Summary

Sviluppo di un elettrodo per elettromiografia epimisiale a basso costo: un flusso di lavoro semplificato per la fabbricazione e il collaudo

Published: April 12, 2024
doi:

Summary

Il nostro scopo era quello di fornire una guida aggiornata e facile da seguire sulla fabbricazione e il collaudo degli elettrodi per elettromiografia epimisiaca. A tal fine, forniamo istruzioni per l’approvvigionamento dei materiali e una panoramica dettagliata del processo di fabbricazione e test.

Abstract

L’elettromiografia (EMG) è un prezioso strumento diagnostico per rilevare le anomalie neuromuscolari. Gli elettrodi epimisiali impiantabili sono comunemente usati per misurare i segnali EMG nei modelli preclinici. Sebbene esistano risorse classiche che descrivono i principi della fabbricazione di elettrodi epimisiali, c’è una scarsità di informazioni illustrative che traducono la teoria degli elettrodi in pratica. Per rimediare a questo problema, forniamo una guida aggiornata e facile da seguire sulla fabbricazione e il test di un elettrodo epimisiale a basso costo.

Gli elettrodi sono stati realizzati piegando e inserendo due lamine di platino-iridio in una base di silicone pretagliata per formare le superfici di contatto. Successivamente, i fili di acciaio inossidabile rivestiti sono stati saldati su ciascuna superficie di contatto per formare i cavi degli elettrodi. Infine, è stata utilizzata una miscela di silicone per sigillare l’elettrodo. Sono stati condotti test ex vivo per confrontare il nostro elettrodo fabbricato su misura con un elettrodo standard del settore in un bagno salino, dove sono stati riscontrati alti livelli di concordanza del segnale (seno [correlazione intraclasse – ICC= 0,993], quadrato [ICC = 0,995], triangolo [ICC = 0,958]) e sincronia temporale (seno [r = 0,987], quadrato [r = 0,990], triangolo [r = 0,931]) in tutte le forme d’onda. Bassi livelli di impedenza degli elettrodi sono stati quantificati anche tramite spettroscopia di impedenza elettrochimica.

È stata inoltre condotta una valutazione delle prestazioni in vivo in cui il muscolo vasto laterale di un ratto è stato strumentato chirurgicamente con l’elettrodo fabbricato su misura e la segnalazione è stata acquisita durante la camminata in salita e in discesa. Come previsto, il picco di attività EMG è stato significativamente inferiore durante la camminata in discesa (0,008 ± 0,005 mV) rispetto alla salita (0,031 ± 0,180 mV, p = 0,005), supportando la validità del dispositivo. L’affidabilità e la biocompatibilità del dispositivo sono state supportate anche da una segnalazione costante durante la camminata a livello a 14 giorni e 56 giorni dopo l’impianto (0,01 ± 0,007 mV, 0,012 ± 0,007 mV rispettivamente; p > 0,05) e dall’assenza di infiammazione istologica. Collettivamente, forniamo un flusso di lavoro aggiornato per la fabbricazione e il collaudo di elettrodi epimisici a basso costo.

Introduction

L’elettromiografia (EMG) è un potente strumento per studiare l’attività elettrica del muscolo. Le registrazioni EMG possono essere particolarmente utili nei modelli animali preclinici per valutare l’efficacia degli interventi per il trattamento della disfunzione neuromuscolare. In questi modelli, gli elettrodi biocompatibili impiantabili sono comunemente usati per valutare l’interfaccia neurofisiologica tra motoneuroni e fibre muscolari. Questi elettrodi impiantabili possono fornire misurazioni localizzate dell’eccitazione muscolare e possono essere diversi in termini di configurazione, forma e materiale, con il design ottimale dettato in ultima analisi dalla posizione e dall’uso previsto.

Nonostante la loro idoneità per valutare l’eccitazione muscolare nei modelli preclinici, l’uso di elettrodi epimisiali può essere limitato dal costo. Di conseguenza, molti ricercatori utilizzano elettrodi epimisici fabbricati su misura che vengono prodotti internamente. Sebbene esistano risorse che descrivono in dettaglio le considerazioni fondamentali della fabbricazione, del test e dell’uso degli elettrodi 1,2, è necessaria una guida didattica aggiornata che descriva in dettaglio l’approvvigionamento, la fabbricazione e la convalida degli elettrodi epimisici utilizzando metodi moderni. Sulla base dei lavori fondamentali di Loeb e Gans3 e di altri nella teoria degli elettrodi, presentiamo istruzioni moderne sull’approvvigionamento e la fabbricazione di elettrodi epimisici a basso costo e testiamo le loro prestazioni in una serie di esperimenti ex vivo e in vivo. L’obiettivo è quello di offrire una guida di facile utilizzo per gli altri membri della comunità scientifica per reperire, fabbricare e testare internamente elettrodi epimisici a basso costo per uso animale, consentendo la più ampia quantificazione dell’eccitazione muscolare nei modelli preclinici.

In questo protocollo, forniamo una guida didattica per l’approvvigionamento, la fabbricazione e il test di elettrodi epimisiali per uso animale nel moderno laboratorio di elettrofisiologia. I parametri dell’elettrodo scelti per la fabbricazione, come la forma, le dimensioni, l’area della superficie di contatto, la distanza tra gli elettrodi, la lunghezza dell’elettrocatetere e così via, sono stati selezionati per soddisfare le nostre esigenze sperimentali ed erano paragonabili a un elettrodo epimisiale standard del settore disponibile in commercio (vedere la Tabella dei materiali). Incoraggiamo altri gruppi a modificare questi parametri in base alle loro esigenze, oltre a selezionare un elettrodo standard del settore affidabile che corrisponda al loro caso d’uso.

Nel tentativo di dare ai lettori un’idea relativamente rapida delle prestazioni dell’elettrodo, forniamo anche un esempio di un protocollo di test ex vivo con l’opzione di misurare l’impedenza dell’elettrodo. Inoltre, forniamo un esempio di valutazione delle prestazioni degli elettrodi in vivo. L’esperimento ex vivo ha confrontato l’elettrodo fabbricato su misura con uno standard industriale in un bagno salino per imitare condizioni fisiologiche stabili. L’impedenza è stata valutata anche ex vivo tramite spettroscopia di impedenza elettrochimica (EIS). L’esperimento in vivo consisteva nell’impianto chirurgico dell’elettrodo fabbricato su misura nel muscolo vasto laterale (VL) di una femmina di ratto Long Evans di 16 settimane (HsdBlu: LE, Envigo) per misurare il segnale EMG durante condizioni note per suscitare un segnale alto o basso (camminata in salita, in discesa). Per valutare l’affidabilità dell’elettrodo fabbricato su misura, la segnalazione EMG è stata acquisita durante la camminata a livello dopo il completo recupero chirurgico e prima del sacrificio (rispettivamente 14 giorni e 56 giorni dopo l’impianto). La colorazione con ematossilina-eosina (H&E) è stata condotta sul muscolo strumentato per valutare la biocompatibilità dell’elettrodo fabbricato su misura.

Protocol

La procedura in vivo è stata condotta sotto l’approvazione dell’Institutional Animal Care & Use Committee dell’Università del Michigan (IACUC approval #PRO00010765) e in conformità con le linee guida del National Institutes of Health sulla cura e l’uso degli animali da laboratorio. 1. Approvvigionamento e fabbricazione di elettrodi NOTA: La Figura 1 fornisce un riepilogo di alto livello di tutte le fasi chiave della fa…

Representative Results

Prestazioni ex vivoGli ICC hanno rivelato alti livelli di accordo tra gli elettrodi fabbricati su misura e quelli standard del settore in tutte le forme d’onda (seno [ICC = 0,993], quadrato [ICC = 0,995], triangolo [ICC = 0,958]; p < 0,001). I grafici di Bland-Altman hanno anche rivelato un alto grado di accordo del segnale tra gli elettrodi. I grafici di Bland Altman e le correlazioni di Pearson sono riassunte nella Figura 3 con forti correlazioni positive tra …

Discussion

Il nostro obiettivo era quello di semplificare il processo di fabbricazione EMG, consentendo una più ampia adozione e implementazione di design di elettrodi epimisiali, promuovendo così l’accessibilità e facendo progredire la ricerca neuromuscolare. A tal fine, presentiamo una guida di facile utilizzo per l’approvvigionamento, la fabbricazione e il test di elettrodi epimisici a basso costo in-house. Nella speranza di supportare altri gruppi di ricerca, forniamo anche modelli di stampa 3D supplementari per facilitare l…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto dal National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases Grant R01AR081235 (a L. K. Lepley). Gli autori ringraziano le seguenti persone per il loro contributo alla fabbricazione e al collaudo del nostro elettrodo biocompatibile: Joel Pingel, Grant Gueller, Akhil Ramesh, Joe Letner, Jacky Tian e Ross Brancati.

Materials

Electrode Materials
            Quantity & price per electrode
Contact surface Prince and Izant PT90/IR10 1.25 mm x 5 mm foil Catalog #1040055  2 per electrode
$7.50 per foil
$15.00 per electrode
PFA coated stainless-steel electrode lead wire  A-M Systems Multi-Stranded PFA-Coated Stainless Steel Wire 50.8 µm strand diameter  Catalog #793500 Dependent on desired lead length (e.g., 9 inch lead wires x2)
$128 per 25 ft spool
$5.12 per foot
$0.42 per inch (x18)
$7.68 per electrode
Folding jig  3D printed
(see .gcode file)
NA NA
Sealant for electrode body Nusil Med-1137 liquid silicone Catalog #MED-1137 1 gram
$344.66 per 2 oz. (59.15 mL)
$5.83 per electrode
Silicone base Implantech Alliedsil Silicone Sheeting-Reinforced, Long Term Implantable (8” x 6”) .007 thick Catalog #701-07  10mm x 5mm sheet
$225.00 per 8 x 6 inch
$0.36 per electrode (10 mm x 5 mm)
 Thinner for sealant mixture Toluene 99.5% ACS Reagent 500mL or Xylene ACS 99.5% Catalog #179418-500 ML 0.75 mL
$25.53 per 500 mL
$0.38 per electrode
Template for perforating silicone base Cutting jig – 3D printed
(see CAD file)
NA NA
Custom-fabricated electrode: $29.25
Industry standard electrode (EP105 EMG Patch Electrode, 2 contacts, single-sided, 7mm x 4mm, MicroProbe for Life Science): $305.00
Additional Fabrication Materials 
               Quantity & price per electrode
3D printing software  Solidworks (Solidworks, 2022)
Micro-Tig welder  Micro-Tig Welder (CD1000SPM, Single Pulse Research and Light Production Resistance Spot Welder, Sunstone) SKU 301010 $3,500
Ultrasonic bath Ultrasonic bath (CPX Series Ultrasonic Bath, Fisherbrand).  15-337-403 NA
Ex Vivo Testing Materials 
            Quantity & price per electrode
Data acquisition platform and software DigitalLynx 4sX Base Cheetah version 6.0 (Neuralynx Inc.)  NA EMG acquisition hardware and software
Electrode interface board (EIB) EIB, EIB16-QC, Neuralynx Inc. 31-0603-0007 NA
Signal generator 5 MHz Function Generator, B&K Precision   4005DDS220V $387.46
Potentiostat PGSTAT1 potentiostat (EcoChemie, Utrecht, Netherlands) NA NA
Stainless steel screw Fine Science Tools 19010-00 $98
Ex Vivo Testing Materials 
            Quantity & price per electrode
Rodent treadmill  Exer 3/6 Open Treadmill, Columbus Instruments NA NA
Dental cement Excel Formula® Pourable Dental Material, St. George Technology Inc. #24211 $125.60
Light microscope Keyence BZ-X800, Keyence Corporation, Osaka, Japan  NA NA
Motion capture system Optitrack Color Camera, Optitrack, NaturalPoint Inc. NA NA
Peak detection algorithm “SciPy.signal.find_peaks – SciPy v1.8.1 Manual”, 2022 NA NA
Python software Python Software Foundation. Python Language Reference, version 3.9. Available at http://www.python.org NA NA
Rat HsdBlu: LE, Envigo 140 NA
Statistical sotware GraphPad Prism version 10.0.0 (GraphPad Software, Boston, Massachusetts USA) NA NA

Referencias

  1. Grandjean, P. A., Mortimer, J. T. Recruitment properties of monopolar and bipolar epimysial electrodes. Ann. Biomed. Eng. 14 (1), 53-66 (1986).
  2. Memberg, W. D., Stage, T. G., Kirsch, R. F. A fully implanted intramuscular bipolar myoelectric signal recording electrode. Neuromodulation J. Int. Neuromodulation Soc. 17 (8), 794-799 (2014).
  3. Loeb, G. E., Gans, C. . Electromyography for Experimentalists. , (1986).
  4. Boehler, C., Carli, S., Fadiga, L., Stieglitz, T., Asplund, M. Tutorial: guidelines for standardized performance tests for electrodes intended for neural interfaces and bioelectronics. Nat. Protoc. 15 (11), 3557-3578 (2020).
  5. Patel, P. R., et al. Insertion of linear 8.4 µm diameter 16 channel carbon fiber electrode arrays for single unit recordings. J. Neural Eng. 12 (4), 046009 (2015).
  6. Richie, J. M., et al. Open-source toolkit: benchtop carbon fiber microelectrode array for nerve recording. J. Vis. Exp. (176), e63099 (2021).
  7. Sarolic, A., Skalic, I., Deftu, A., Sapunar, D. Impedance measurement of bipolar stimulation electrodes immersed in medium. , 1-2 (2018).
  8. Pritchett-Corning, K. R., Mulder, G. B., Luo, Y., White, W. J. Principles of rodent surgery for the New Surgeon. J. Vis. Exp.: JoVE. (47), e2586 (2011).
  9. Zealear, D., Li, Y., Huang, S. An implantable system for chronic in vivo electromyography. J. Vis. Exp. JoVE. (158), e60345 (2020).
  10. Butterfield, T. A., Leonard, T. R., Herzog, W. Differential serial sarcomere number adaptations in knee extensor muscles of rats is contraction type dependent. J. Appl. Physiol. Bethesda Md 1985. 99 (4), 1352-1358 (2005).
  11. Farago, E., MacIsaac, D., Suk, M., Chan, A. D. C. A review of techniques for surface electromyography signal quality analysis. IEEE Rev. Biomed. Eng. 16, 472-486 (2023).
  12. Raez, M. B. I., Hussain, M. S., Mohd-Yasin, F. Techniques of EMG signal analysis: detection, processing, classification and applications. Biol. Proced. Online. 8, 11-35 (2006).
  13. Tankisi, H., et al. Standards of instrumentation of EMG. Clin. Neurophysiol. 131 (1), 243-258 (2020).
  14. Kumar, A., Accorsi, A., Younghwa, R., Mahasweta, G. Do’s and don’ts in the preparation of muscle cryosections for histological analysis. J. Vis. Exp. JoVE. (99), e52793 (2015).
  15. Wang, C., Yue, F., Kuang, S. Muscle histology characterization using H&E staining and muscle fiber type classification using immunofluorescence staining. Bio-Protoc. 7 (10), e2279 (2017).
  16. Kreifeldt, J. G. Signal versus noise characteristics of filtered EMG used as a control source. IEEE Trans. Biomed. Eng. BME-18 (1), 16-22 (1971).
  17. Farina, D., Yoshida, K., Stieglitz, T., Koch, K. P. Multichannel thin-film electrode for intramuscular electromyographic recordings. J. Appl. Physiol. 104 (3), 821-827 (2008).
  18. Muceli, S., et al. Decoding motor neuron activity from epimysial thin-film electrode recordings following targeted muscle reinnervation. J. Neural Eng. 16 (1), 016010 (2018).
  19. Guo, L., Guvanasen, G., Tuthill, C., Nichols, T., Deweerth, S. . Characterization of a Stretchable Multielectrode Array for Epimysial Recording. , 694 (2011).
  20. Zwarts, M. J., Stegeman, D. F. Multichannel surface EMG: basic aspects and clinical utility. Muscle Nerve. 28 (1), 1-17 (2003).
  21. Koch, K. P., Leinenbach, C., Stieglitz, T. Fabrication and test of robust spherical epimysial electrodes for lower limb stimulation. Aalb. Den. , (2000).
  22. Uhlir, J. P., Triolo, R. J., Davis, J. A., Bieri, C. Performance of epimysial stimulating electrodes in the lower extremities of individuals with spinal cord injury. IEEE Trans. Neural Syst. Rehabil. Eng. 12 (2), 279-287 (2004).
  23. Deer, T. R., et al. The appropriate use of neurostimulation: new and evolving neurostimulation therapies and applicable treatment for chronic pain and selected disease states. Neuromodulation Technol. Neural Interface. 17 (6), 599-615 (2014).
  24. Ortiz-Catalan, M., Brånemark, R., Håkansson, B., Delbeke, J. On the viability of implantable electrodes for the natural control of artificial limbs: Review and discussion. Biomed. Eng. OnLine. 11, 33 (2012).
  25. Sando, I. C., et al. Regenerative peripheral nerve interface for prostheses control: electrode comparison. J. Reconstr. Microsurg. 32 (3), 194-199 (2016).
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Stoneback, L., Fullano, G. D., White, M. S., Naaz, S., Lepley, L. K. Development of a Low-cost Epimysial Electromyography Electrode: A Simplified Workflow for Fabrication and Testing. J. Vis. Exp. (206), e66744, doi:10.3791/66744 (2024).

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