Summary

Kvantificering af monocyt Transmigration og skum celle dannelse fra personer med kroniske betændelsestilstande

Published: October 17, 2017
doi:

Summary

Vi beskriver en protokol for at måle transmigration af monocytter på tværs af menneskelige endotel monolag og deres efterfølgende modning i skum celler. Dette giver en alsidig metode at vurdere egenskaberne atherogene af monocytter isoleret fra folk med forskellige sygdomstilstande og evaluere faktorer i blodet, som kan forbedre denne tilbøjelighed.

Abstract

Koronararteriesygdom (CAD) er en førende årsag til sygelighed og dødelighed på verdensplan. Åreforkalkning, en førende årsag til CAD, er initieret af transmigration af medfødte immun monocytter til inflammatoriske websteder af deponerede lipid kaldet fede striber, som er til stede i arteriel vægge af medium til store arterier. Patogene hovedaksen i læsioner på dette tidlige stadium af åreforkalkning er en modning af monocytter, som vandrer ind i arterierne til at danne skum celler eller lipid-laden makrofager. Betydelige beviser støtter den hypotese, at risikoen for åreforkalkning er steget med kroniske betændelsestilstande ledsagende sygdomme som leddegigt og HIV, samt generel aldring, og at denne risiko er forudsagt af monocyt aktivering. Mens musen modeller giver en god platform for at undersøge rollen af monocytter i atherogenesis i vivo, de kræver genetisk ændring af naturlige kolesterol metabolisme og drastiske ændring af normal mus kost, og har begrænset anvendelsesegnethed undersøgelse af atherogene påvirkninger af menneskers komorbide sygdomme. Dette motiverede os til at udvikle en menneskelig in vitro- model for at måle den atherogene potentiale af monocytter isoleret fra personer med definerede sygdomstilstande. I øjeblikket begrænser menneskelige in vitro- modeller i at de vurdere monocyt transmigration og skum celle dannelse i isolation. Her beskriver vi en protokol som monocytter isoleret fra patientens blod transmigrate i endothelial celler ind i en type 1 kollagen matrix, og deres tilbøjelighed til at modnes i skum celler i tilstedeværelse eller fravær af eksogene lipid måles. Protokollen er blevet valideret for brugen af humane monocytter renset fra personer med HIV-infektion og ældre HIV inficerede individer. Denne model er alsidig og giver mulighed for monocyt transmigration og skum celle dannelse skal vurderes ved hjælp af enten mikroskopi eller flowcytometri samt giver mulighed for vurdering af atherogene faktorer til stede i serum eller plasma.

Introduction

Monocyt transmigration er et afgørende skridt i udviklingen af aterosklerotiske plak, der kan føre til blodpropper, slagtilfælde og myokardieinfarkt. Aterosklerotiske plaques udvikle fra fede striber, generelt findes på lokaliteter af lav oscillerende blodgennemstrømningen i medium til store arterier, hvor deponerede lipid bidrager til endotel aktivering og lokaliseret betændelse1. Monocytter rekrutteres i endothelial celler i fede striber via monocyt kemotaktisk proteiner (f.eks CCL2) og transmigrate i intima2. Efter transmigration, kan monocytter danne atherogene, lipid-laden makrofager kaldet skum celler som følge af lipid optagelse, lipid syntese, ned-regulering af cholesterol efflux eller en kombination af de ovennævnte faktorer. Monocytter kan også ophobes lipider i omløb og har en ‘skummende’ fænotype, eventuelt disponerende celler for skum celle dannelse3,4. Skum celler er den definerende funktion af fede striber og tidlige aterosklerotiske plaques og deres dannelse er påvirket af både lipid og inflammatoriske mediatorer5. Alternativt, monocytter har evnen til at vende transmigrate fra arterie i blodbanen6, derved fjerne lipid fra intima og handler for at bevare sundheden af arterie.

Bestemmelse af tilbøjelighed af monocytter til transmigrate på tværs af arteriel endothelium og danne skum celler i intima, eller at vende transmigrate og bære lipid ud af plak, er en afgørende forudsætning for forståelse af monocyt aktivering i stigende rolle aterosklerotisk risiko. Musemodeller af CADs som åreforkalkning er vigtige i belyse real-time i vivo oplysninger på fede streak/aterosklerotisk plaque udvikling. Disse modeller kræver imidlertid en genetisk ændring af naturlige kolesterol forarbejdning evner af disse dyr, som regel kombineret med drastiske ændringer i kost (såsom ApoE-/-Western-type diæt model)7,8, dermed, inducerende ikke-fysiologisk ophobning af cirkulerende lipid niveauer som drev plaque udvikling. Disse modeller kan have begrænset relevans for kroniske inflammatoriske menneskelige lidelser såsom HIV-infektion som ikke er forbundet med øget cirkulerer kolesterol eller low-density lipoprotein (LDL) niveauer. Desuden forskelle i monocyt biologi mellem mennesker og mus gør testning af immunologiske spørgsmål om relevansen af delpopulationer af monocytter (såsom mellemliggende monocytter (CD14++CD16+))9 vanskeligt. Dette er vigtigt, når man studerer de mekanismer, der er drivkraften bag hjerte-kar-sygdom som mellemliggende monocyt tæller forudsige uafhængigt kardiovaskulære hændelser10,11. Mens assays eksisterer for at sekventielt måle enten monocyt transmigration eller skum celle dannelse i isolation, er ingen i vitro assay blevet valideret for kvantificering af begge aspekter af tidlig atherogenesis ved hjælp af de samme celler fra kliniske kohorter. Transwell modeller udnytte en modificeret Boyden to-kammer system, hvorved cellerne er indlæst i det øverste kammer og transmigrate på tværs af en porøs plastbarriere eller celle éncellelag til et andetkammer, der typisk indeholder medier med chemoattractant12 , 13. mens almindeligt anvendt til at analysere leukocyt transmigration, disse modeller ikke generelt optage et lag, der repræsenterer intima, hvilket resulterer i transmigrated celler migrerer til løsning, og tillader ikke for måling af skum celle dannelse eller omvendt transmigration af de samme celler. Omvendt, modeller af skum celle dannelse ikke højde for eventuelle transmigratory-induceret ændringer monocytter eller effekter i endothelial aktivering, som er kendt for at bidrage til at skum celle dannelse14. Desuden, disse systemer fremkalde skum celle dannelse af makrofager levet op til celle kultur plader ved tilsætning af mætte koncentrationer af eksogene oxideret low-density lipoprotein (oxLDL)15,16, en nøgle inducer af skum celle dannelse. LDL anvendes i disse modeller er ofte oxideres af ikke-fysiologisk-relevante processer såsom CuSO4 behandling17, derfor sætter spørgsmålstegn ved den fysiologiske betydning af studier ved hjælp af disse modeller.

Her beskriver vi en analyse, der kvantificerer monocyt transmigration og skum celle dannelse af de samme celler som ingen kræver tilføjelsen af eksogene oxLDL, dermed bedre modellering af monocytter i skum celle formation rolle. Denne model blev oprindeligt udviklet af Professor William Muller (Northwestern University, Chicago)18, og har været yderligere raffineres i vores laboratorium for at vurdere ex vivo atherogenicity af monocytter isoleret under ikke-aktivering forhold fra enkeltpersoner med underliggende betændelsestilstande ledsagende sygdomme såsom HIV infektion19 samt aldring20, der er forbundet med en øget risiko for åreforkalkning. Denne model giver også en platform for at besvare grundlæggende biologiske spørgsmål vedrørende tilbøjelighed af forskellige monocyt delmængder form skum celler20, indflydelse i endothelial aktivering af cytokiner såsom TNF på skum celle dannelse14 , og de vandrende egenskaber af monocytter som dybden og hastighed af transmigration i geler19. Derudover monocyt transmigration og skum celle dannelse kan kvantificeres ved hjælp af standard mikroskopi, live celle imaging, flow flowcytometri og imaging flowcytometri, derfor giver en alsidig metode til at vurdere rollen af monocytter i atherogenesis.

Protocol

Bemærk: alle eksperimenter ved hjælp af menneskelige biologiske prøver blev udført med etik godkendelse fra den Alfred Hospital menneskelige etiske komité, Melbourne. Alle eksperimenter blev udført i klasse II biosikkerhed kabinetter, medmindre angivet. " Prewarmed " refererer til reagenser opvarmet til 37 ° C i et vandbad. 1. forberedelse af Type I fibrøst kollagen geler: dag 1 Forbered polymeriserede kollagen geler af sekventielt tilføjelse og blande 35,7 mM NaOH…

Representative Results

Kvantificere monocyt transmigration Monocytter føjes til modellen som beskrevet i figur 1, og seks geler er forberedt for hver betingelse. Monocytter for 6 geler per donor (dvs., 5,0 x 104 monocytter pr. gel 6 geler = 3,0 x 105 monocytter per donor) er genopslemmes til en endelige mængden af 600 µL af M199 medier indeholdende de nødvendige serum/is…

Discussion

Protokollen beskrevet her tilbyder en alsidig og fysiologisk relevante metode for vurdering af atherogenicity af monocytter fra humane kliniske kohorter, ved at kombinere både monocyt transmigration og skum celle dannelse. Denne model tilbyder fordele i forhold til alternative metoder til skum celle dannelse som det tager højde for effekten af monocyt transmigration på skum celle dannelse og giver mulighed for måling af reverse transmigration6 ud over de iboende monocytter tilbøjelighed til a…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne parlamentsarbejdet Prof. William Muller og Dr. Clare Westhorpe arbejde for deres centrale rolle i udviklingen af tidligere gentagelser af denne model. Forfatterne vil også gerne takke AMREP Flow flowcytometri kerne for sortering af monocyt delmængder og Alfred Hospital smitsomme sygdom enhed klinisk forskning sygeplejersker til ansættelse af HIV + personer for nogle undersøgelser. Forfatterne parlamentsarbejdet bidrag til dette arbejde i den Victoria operationelle infrastruktur Support Program modtaget af Burnet Institute. TAA er understøttet af en RMIT University Vice-kansler postdoc stipendium. Dette arbejde blev støttet af NHMRC project grant 1108792 tildeles AJ og AH. TK er støttet af NIH tilskud NIH K08AI08272, NIH/NCATS Grant # UL1TR000124.

Materials

Gel preparation reagents
NaOH Sigma-Aldrich 221465-500G 0.1 M NaOH diluted in H20
10X M199 Sigma-Aldrich M0650
AcCOOH Sigma-Aldrich 695092-100ML 20 mM Acetic acid diluted in H20
Cultrex Bovine Collagen I R&D Systems 3442-050-01 Type I Fibrous Collagen
Name Company Catalog Number Comments
Cell culture
M199 Life Technologies 11150-059 M199 media containing Earle's salts, L-glutamine and 2.2 g/L Sodium Bicarbonate.
Media supplemented with 100 µg/mL L-glutamine  and 100 U/mL penicillin/streptomycin 
M20 Supplemented M199 containing 20% heat-inactivated pooled or donor serum.
Individual lipid species such as LDL can be added to M199.
HUVEC Primary human umbilical cord endothelial cells (HUVEC) can be isolated from umbilical cords donated with informed consent and ethics approval. Isolated HUVEC may also be purchased commercially.
Human coronary artery endothelial cells Primary human coronary artery endothelial cells can be isolated from arteries donated with informed consent and ethics approval. Isolated cells may also be purchased commercially.
EDTA BDH Merck 10093.5V Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) – 0.5 M, pH 8.0
EGTA Sigma-Aldrich E3889-500G Ethylene glycol-bis(β-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid (EGTA) – 1 mM, pH 8.0
0.05% trypsin EDTA Gibco 25300-054 0.05% trypsin/0.53 EDTA (1X)
L-glutamine Gibco 25030-081 L-glutamine (200 mM)
Penicillin/streptomycin  Gibco 15140-122 Penicillin/streptomycin (10,000 units/mL Penicillin and 10,000 µg/mL Streptomycin)
New born calf serum Gibco 16010-142 New born calf serum: New Zealand origin
Fibronectin Sigma-Aldrich F1056-1MG Fibronectin – 50 µg/mL aliquots prepared and stored
PBS (1X) Gibco 14200-075 Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (10X): Dilute to 1X with sterile H20
0.1% TNF Gibco PHC3015 Recombinant human TNF – Reconstituted in H20 and stored in 10 µg/mL aliquots
Low-density lipoprotein Merck Millipore LP2-2MG Low-density lipoprotein (LDL)
Name Company Catalog Number Comments
Microscopy
1 or 2% formaldehyde Polysciences 4018 1 or 2% formaldehyde diluted with sterile H20
50% and 78% methanol Ajax Finechem 318-2.5L GL 50% or 78% v/v methanol, diluted with H20
Oil Red O stain Sigma-Aldrich O0625-25G Dilute to 2 mg/mL in 22% 1M NaOH and 78% (v/v) methanol
Microscope slides Mikro-Glass S41104AMK Twin frosted 45 degree ground edge microscope slides (25 X 76 mm)
Cover slips Menzel-Gläser MENCS224015GP 22 x 40 mm #1.5 size glass cover slips
Double-sided tape 3M Scotch 4011 Super strength exterior mounting tape (25.4 mm x 1.51 m)
Giemsa stain Merck Millipore 1.09204.0500 Giemsa's azur eosin methylene blue solution (dilute stock 1:10 in H20)
Hole punch Hand-held single hole punch (6.35 mm punch)
Name Company Catalog Number Comments
Flow cytometry
Collagenase D Roche Diagnostics 11088858001 Collagenase D diluted in M199 media to 1 mg/mL 
35 µm nylon mesh capped polystyrene FACS tubes BD Biosciences 352235 35 µm nylon mesh capped polystyrene FACS tubes
Live/Dead Fixable Yellow Dead Cell stain Life Technologies L34959 Live/Dead Fixable Yellow Dead Cell stain
FACS wash Prepare by mixing 1 X PBS, 2 mM EDTA and 1% New born calf serum
Name Company Catalog Number Comments
Plasticware
96 well plate Nunclon 167008 Delta surface flat-bottomed 96 well plate
10 cm Petri Dish TPP 93100 Sterile 10 cm Petri dish
1.5 mL Eppendorf tubes Eppendorf 0030 125.150 Eppendorf tubes
Transfer pipette Samco Scientific 222-20S Sterile transfer pipette (1 mL, large bulb)

Referencias

  1. Napoli, C., et al. Fatty streak formation occurs in human fetal aortas and is greatly enhanced by maternal hypercholesterolemia. Intimal accumulation of low density lipoprotein and its oxidation precede monocyte recruitment into early atherosclerotic lesions. J Clin Invest. 100 (11), 2680-2690 (1997).
  2. Woollard, K. J., Geissmann, F. Monocytes in atherosclerosis: subsets and functions. Nat Rev Cardiol. 7 (2), 77-86 (2010).
  3. Xu, L., et al. Foamy Monocytes Form Early and Contribute to Nascent Atherosclerosis in Mice With Hypercholesterolemia. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 35 (8), 1787-1797 (2015).
  4. Jackson, W. D., Weinrich, T. W., Woollard, K. J. Very-low and low-density lipoproteins induce neutral lipid accumulation and impair migration in monocyte subsets. Scientific Reports. 6, 20038 (2016).
  5. Angelovich, T. A., Hearps, A. C., Jaworowski, A. Inflammation-induced foam cell formation in chronic inflammatory disease. Immunol. Cell. Biol. 93 (8), 683-693 (2015).
  6. Llodrá, J., et al. Emigration of monocyte-derived cells from atherosclerotic lesions characterizes regressive, but not progressive, plaques. Proc. Natl. Acad. Sci. 101 (32), 11779-11784 (2004).
  7. Getz, G. S., Reardon, C. A. Animal Models of Atherosclerosis. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 32 (5), 1104-1115 (2012).
  8. Meir, K. S., Leitersdorf, E. Atherosclerosis in the Apolipoprotein E-Deficient Mouse. A Decade of Progress. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 24 (6), 1006-1014 (2004).
  9. Hilgendorf, I., Swirski, F. K. Making a difference: Monocyte Heterogeneity in Cardiovascular Disease. Curr. Atheroscler. Rep. 14 (5), 450-459 (2012).
  10. Rogacev, K. S., et al. Lower Apo A-I and Lower HDL-C Levels Are Associated With Higher Intermediate CD14++CD16+ Monocyte Counts That Predict Cardiovascular Events in Chronic Kidney Disease. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 34 (9), 2120-2127 (2014).
  11. Rogacev, K. S., et al. CD14++CD16+ Monocytes Independently Predict Cardiovascular Events: A Cohort Study of 951 Patients Referred for Elective Coronary Angiography. J. Am. Coll. Cardiol. 60 (16), 1512-1520 (2012).
  12. Justus, C. R., Leffler, N., Ruiz-Echevarria, M., Yang, L. V. In vitro Cell Migration and Invasion Assays. J. Vis. Exp. (88), e51046 (2014).
  13. Boyden, S. The Chemotactic Effect Of Mixtures Of Antibody And Antigen On Polymorphonuclear Leucocytes. J. Exp. Med. 115 (3), 453-466 (1962).
  14. Westhorpe, C. L. V., et al. Endothelial cell activation promotes foam cell formation by monocytes following transendothelial migration in an in vitro model. Exp. Mol. Pathol. 93, 220-226 (2012).
  15. Quinn, M. T., Parthasarathy, S., Fong, L. G., Steinberg, D. Oxidatively modified low density lipoproteins: a potential role in recruitment and retention of monocyte/macrophages during atherogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. 84 (9), 2995-2998 (1987).
  16. Henriksen, T., Mahoney, E. M., Steinberg, D. Enhanced macrophage degradation of biologically modified low density lipoprotein. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 3 (2), 149-159 (1983).
  17. Parthasarathy, S., Raghavamenon, A., Garelnabi, M. O., Santanam, N. Oxidized Low-Density Lipoprotein. Methods Mol. Biol. 610, 403-417 (2010).
  18. Muller, W. A., Weigl, S. A. Monocyte-selective transendothelial migration: dissection of the binding and transmigration phases by an in vitro assay. J. Exp. Med. 176 (3), 819-828 (1992).
  19. Maisa, A., et al. Monocytes from HIV-infected individuals show impaired cholesterol efflux and increased foam cell formation after transendothelial migration. AIDS. 29 (12), 1445-1457 (2015).
  20. Angelovich, T. A., et al. Ex vivo foam cell formation is enhanced in monocytes from older individuals by both extrinsic and intrinsic mechanisms. Exp. Gerontol. 80, 17-26 (2016).
  21. Westhorpe, C. L. V., et al. Effects of HIV-1 infection in vitro on transendothelial migration by monocytes and monocyte-derived macrophages. J. Leukoc. Biol. 85 (6), 1027-1035 (2009).
  22. Furie, M. B., Cramer, E. B., Naprstek, B. L., Silverstein, S. C. Cultured endothelial cell monolayers that restrict the transendothelial passage of macromolecules and electrical current. J. Cell Biol. 98 (3), 1033-1041 (1984).
  23. Müller, A. M., et al. Expression of the Endothelial Markers PECAM-1, vWf, and CD34 in Vivo and in Vitro. Exp. Mol. Pathol. 72 (3), 221-229 (2002).
  24. Kelesidis, T., et al. Predictors of impaired HDL function in HIV-1 infected compared to uninfected individuals. J. Acquir. Immune Defic. Syndr. , (2017).
  25. Rogacev, K. S., et al. Monocyte heterogeneity in obesity and subclinical atherosclerosis. European Heart Journal. 31 (3), 369-376 (2010).
  26. Gacka, M., et al. Proinflammatory and atherogenic activity of monocytes in Type 2 diabetes. J. Diabetes Complications. 24 (1), 1-8 (2010).
  27. Rogacev, K. S., et al. CD14++CD16+ monocytes and cardiovascular outcome in patients with chronic kidney disease. Eur. Heart J. 32 (1), 84-92 (2011).

Play Video

Citar este artículo
Angelovich, T. A., Hearps, A. C., Maisa, A., Kelesidis, T., Jaworowski, A. Quantification of Monocyte Transmigration and Foam Cell Formation from Individuals with Chronic Inflammatory Conditions. J. Vis. Exp. (128), e56293, doi:10.3791/56293 (2017).

View Video