per ottenere la distruzione selettiva delle terminazioni nervose adrenergiche poiché le simpaticectomie chirurgiche nei piccoli animali non erano favorite23,24. Il 6-OHDA è una neurotossina catecolaminergica che si forma endogenamente nei pazienti con malattia di Parkinson e la sua tossicità deriva dalla sua capacità di formare radicali liberi e inibire la catena di trasporto degli elettroni nei mitocondri 30,31. Attraverso i meccanismi di trasporto dell’uptake-1 della noradrenalina, il 6-OHDA è in grado di accumularsi all’interno dei neuroni noradrenergici, come i neuroni simpatici postgangliari28. Alla fine, il neurone viene distrutto dal 6-OHDA; Tuttavia, i terminali del sistema nervoso periferico si rigenerano, con il ripristino dell’attività funzionale anche quando i livelli di ammina sono ancora ridotti. Soglie di dosaggio diverse sono presenti anche per diversi organi in risposta al 6-OHDA, e dosi più elevate di 6-OHDA hanno dimostrato di mostrare effetti più aspecifici, estendendo le sue conseguenze neurotossiche ai neuroni non contenenti catecolamine e persino alle cellule non neuronali. A parte i neuroni noradrenergici, i neuroni dopaminergici sono influenzati anche dal 6-OHDA29, rendendo la simpatectomia chimica in definitiva meno specifica per i neuroni simpatici postgangliari rispetto alla simpatectomia chirurgica.
Pertanto, una simpatectomia lombare chirurgica consente l’ablazione mirata dell’innervazione simpatica agli arti inferiori, che può essere combinata con una varietà di tecniche sperimentali e manipolazioni genetiche nel topo per studiare come il sistema nervoso simpatico contribuisce a vari stati di lesione e malattia.
I gangli simpatici lombari sono strutture molto piccole situate dietro molti organi addominali critici e grandi vasi. Pertanto, questa procedura richiede una precisione e un’accuratezza significative. Gran parte della difficoltà risiede nell’identificare i gangli simpatici intraoperatoriamente. Si suggerisce che lo studente sia in grado di identificare i gangli in un cadavere di topo prima di tentare questa procedura in un topo vivo. La risoluzione dei problemi sarà spesso necessaria quando si identificano i gangli sim…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato sostenuto dal NIH National Institute of Neurological Disorders and Stroke con il numero di premio K01NS124912 e in parte da una sovvenzione per lo sviluppo dell’Emory Specialized Center of Research Excellence in Sex Differences U54AG062334 finanziato dal NIH e dal Medical Scientist Training Program della Emory University School of Medicine. Grazie a David Kim, post-diploma di maturità, per il sezionamento dei nervi sciatici e a HaoMin SiMa, specialista di ricerca, per aver stampato in 3D un supporto per telefono per il nostro stereomicroscopio che ha permesso le riprese del video.
5-0 absorable suture | CP Medical | 421A | |
5-0 nylon suture | Med-Vet International | MV-661 | |
70% ethanol | Sigma-Aldrich | E7023-4L | |
Anesthesia Induction Chamber | Kent Scientific VetFlo | VetFlo-0530XS | |
Anesthesia Vaporizer | Kent Scientific VetFlo | 13-005-202 | |
Betadine | HealthyPets | BET16OZ | |
C57BL/6J mice | Jackson Laboratory | #000664 | |
Chicken anti-neurofilament-heavy | Abcam | ab72996 | |
Cryostat | Leica | CM1850 | |
Data Analysis Software | Prism | ||
Eye lubricant | Refresh | Refresh P.M. | |
Fine-tipped tweezers | World Precision Instruments | 500233 | |
Fluorescent microscope | Nikon | Ti-E | |
Goat anti-chicken 488 | Invitrogen | A32931 | |
Goat anti-rabbit 647 | Invitrogen | A21245 | |
Heating pad | Braintree Scientific | 39DP | |
Image Analysis Software | Fiji | ||
Imaging Software | Nikon | NIS-Elements | |
Isoflurane | Med-Vet International | RXISO-250 | |
Meloxicam | Med-Vet International | RXMELOXIDYL32 | |
Needle driver | Roboz Surgical Store | RS-7894 | |
Normal Goat Serum | Abcam | ab7481 | |
Phox2bCre:tdTomato mutant mice | Jackson Laboratory | #016223, #007914 | |
Pilocarpine hydrochloride | Sigma-Aldrich | P6503 | |
Rabbit anti-tyrosine hydroxylase | Abcam | ab112 | |
Small straight scissors | Fine Science Tools | 14084-09 | |
Sterile cotton swabs 2×2 | Dynarex | 3252 | |
Sterile cotton tipped applicators | Dynarex | 4301 | |
Sterile drape | Med-Vet International | DR4042 | |
Sterile saline solution | Med-Vet International | 1070988-BX | |
ThCre:mTmG mutant mice | Mutant Mouse Resource and Research Centers | strain #017262-UCD | Jackson Laboratory, strain #007576 |
ThCre:tdTomato mutant mice | European Mouse Mutant Archive | strain #00254 | Jackson Laboratory, strain #007914 |
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