L’analyse double de règle d’ADN est développée pour déterminer la position d’ARNm pendant la translocation de ribosome, qui s’appuie sur les forces de dissociation des duplex d’ADN-ARNm formés. Avec la résolution d’un nucléotide simple et la capacité d’atteindre les deux extrémités de l’ARNm, il peut fournir des aperçus mécanistes pour la translocation de ribosome et sonder d’autres déplacements d’acide nucléique.
La translocation ribosome se réfère au mouvement ribosomal sur l’ARNm par exactement trois nucléotides (nt), qui est l’étape centrale dans la synthèse des protéines. Pour étudier son mécanisme, il y a deux exigences techniques essentielles. La première est la résolution mono-nt qui peut résoudre la translocation normale de frameshifting, au cours de laquelle le ribosome se déplace par d’autres que 3 nt. La deuxième est la capacité de sonder à la fois les côtés d’entrée et de sortie de l’ARNm afin d’élucider l’ensemble de l’image de la translocation. Nous rapportons l’analyse de règle d’ADN double qui est basée sur les forces critiques de dissociation des duplex d’ADN-ARNm, obtenues par spectroscopie de magnétisation résiduelle induite par la force (FIRMS). Avec la résolution de force de 2-4 pN, l’assay de double règle est suffisant pour distinguer différentes étapes de translocation. En mettant en œuvre un long lien sur les ANN sondants, ils peuvent atteindre l’ARNm de l’autre côté du ribosome, de sorte que la position de l’ARNm peut être déterminée pour les deux côtés. Par conséquent, l’exemple de règle double est particulièrement adapté pour étudier la translocation ribosome, et le mouvement de l’acide nucléique en général. Nous montrons des résultats représentatifs qui ont indiqué une conformation d’ARNm en boucle et résolu la translocation normale du changement de cadre.
Le déplacement biomoléculaire est un paramètre fondamental dans l’étude du mécanisme des fonctions biologiques connexes. Un exemple particulier est la translocation ribosome1,2, au cours de laquelle le ribosome se déplace par exactement trois nucléotides (nt) sur l’ARN messager (ARNm) normalement, et par un, deux, ou d’autres nombres de nt sauf trois dans le cas de frameshifting. Par conséquent, une résolution mono-nt du système de règle moléculaire est nécessaire pour distinguer les différentes tailles d’étape. Un plus grand défi est de sonder le mouvement ribosome sur les côtés d’entrée et de sortie. En d’autres termes, ce n’est qu’avec un système de double règle que nous serons en mesure de révéler si l’ARNm est fileté en douceur à travers le ribosome, ou il ya des étapes intermédiaires dans lesquelles les deux côtés ont des tailles d’étapes différentes conduisant à une conformation arnde plissée ou en boucle à l’intérieur de la Ribosome.
Plusieurs méthodes ont été développées pour relever le premier défi de résoudre différentes étapes sur le côté de sortie du ribosome (l’extrémité 3′ de l’ARNm). Le double bifuséré résout les différents cadres de lecture en mesurant les rapports des différentes protéines résultantes3,4. Il n’est applicable que pour la fin 3′ de l’ARNm et donc insuffisant pour fournir une image complète de la translocation. La spectrométrie de masse peut analyser les différents fragments de peptides comme conséquence des réarrangements de code correspondants5. Mais il ne peut pas identifier combien nt le ribosome se déplace sur l’ARNm. L’assay d’impression d’orteil est une autre méthode commune qui emploie une transcriptase inverse amorcée àl’extrémité 3′-distal pour transcrire l’ARNm vers le ribosome 6. Cependant, il n’est pas applicable pour la fin de 5′ de l’ARNm qui entre dans le ribosome. D’autres techniques, y compris les approches à molécule unique et les méthodes de fluorescence7, sont difficiles à atteindre une résolution unique.
Nous avons développé le double test de règle d’ADN qui peut déterminer de façon unique les positions d’entrée et de sortie de l’ARNm découvert dans les complexes ribosome-mRNA. Les ADN souverains sont des oligomères de l’ADN qui forment des duplex de certains nombres de paires de base (bp) avec l’ARNm découvert par le ribosome, quelle que soit l’extrémité de l’ARNm. Les nombres de bp révèlent alors précisément la position de ribosome sur l’ARNm pendant la translocation. Les nombres de bp des duplex sont déterminés par leurs forces critiques de dissociation obtenues à partir de la spectroscopie de magnétisation résiduelle induite par la force (FIRMS)8. Avec l’incertitude de la force de 2-3 pN, les forces critiques sont suffisantes pour offrir la résolution simple-nt. En mettant en œuvre une molécule de liaison sur les règles d’ADN, le côté stérilement entravé de l’ARNm par le ribosome peut être sondé. Différents déplacements ribosomal peuvent ainsi être résolus avec précision. Nous avons avec succès révélé une conformation unique en boucle de l’ARNm piégé par les antibiotiques au cours de la translocation9, et résolu différents cadres de lecture qui coexistaient sur une séquence d’ARNm glissante10. Cet article décrit les détails de l’essai de règle double, qui incluent la préparation des complexes de ribosome, la fonctionnalisation de surface des glissières en verre, l’immobilisation des complexes de ribosome et leur hybridation avec la règle magnétiqued d’ADN molécules, la détection magnétique et l’analyse du spectre de force par firms.
Dans notre double test de règle, les perles magnétiques jouent deux rôles essentiels. Premièrement, ils servent de transducteurs de force parce que la force centrifuge est proportionnelle à leur masse flottante. Deuxièmement, les perles sont des porteurs de signaux détectés par un magnétomètre atomique, qui est actuellement le capteur magnétique le plus précis. Combinant manipulation mécanique et détection magnétique, la technique FIRMS est capable de résoudre un grand nombre d’interactions moléculaires …
The authors have nothing to disclose.
Ce travail est soutenu par les National Institutes of Health des États-Unis (R01GM111452, Y.W., S.X.). Y. W. reconnaît le soutien de la Fondation Welch (E-1721).
Styrene Strip | City of Industry | MS-861 | |
Glass slides | Evaporated Coatings | 60.0 × 4.0 × 0.3 mm3 | |
Acetic acid | Millipore Sigma | A6283-500ML | |
3-Aminopropyltriethoxysilane | UCT specialties | 21400088 | |
mPEG-SVA | Laysan Bio | 154-82 | |
Biotin-PEG-SVA | Laysan Bio | 152-84 | |
Sodium bicarbonate | Millipore Sigma | S5761-500G | |
Epoxy glue | Devcon | 31345 | |
Streptavidin | ThermoFisher | 434301 | |
Fusidic Acid | Millipore Sigma | F0756-1G | |
Neomycin Sulfate | Millipore Sigma | 1458009 | |
Viomycin Sulfate | Millipore Sigma | 1715000 | |
Hygromycin | invitrogen | 10687-010 | |
Tris-HCl | Millipore Sigma | T5941-100G | |
Magnesium acetate | Millipore Sigma | M5661-50G | |
Ammonium chloride | Millipore Sigma | A9434-500G | |
Potassium chloride | Millipore Sigma | P9333-500G | |
EDTA | GIBCO | 774750 | |
2-mercaptoethanol | Millipore Sigma | M6250-500ML | |
Tween20 | Millipore Sigma | P1379-250ML | |
GTP | Millipore Sigma | G8877-100MG | |
PEP | Millipore Sigma | P7127-100MG | |
Pyruvate Kinase | Millipore Sigma | P1506-5KU | |
Sucrose | Millipore Sigma | S7903-5KG | |
Dynabeads M-280 Streptavidin | ThermoFisher | 11205D | |
mRNA Oligo | Integrated DNA Technologies | 133899727 | 5′-Bio- CAA CUG UUA AUU AAA UUA AAU UAA AAA GGA AAU AAAA AUG UUU AAU UUU UUA GGG CGC AAU CUA CUG CUG AAC UC-3′ |
DNA Oligo | Integrated DNA Technologies | 157468630 | 3ʹ- TAA TTT AAT TTA ATT TTT CGA AAU AT50/TEGBio/-5ʹ |
DNA Oligo | Integrated DNA Technologies | 164845370 | 3ʹ-AAT TTA ATT TTT CCT TTA AAA AT50/TEGBio/-5’ |
DNA Oligo | Integrated DNA Technologies | 157468628 | 3ʹ-AAA ATC CCG CGT TAG AAC UGG GG/TEGBio/-5’ |
DNA Oligo | Integrated DNA Technologies | 163472705 | 3ʹ-CCG CGT TAG ATG ACG AGA ACG GG/TEGBio/-5’ |
DNA Oligo | Integrated DNA Technologies | 138678130 | 3ʹ-AGA TGA CGA CTT CTC GGG/TEGBio/-5’ |
DNA Oligo | Integrated DNA Technologies | 138678131 | 3ʹ-T AGA TGA CGA CTT CTC GGG/TEGBio/-5’ |
DNA Oligo | Integrated DNA Technologies | 138678132 | 3ʹ-TT AGA TGA CGA CTT CTC GGG/TEGBio/-5ʹ |
DNA Oligo | Integrated DNA Technologies | 138678133 | 3ʹ-GTT AGA TGA CGA CTT CTC GGG/TEGBio/-5’ |
Centrifuge | Eppendorf | 5427R | |
Micro Ultracentrifuge | Hitachi | CS150FNX | |
Vortex mixer | VWR | VM-3000 | |
Lock-in Amplifier | Stanford Research Systems | SR530 | |
Lock-in Amplifier | Stanford Research Systems | SR830 | |
Laser | Newport | TLB-6918-D | |
Function generator | Stanford Research Systems | DS345 | |
Photo detectors | Thorlabs | DET36A |