概要

マウスの外科的腰椎交感神経切除術

Published: July 05, 2024
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概要

この原稿は、マウスから節後腰椎交感神経ニューロンを外科的に除去するためのプロトコルを示しています。この手順は、遠位組織標的における交感神経支配の役割を調査することを目的とした多数の研究を促進します。

Abstract

末梢神経損傷は一般的であり、損傷後の完全な機能回復は患者のわずか10%で達成されます。交感神経系は、身体の恒常性を維持する上で多くの重要な役割を果たしていますが、末梢神経損傷の文脈で研究されることはほとんどありませんでした。末梢の遠位標的における節後交感神経神経機能の程度は、現在のところ不明です。末梢標的の交感神経支配の役割をよりよく探求するために、外科的「ノックアウト」モデルは代替アプローチを提供します。これは化学的に達成できますが、節後交感神経ニューロンの化学的破壊は非特異的で用量依存的である可能性があります。マウスでの外科的腰椎交感神経切除術の使用は、かつては小動物では「事実上実行不可能」と考えられていましたが、後肢を神経支配する節後交感神経ニューロンの特異的な標的化を可能にします。この原稿では、生存手術としてマウスからL2-L5腰椎交感神経節を外科的に切除する方法について説明しており、これにより後足の汗反応と坐骨神経の交感神経軸索の数が確実に減少します。

Introduction

末梢神経損傷 (PNI) は、遠位組織ターゲットの運動障害、感覚障害、および交感神経障害を引き起こす可能性があり、完全に機能を回復することはめったにありません1。PNIの研究は、多くの場合、運動および感覚の再生に焦点を当ててきました。しかし、ラットの坐骨神経のほぼ4分の1は、無髄交感神経軸索で構成されています2。それにもかかわらず、末梢組織における交感神経支配の役割は完全には理解されていません3。交感神経系は、免疫調節、体温調節、血管緊張、ミトコンドリア生合成などに関与し、身体の恒常性を維持する上で主要な役割を果たしています4,5,6,7,8,9,10,11 .神経筋接合部での交感神経支配が失われると、運動ニューロン神経支配が維持されているにもかかわらず、持続的な筋力低下とシナプス不安定性が観察される12。神経筋接合部におけるシナプス伝達のこの交感神経制御は、加齢とともに減少することが示されており13,14、これは、筋肉量、力、およびパワーの加齢依存的な減少として定義されるサルコペニアに寄与する15。末梢組織の交感神経支配の役割をよりよく理解することは、PNIやその他の形態の交感神経機能障害患者の機能転帰を最適化する治療法の開発に必要です。

交感神経切除術は、遠位標的組織における交感神経支配の役割の調査を可能にする強力な実験ツールです。具体的には、L2-L5レベルの交感神経節を切除すると、下肢への交感神経支配の大部分が除去され、坐骨神経に関心のある研究者にとって特に有用です。

このプロトコルは、生存手術としてマウスからのL2-L5レベルの節後交感神経ニューロンの除去を詳述しています。この手順には、げっ歯類の顕微手術のスキルとマウスの解剖学への精通が必要であり、効果的に実施された場合、目に見える表現型の違いは引き起こされません。外科的腰椎交感神経切除術はげっ歯類の研究で使用されており、マウスよりもラットで使用されています16,17,18,19,20,21;しかし、そのプロトコルを記述した詳細なプロトコルは、現在存在しません。腰椎交感神経切除術を利用した以前の研究では、主に交感神経支配の役割に焦点を当てていました 痛みの反応、これは一般に、さまざまな神経損傷モデルで交感神経切除術によって弱められます。マウスでこの技術を使用した研究は少ないが、これはおそらく解剖学的ランドマークのサイズが小さいためであり、外科的交感神経切除術の使用は小動物では「事実上実行不可能」であると考えられていた23,24。微小交感神経切除術の形での限局性交感神経切除術は、げっ歯類モデルでも利用されており、これも主に疼痛行動の文脈で行われています25,26,27。微小交感神経切除術は、腰部交感神経全摘出術とは対照的に、特定の脊髄神経への灰色の枝の一部を切断して除去する背側アプローチを利用し、より広範な副作用を回避する非常に的を絞った交感神経切除術を可能にします。

マウスモデルは遺伝子操作を必要とする多くの研究にとって重要であるため、この手順は末梢神経損傷の範囲を超えて多用途に応用できます。経腹部アプローチを使用すると、腰椎交感神経節を確実に視覚化し、明らかな悪影響なしにマウスから切除できます。6-ヒドロキシドーパミン(6-OHDA)23,24の使用など、節後交感神経ニューロンの化学的破壊のためのプロトコルが利用可能ですが、この外科的処置は、節後腰椎交感神経節の解剖学的特異的な標的化を可能にします。外科的交感神経切除術の使用は、薬理学的方法に関連する非特異的で用量依存的な懸念も回避します28,29

6-OHDAの投与による化学的交感神経の使用は、小動物の外科的交感神経が好まれなかったため、アドレナリン作動性神経終末の選択的破壊を達成する簡単な方法として1967年に説明されました23,24。6-OHDAは、パーキンソン病患者に内因的に形成されるカテコールアミン作動性神経毒であり、その毒性は、フリーラジカルを形成し、ミトコンドリアの電子伝達鎖を阻害する能力に由来する30,31。ノルエピネフリンの取り込み-1輸送メカニズムを通じて、6-OHDAは節後交感神経細胞28などのノルアドレナリン作動性ニューロン内に蓄積することができる。最終的に、ニューロンは6-OHDAによって破壊されます。しかし、末梢神経系の終末は再生し、アミンレベルがまだ低下している場合でも機能的活動が回復します。6-OHDAに応答するさまざまな臓器に対して異なる投与量の閾値も存在し、高用量の6-OHDAはより非特異的な効果を示すことが示されており、その神経毒性の影響を非カテコールアミン含有ニューロン、さらには非ニューロン細胞にまで拡大します。ノルアドレナリン作動性ニューロンは別として、ドーパミン作動性ニューロンも6-OHDAの影響を受けます29、化学的交感神経切除術は最終的に外科的交感神経切除術よりも節後交感神経ニューロンへの特異的性が低くなります。

したがって、外科的腰椎交感神経切除術は、交感神経支配を下肢に的を絞ったアブレーションを可能にし、マウスのさまざまな実験技術や遺伝子操作と組み合わせて、交感神経系がさまざまな損傷や病状にどのように寄与しているかを研究することができます。

Protocol

すべての実験は、エモリー大学の動物実験委員会(IACUC)によって承認されました(IACUCプロトコル番号PROTO201700371の下で)。この研究では、14週齢、体重16〜21 gの4匹の成体雌野生型C57BL / 6Jマウスを使用しました。ここで使用する試薬や機器の詳細は 、材料表に記載されています。 1. 術前準備 手術器具をオートクレーブします:鋭利なハサミ1?…

Representative Results

このプロトコルは、マウスからの節後腰椎交感神経ニューロンの外科的除去を説明しています。2匹のマウスが腰椎交感神経切除術を受け、2匹のマウスが対照群として機能しました。外科的腰椎交感神経切除術を成功させるには、 図 1 に示すように、少なくとも L2 および L3 両側腰椎交感神経節の適切な視覚化を達成する必要があります。L4神経節とL5神経節の除去は、?…

Discussion

腰椎交感神経節は、多くの重要な腹部臓器や大きな血管の後ろにある非常に小さな構造です。したがって、この手順にはかなりの精度と精度が必要です。困難の多くは、術中に交感神経節を特定することにあります。学習者は、生きたマウスでこの手順を試みる前に、まずマウスの死体で神経節を特定できることをお勧めします。トラブルシューティングは、腸の迂回後に交感神経節を特定?…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、NIH国立神経疾患・脳卒中研究所(NIH National Institute of Neurological Disorders and Stroke)のK01NS124912賞と、NIHが資金提供するEmory Specialized Center of Research Excellence in Sex Difference U54AG062334およびEmory University School of MedicineのMedical Scientist Training Programからの開発助成金によって一部支援されました。坐骨神経の切片化を行った学士課程修了者のDavid Kim氏と、ビデオの撮影を可能にした実体顕微鏡の電話マウントを3Dプリントしてくれた研究スペシャリストのHaoMin SiMa氏に感謝します。

Materials

5-0 absorable suture CP Medical 421A
5-0 nylon suture Med-Vet International MV-661
70% ethanol Sigma-Aldrich E7023-4L
Anesthesia Induction Chamber Kent Scientific VetFlo VetFlo-0530XS
Anesthesia Vaporizer Kent Scientific VetFlo 13-005-202
Betadine HealthyPets BET16OZ
C57BL/6J mice Jackson Laboratory #000664
Chicken anti-neurofilament-heavy Abcam ab72996
Cryostat Leica CM1850
Data Analysis Software Prism
Fine-tipped tweezers World Precision Instruments 500233
Fluorescent microscope Nikon Ti-E
Goat anti-chicken 488 Invitrogen A32931
Goat anti-rabbit 647 Invitrogen A21245
Heating pad Braintree Scientific 39DP
Image Analysis Software Fiji
Imaging Software Nikon NIS-Elements
Isoflurane Med-Vet International RXISO-250
Meloxicam Med-Vet International RXMELOXIDYL32
Needle driver Roboz Surgical Store RS-7894
Normal Goat Serum Abcam ab7481
Ophthalmic ointment Refresh Refresh P.M.
Phox2bCre:tdTomato mutant mice Jackson Laboratory  #016223, #007914
Pilocarpine hydrochloride Sigma-Aldrich P6503
Rabbit anti-tyrosine hydroxylase Abcam ab112
Small straight scissors  Fine Science Tools 14084-09
Sterile cotton swabs 2×2 Dynarex 3252
Sterile cotton tipped applicators Dynarex 4301
Sterile drape Med-Vet International DR4042
Sterile saline solution Med-Vet International 1070988-BX
ThCre:mTmG mutant mice Mutant Mouse Resource and Research Centers strain #017262-UCD Jackson Laboratory, strain #007576
ThCre:tdTomato mutant mice European Mouse Mutant Archive strain #00254 Jackson Laboratory, strain #007914

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記事を引用
Tian, T., Ward, P. J. Surgical Lumbar Sympathectomy in Mice. J. Vis. Exp. (209), e66821, doi:10.3791/66821 (2024).

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