Summary

التجميع الذاتي للأغشية الدهنية الهجينة مخدر مع جزيئات عضوية اغذية في المياه / الهواء واجهة

Published: May 01, 2020
doi:

Summary

نحن تقرير بروتوكول لإنتاج غشاء الدهون الهجين في المياه / الهواء واجهة عن طريق المنشطات ثنائي الدهون مع النحاس (II) 2،9،16،23-tetra-tert-butyl-29H، 31H-phthalocyanine (CuPc) جزيئات. غشاء الدهون الهجين الناتجة لديها الدهون / CuPc / هيكل شطيرة الدهون. ويمكن أيضا تطبيق هذا البروتوكول على تشكيل المواد النانوية الوظيفية الأخرى.

Abstract

بسبب خصائصها الفريدة، بما في ذلك سمك فائقة (3-4 نانومتر)، مقاومة فائقة، سيولة وقدرة على التجمع الذاتي، يمكن أن تكون ثنائية الدهون وظيفية بسهولة واستخدمت في تطبيقات مختلفة مثل أجهزة الاستشعار الحيوية والأجهزة الحيوية. في هذه الدراسة، قدمنا جزيء عضوي مُنطَّع: النحاس (II) 2,9,16,23-tetra-tert-butyl-29H,31H-phthalocyanine (CuPc) لأغشية الدهون المخدرة. وCuPc / الدهون غشاء الأشكال الهجين في المياه / الهواء واجهة عن طريق التجميع الذاتي. في هذا الغشاء، وتقع جزيئات CuPc مسعور بين ذيول مسعور من جزيئات الدهون، وتشكيل الدهون / CuPc / هيكل شطيرة الدهون. ومن المثير للاهتمام، يمكن أن تكون ثنائية الدهون الهجينة مستقرة الهواء بسهولة عن طريق نقل الغشاء الهجين على الركيزة Si. نحن الإبلاغ عن طريقة واضحة لدمج المواد النانوية في نظام ثنائي الطبقات الدهون، والذي يمثل منهجية جديدة لتصنيع أجهزة الاستشعار البيولوجية والكافات الحيوية.

Introduction

كأطر أساسية لأغشية الخلايا ، يتم فصل داخل الخلايا من الخارج من خلال نظام ثنائي الطبقات الدهنية. هذا النظام يتكون من phospholipids amphiphilic ، والتي تتكون من هيدروفيلي الفوسفورية إستر “رؤساء” والأحماض الدهنية ampphobic “ذيول”. نظرا للسيولة ملحوظا وقدرة التجميع الذاتي من ثنائيات الدهون في بيئة مائي1,2, يمكن تشكيل ثنائي الدهون الاصطناعي باستخدام أساليب بسيطة3,4. وقد أدرجت أنواع مختلفة من البروتينات الأغشية، مثل قنوات الأيونات، مستقبلات الأغشية والإنزيمات، في ثنائي الدهون الاصطناعية لتقليد ودراسة وظائف أغشية الخلايا5،6. في الآونة الأخيرة، وقد تم دس ثنائيات الدهون مع المواد النانوية (على سبيل المثال، الجسيمات النانوية المعدنية، الجرافين، والأنابيب النانوية الكربونية) لتشكيل أغشية هجينة وظيفية10،11،12،13. وهناك طريقة تستخدم على نطاق واسع لتشكيل مثل هذه الأغشية الهجين ينطوي على تشكيل vesicles الدهون مخدر, التي تحتوي على مواد مبيدة للماء مثل جسيمات Au-nano7 المعدلة أو الأنابيب النانوية الكربون11, ثم يتم تنصهر vesicles الناتجة في ثنائيات الدهون المدعومة من ألواح. ومع ذلك، فإن هذا النهج معقد ويستغرق وقتا طويلا، مما يحد من الاستخدامات المحتملة لمثل هذه الأغشية الهجينة.

في هذا العمل، تم غمس أغشية الدهون مع جزيئات عضوية لإنتاج أغشية الدهون الهجينة التي تشكلت في المياه / الهواء واجهة عن طريق التجميع الذاتي. يتضمن هذا البروتوكول ثلاث خطوات: إعداد الحل المختلط، وتشكيل غشاء هجين في واجهة الماء/الهواء، ونقل الغشاء إلى الركيزة SI. وبالمقارنة مع الأساليب الأخرى التي تم الإبلاغ عنها سابقاً، فإن الطريقة الموصوفة هنا أبسط ولا تتطلب أجهزة متطورة. باستخدام هذه الطريقة، يمكن تشكيل أغشية الدهون الهجينة المستقرة الهواء مع مساحة أكبر في وقت أقصر. المواد النانوية المستخدمة في هذه الدراسة هي جزيء عضوي شبه الموصلة، النحاس (II) 2،9،16،23-tetra-tert-butyl-29H،31H-phthalocyanine (CuPc)، والذي يستخدم على نطاق واسع في عدد من التطبيقات، بما في ذلك الخلايا الشمسية، الضوئيات وأجهزة الاستشعار الغاز وحفز14،15. CuPc، جزيء عضوي صغير مع بنية قارئة، لديه تقارب عالية ل “ذيول” الثنائي فوسفوليبيدس لخصائصه المهضّمة. وأفادت مجموعات أخرى أن الجزيئات CuPc يمكن تجميع الذاتي على الأسطح أحادية الكريستال مع تشكيل هياكل أمر عال16،17. ولذلك، فمن الممكن جدا أن جزيئات CuPc يمكن دمجها في ثنائيات الدهون من خلال التجميع الذاتي.

نقدم وصفا مفصلا للإجراءات المستخدمة لتشكيل الأغشية وتقديم بعض الاقتراحات لتنفيذ هذا الإجراء بسلاسة. بالإضافة إلى ذلك، نقدم بعض النتائج الحالية للأغشية الدهنية الهجينة، ومناقشة التطبيقات المحتملة لهذه الطريقة.

Protocol

1- إعداد حل هجين غسل أربع قوارير الزجاج 4 مل المتاح وقبعات المسمار (مع الأختام المغلفة PTFE) في حمام بالموجات فوق الصوتية لمدة 10 دقيقة في الماء المقطر (تنقية مع نظام الترشيح)، تليها الإيثانول والكلوروفورم، على التوالي. جفف قوارير الزجاج والقبعات في تيار من غاز النيتروجين. في صندوق ا?…

Representative Results

كما شكلت غشاء له لون أزرق فاتح موحد بسبب وجود جزيئات CuPc. عادة ما تكون مساحة الغشاء الملون عدة سنتيمترات مربعة. في الشكل 1A والشكل 1B، نعرض صورة مجهرية وصورة مجهر القوة الذرية (AFM) (بما في ذلك ملف تعريف الارتفاع) لغشاء الدهون الهجين على الركيزة Si. في صورة AFM ، يكون …

Discussion

في حل السلائف للغشاء الهجين، يتم استخدام مذيب عضوي مختلط (الكلوروفورم والهيكسان) بدلاً من الكلوروفورم النقي لإذابة الدهون وCub. وإذا استخدم الكلوروفورم النقي، فإن كثافة محلول السلائف ستكون أعلى من الماء. ولذلك، فمن المرجح جدا أن المحل بالوعة إلى قاع المياه بدلا من أن تنتشر على سطح الماء. إض…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وقد تم دعم هذا العمل من قبل برنامج CREST من الوكالة اليابانية للعلوم والتكنولوجيا (JPMJCR14F3) و غرانت في الإيدز من الجمعية اليابانية لتعزيز العلوم (19H00846 و 18K14120). وقد تم تنفيذ هذا العمل جزئيا في مختبر الإلكترونيات النانوية وS spintronics، معهد بحوث الاتصالات الكهربائية، جامعة توهوكو.

Materials

Chloroform Wako Chemicals 033-08631
CuPc Sigma-Aldrich 423165
DPhPc Avanti Polar Lipids 850356C
Glass vials with screw cap Nichiden-Rike Glass Co., Ltd 6-29801
Hexane Wako Chemicals 084-03421
Membrane filters Merck Millipore Ltd. R8CA42836
Micro-syringe Hamilton 80530
Peristaltic pump Tokyo Rikakikai Co., Ltd. 11914199
Vortex mixer Scientific Industries, Inc. SI-0286

Referencias

  1. Israelachvili, J. N., Mitchell, D. J., Ninham, B. W. Theory of self-assembly of lipid bilayers and vesicles. Biochimica Et Biophysica Acta-Biomembranes. 470 (2), 185-201 (1977).
  2. Venable, R. M., Zhang, Y., Hardy, B. J., Pastor, R. W. Molecular dynamics simulations of a lipid bilayer and of hexadecane: an investigation of membrane fluidity. Science. 262 (5131), 223-226 (1993).
  3. Ide, T., Ichikawa, T. A novel method for artificial lipid-bilayer formation. Biosensors and Bioelectronics. 21 (4), 672-677 (2005).
  4. Funakoshi, K., Suzuki, H., Takeuchi, S. Lipid bilayer formation by contacting monolayers in a microfluidic device for membrane protein analysis. Analytical Chemistry. 78 (24), 8169-8174 (2006).
  5. Kongsuphol, P., Fang, K. B., Ding, Z. Lipid bilayer technologies in ion channel recordings and their potential in drug screening assay. Sensors and Actuators B: Chemical. 185, 530-542 (2013).
  6. Demarche, S., Sugihara, K., Zambelli, T., Tiefenauer, L., Voros, J. Techniques for recording reconstituted ion channels. Analyst. 136 (6), 1077-1089 (2011).
  7. Sakaguchi, N., Kimura, Y., Hirano-Iwata, A., Ogino, T. Fabrication of Au-nanoparticle-embedded lipid bilayer membranes supported on solid substrates. The Journal of Physical Chemistry B. 121 (17), 4474-4481 (2017).
  8. Schulz, M., Olubummo, A., Binder, W. H. Beyond the lipid bilayer: interaction of polymers and nanoparticles with membranes. Soft Matter. 8 (18), 4849-4864 (2012).
  9. Wang, J., Wei, Y., Shi, X., Gao, H. Cellular entry of graphene nanosheets: the role of thickness, oxidation and surface adsorption. RSC Advances. 3 (36), 15776-15782 (2013).
  10. Vögele, M., Köfinger, J., Hummer, G. Molecular dynamics simulations of carbon nanotube porins in lipid bilayers. Faraday Discussions. 209, 341-358 (2018).
  11. Kanomata, K., Deguchi, T., Ma, T., Haseyama, T., Miura, M., Yamaura, D., Tadaki, D., Niwano, M., Hirano-Iwata, A., Hirose, F. Photomodulation of electrical conductivity of a PCBM-doped free-standing lipid bilayer in buffer solution. Journal of Electroanalytical Chemistry. 832, 55-58 (2019).
  12. Barnoud, J., Rossi, G., Monticelli, L. Lipid Membranes as Solvents for Carbon Nanoparticles. Physical Review Letters. 112, 068102 (2014).
  13. Dichello, G. A., et al. Preparation of liposomes containing small gold nanoparticles using electrostatic interactions. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 105, 55-63 (2017).
  14. Sullivan, P., Heutz, S., Schultes, S. M., Jones, T. S. Influence of codeposition on the performance of CuPc−C60 heterojunction photovoltaic devices. Applied Physics Letters. 84 (7), 1210-1212 (2004).
  15. Miyata, T., Kawaguchi, S., Ishii, M., Minami, T. High sensitivity chlorine gas sensors using Cu−phthalocyanine thin films. Thin Solid Films. 425 (1-2), 255-259 (2003).
  16. Barrena, E., de Oteyza, D. G., Dosch, H., Wakayama, Y. 2D supramolecular self-assembly of binary organic monolayers. ChemPhysChem. 8 (13), 1915-1918 (2007).
  17. Xiao, K., et al. Surface-induced orientation control of CuPc molecules for the epitaxial growth of highly ordered organic crystals on graphene. Journal of the American Chemical Society. 135 (9), 3680-3687 (2013).
  18. Feng, X., Ma, T., Yamaura, D., Tadaki, D., Hirano-Iwata, A. Formation and characterization of air-stable lipid bilayer membranes incorporated with phthalocyanine molecules. The Journal of Physical Chemistry B. 123 (30), 6515-6520 (2019).
  19. Wu, Y., He, K., Ludtke, S. J., Huang, H. W. X-ray diffraction study of lipid bilayer membranes interacting with amphiphilic helical peptides: diphytanoyl phosphatidylcholine with alamethicin at low concentrations. Biophysical Journal. 68 (6), 2361-2369 (1995).
  20. Zaitseva, S. V., Bettini, S., Valli, L., Kolker, A. M., Borovkov, N. Y. Atypical film-forming behavior of soluble tetra-3-nitro-substituted copper phthalocyanine. ChemPhysChem. 20 (3), 422-428 (2019).
  21. Ghani, F., Gojzewski, H., Riegler, H. Nucleation and growth of copper phthalocyanine aggregates deposited from solution on planar surfaces. Applied Surface Science. 351, 969-976 (2015).

Play Video

Citar este artículo
Feng, X., Ma, T., Tadaki, D., Hirano-Iwata, A. Self-Assembly of Hybrid Lipid Membranes Doped with Hydrophobic Organic Molecules at the Water/Air Interface. J. Vis. Exp. (159), e60957, doi:10.3791/60957 (2020).

View Video