Summary

Samtidig<em> Ex vivo</em> Funksjonell testing av to netthinne etter<em> In vivo</em> Elektroretinogrammet System

Published: May 06, 2015
doi:

Summary

Ex vivo ERG can be used to record electrical activity of retinal cells directly from isolated intact retinas of animals or humans. We demonstrate here how common in vivo ERG systems can be adapted for ex vivo ERG recordings in order to dissect the electrical activity of retinal cells.

Abstract

An In vivo electroretinogram (ERG) signal is composed of several overlapping components originating from different retinal cell types, as well as noise from extra-retinal sources. Ex vivo ERG provides an efficient method to dissect the function of retinal cells directly from an intact isolated retina of animals or donor eyes. In addition, ex vivo ERG can be used to test the efficacy and safety of potential therapeutic agents on retina tissue from animals or humans. We show here how commercially available in vivo ERG systems can be used to conduct ex vivo ERG recordings from isolated mouse retinas. We combine the light stimulation, electronic and heating units of a standard in vivo system with custom-designed specimen holder, gravity-controlled perfusion system and electromagnetic noise shielding to record low-noise ex vivo ERG signals simultaneously from two retinas with the acquisition software included in commercial in vivo systems. Further, we demonstrate how to use this method in combination with pharmacological treatments that remove specific ERG components in order to dissect the function of certain retinal cell types.

Introduction

Elektroretinogrammet (ERG) er en veletablert teknikk som kan brukes til å registrere den elektriske aktiviteten i retina utløst av lys. ERG signal genereres i hovedsak av spenningsendringer forårsaket av radiale strømmer (langs aksen av fotoreseptorene og bipolare celler) som strømmer i den resistive ekstracellulære rom av netthinnen. Den første ERG signal ble registrert i 1865 av Holmgren fra overflaten av en fisk øye 1. Einthoven og Jolly 1908 2 delt ERG respons på angrep av lys i tre forskjellige bølger, kalt A-, B- og C-bølgene, som nå er kjent for å reflektere hovedsakelig aktiviteten av fotoreseptorer, ON bipolare celler, og pigment epitelet -celler, henholdsvis 3-8. ERG kan tas opp fra øynene til bedøvede dyr eller mennesker (in vivo), fra isolerte øye forberedelse 9, over isolert intakt retina (ex vivo) 3,10-15 eller i bestemte netthinnen lag med mikroelektroder (lokalERG) 4,16. Av disse er in vivo ERG i dag den mest brukte metoden for å vurdere retinal funksjon. Det er en ikke-invasiv teknikk som kan brukes for diagnostiske formål eller for å følge progresjonen av retinale sykdommer i dyr eller pasienter. Men in vivo ERG opptak produsere et komplisert signal med flere overlappende komponenter, ofte forurenset av extraocular fysiologiske støy (f.eks, pust og hjerteaktivitet).

Lokal ERG kan brukes til å registrere signalet i bestemte lag av netthinnen, men det er mest invasiv og har den laveste signal-til-støy-forhold (SNR) i forhold til de andre ERG opptaks konfigurasjoner. Lokal ERG er også teknisk krevende og krever kostbart utstyr (f.eks mikroskop og micromanipulators). Transretinal ERG fra intakt, isolert retina (ex vivo ERG) tilbyr et kompromiss mellom in vivo og lokale ERG metoder slik at stabil og HiGh SNR opptak fra intakte netthinne av dyr eller mennesker 17. Nylig har denne metoden vært brukt med hell for å studere stang og kjegle fotoreseptor funksjon i pattedyr, primater og mennesker netthinne 18-20. I tillegg, på grunn av fravær av pigment epitelet i ex vivo hinnen, blir den positive C-bølgekomponent av ERG signal fjernet og en fremstående negativ langsom PIII komponent er åpenbart i den ex vivo-opptak. Den langsomme PIII komponenten har vist seg å stamme fra aktiviteten av Muller gliaceller i retina 21-23. Dermed kan ex vivo ERG metoden også brukes til å studere Muller celler i intakt hinnen. Flere studier har også vist at ex vivo ERG opptakene kunne brukes til å måle konsentrasjonen av farmakologiske midler rundt retina 24 og teste sikkerhet og effekt av legemidler 25-27.

Multiple kommersiell in vivo systemer er tilgjengelig ogbrukes i mange laboratorier som ikke nødvendigvis har omfattende elektrobakgrunn. I kontrast, har ex vivo-enheter ikke vært tilgjengelig inntil nylig 17 og som et resultat bare svært få laboratorier drar nytte av dette kraftige teknikken. Det ville være gunstig å foreta ex vivo ERG opptak tilgjengelig for flere laboratorier for å fremme vår kunnskap om retinal fysiologi og patologi, og for å utvikle nye behandlingsformer for blendende sykdommer. Vi viser her en enkel og rimelig ex vivo ERG-enheten 17, og viser hvordan det kan brukes i kombinasjon med flere kommersielt tilgjengelige in vivo ERG-systemer for å registrere og stempelstang kjegle-mediert signalisering (A- og B-bølger), og funksjonen av Müller celler (bremse PIII) fra intakte villtype mus netthinne.

Protocol

Alle forsøksprotokoller var i samsvar med Guide for omsorg og bruk av forsøksdyr, og ble godkjent av den institusjonelle Animal Studies Utvalget ved Washington University. 1. Sette opp Perfusjons og Specimen Holder Forbered løsning for netthinnen perfusjon frisk på dagen for forsøket. Bruke destillert og deionisert vann. Bruk én av følgende tre løsninger. Forbered Bikarbonat holdig Ames 'løsning (1 L): 1 flaske Ames' media og 1,9 g NaHCO3, </li…

Representative Results

Vi har registrert flash svar fra mørkeadapterte villtype (WT) C57BL / 6 mus netthinne ved å følge de eksperimentelle protokoller som er beskrevet ovenfor og illustrert i figur 1 ved bruk av forskjellige standard perfusjon oppløsninger (figur 2). Svar kurver og kinetikk samt følsomheten stang fotoreseptorene dukket opp like i Ames 'og Lockes medier (Figur 2A og B). På den annen side, i henhold til HEPES-bufret Ringers oppløsning (uten bikarbon…

Discussion

Vi viser her de viktige skritt for å oppnå høy kvalitet ex vivo ERG opptak samtidig fra to isolerte mus netthinne ved hjelp in vivo ERG systemkomponenter sammen med en ex vivo ERG adapter. I denne studien perfusert vi både netthinner fra dyret med den samme oppløsning (enten Ames ', Lockes eller Ringers), men det er også mulig å perfuse hver netthinnen med en annen løsning for eksempel for medikamenttestformål. De viktigste trinnene for å få data av høy kvalitet …

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH tilskudd EY019312 og EY021126 (VJK), EY002687 til Institutt of Ophthalmology og Visual Sciences ved Washington University, og ved forsknings å hindre blindhet.

Materials

In vivo ERG system OcuScience HMsERG www.ocuscience.us/id77.html
In vivo ERG system LKC Technologies UTAS-E 3000 www.lkc.com/products/UTAS/bigshot.html
Ex vivo adapter OcuScience Ex VIVO ERG adapter www.ocuscience.us/id107.html
Dissection microscope North Central Instruments Leica M80 May use any brand
IR emitter Opto Diode Corp. OD-50L www.optodiode.com
Prowler Night Vision Scopes B.E. Meyers Electro Optics D4300-I Military grade product.
Red filter Rosco Laboratories Roscolux #27 Medium Red May be used instead of IR system
Red head light OcuScience ERGX011 www.ocuscience.us/catalog/i29.html
Microscissors WPI, Inc. 500086 www.wpiinc.com/
Dumont tweezers #5 WPI, Inc. 14101
Razor blades Electron Microscopy Sciences 72000 www.emsdiasum.com
Scale Metler Toledo AB54-S/FACT May use any brand
pH meter and electrode Beckman Coulter pHI 350 May use any brand
NaCl Sigma-Aldrich S7653 May use any brand
KCl Sigma-Aldrich 60129 May use any brand
MgCl2 Sigma-Aldrich 63020 1.0 M solution
CaCl2 Sigma-Aldrich 21114 1.0 M solution
EDTA Sigma-Aldrich 431788 May use any brand
HEPES Sigma-Aldrich H3375 May use any brand
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich S6297 May use any brand
Ames medium Sigma-Aldrich A1420 May use any brand
BaCl2 Sigma-Aldrich B0750 May use any brand
DL-AP4 Tocris Bioscience 101 May use any brand
Succinic acid disodium salt Sigma-Aldrich 224731 May use any brand
L-Glutamic acid Sigma-Aldrich G2834 May use any brand
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G7528 May use any brand
Leibovitz culture medium L-15 Sigma-Aldrich L4386 May use any brand
MEM vitamins Sigma-Aldrich M6895
MEM amino acids Sigma-Aldrich M5550
Carbogen Airgas UN3156 5% CO2

Referencias

  1. Armington, J. C. . The Electroretinogram. , (1974).
  2. Einthoven, W., Jolly, W. A. The form and magnitude of the electrical response of the eye to stimulation by light at various intensities. Q J Exp Physiol. 1, 43 (1908).
  3. Granit, R. The components of the retinal action potential in mammals and their relation to the discharge in the optic nerve. J. Physiol. 77, 207-239 (1933).
  4. Penn, R. D., Hagins, W. A. Signal transmission along retinal rods and the origin of the electroretinographic a-wave. Nature. 223, 201-204 (1969).
  5. Stockton, R. A., Slaughter, M. M. B-wave of the electroretinogram. A reflection of ON bipolar cell activity. J. Gen. Physiol. 93, 101-122 (1989).
  6. Robson, J. G., Frishman, L. J. Response linearity and kinetics of the cat retina: the bipolar cell component of the dark-adapted electroretinogram. Vis. Neurosci. 12, 837-850 (1995).
  7. Green, D. G., Kapousta-Bruneau, N. V. A dissection of the electroretinogram from the isolated rat retina with microelectrodes and drugs. Vis. Neurosci. 16, 727-741 (1999).
  8. Steinberg, R. H., Schmidt, R., Brown, K. T. Intracellular responses to light from cat pigment epithelium: origin of the electroretinogram c-wave. Nature. 227, 728-730 (1970).
  9. Wilson, W. S., Shahidullah, M., Millar, C. The bovine arterially-perfused eye: an in vitro method for the study of drug mechanisms on IOP, aqueous humour formation and uveal vasculature. Curr. Eye Res. 12, 609-620 (1993).
  10. Frank, R. N., Dowling, J. E. Rhodopsin photoproducts: effects on electroretinogram sensitivity in isolated perfused rat retina. Science. 161, 487-489 (1968).
  11. Donner, K., Hemila, S., Koskelainen, A. Temperature-dependence of rod photoresponses from the aspartate-treated retina of the frog (Rana temporaria). Acta Physiol. Scand. 134, 535-541 (1988).
  12. Green, D. G., Kapousta-Bruneau, N. V. Electrophysiological properties of a new isolated rat retina preparation. Vision Res. 39, 2165-2177 (1999).
  13. Hamasaki, D. I. The effect of sodium ion concentration on the electroretinogram of the isolated retina of the frog. J. Physiol. 167, 156-168 (1963).
  14. Luke, M., et al. The isolated perfused bovine retina–a sensitive tool for pharmacological research on retinal function. Brain Res. Brain Res. Protoc. 16, 27-36 (2005).
  15. Bastian, B. L., Fain, G. L. Light adaptation in toad rods: requirement for an internal messenger which is not calcium. J. Physiol. 297, 493-520 (1979).
  16. Arden, G. B. Voltage gradients across the receptor layer of the isolated rat retina. J. Physiol. 256, 333-360 (1976).
  17. Vinberg, F., Kolesnikov, A. V., Kefalov, V. J. Ex vivo ERG analysis of photoreceptors using an in vivo ERG system. Vision Res. 101, 108-117 (2014).
  18. Nymark, S., Heikkinen, H., Haldin, C., Donner, K., Koskelainen, A. Light responses and light adaptation in rat retinal rods at different temperatures. J. Physiol. 567, 923-938 (2005).
  19. Heikkinen, H., Nymark, S., Koskelainen, A. Mouse cone photoresponses obtained with electroretinogram from the isolated retina. Vision Res. 48, 264-272 (2008).
  20. Wang, J. S., Kefalov, V. J. An alternative pathway mediates the mouse and human cone visual cycle. Curr. Biol. 19, 1665-1669 (2009).
  21. Bolnick, D. A., Walter, A. E., Sillman, A. J. Barium suppresses slow PIII in perfused bullfrog retina. Vision Res. 19, 1117-1119 (1979).
  22. Newman, E. A. Potassium conductance block by barium in amphibian Muller cells. Brain Res. 498, 308-314 (1989).
  23. Oakley, B., Katz, B. J., Xu, Z., Zheng, J. Spatial buffering of extracellular potassium by Muller (glial) cells in the toad retina. Exp. Eye Res. 55, 539-550 (1992).
  24. Nymark, S., Haldin, C., Tenhu, H., Koskelainen, A. A new method for measuring free drug concentration: retinal tissue as a biosensor. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 47, 2583-2588 (2006).
  25. Walter, P., Luke, C., Sickel, W. Antibiotics and light responses in superfused bovine retina. Cell. Mol. Neurobiol. 19, 87-92 (1999).
  26. Luke, M., et al. The safety profile of alkylphosphocholines in the model of the isolated perfused vertebrate retina. Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 248, 511-518 (2010).
  27. Januschowski, K., et al. Electrophysiological toxicity testing of VEGF Trap-Eye in an isolated perfused vertebrate retina organ culture model. Acta Ophthalmol. 92, e305-e311 (2014).
  28. Kolesnikov, A. V., Kefalov, V. J. Transretinal ERG recordings from mouse retina: rod and cone photoresponses. J Vis Exp. , (2012).
  29. Koskelainen, A., Hemila, S., Donner, K. Spectral sensitivities of short- and long-wavelength sensitive cone mechanisms in the frog retina. Acta Physiol. Scand. 152, 115-124 (1994).
  30. Lyubarsky, A. L., Falsini, B., Pennesi, M. E., Valentini, P., Pugh, E. N. UV- and midwave-sensitive cone-driven retinal responses of the mouse: a possible phenotype for coexpression of cone photopigments. J. Neurosci. 19, 442-455 (1999).
  31. Lyubarsky, A. L., Daniele, L. L., Pugh, E. N. From candelas to photoisomerizations in the mouse eye by rhodopsin bleaching in situ and the light-rearing dependence of the major components of the mouse ERG. Vision Res. 44, 3235-3251 (2004).
  32. Azevedo, A. W., Rieke, F. Experimental protocols alter phototransduction: the implications for retinal processing at visual threshold. J. Neurosci. 31, 3670-3682 (2011).
  33. Carter-Dawson, L. D., LaVail, M. M. Rods and cones in the mouse retina. I. Structural analysis using light and electron microscopy. J. Comp. Neurol. 188, 245-262 (1979).
  34. Fain, G. L., Matthews, H. R., Cornwall, M. C., Koutalos, Y. Adaptation in vertebrate photoreceptors. Physiol. Rev. 81, 117-151 (2001).
  35. Calvert, P. D., Strissel, K. J., Schiesser, W. E., Pugh, E. N., Arshavsky, V. Y. Light-driven translocation of signaling proteins in vertebrate photoreceptors. Trends Cell Biol. 16, 560-568 (2006).
  36. Schneeweis, D. M., Schnapf, J. L. The photovoltage of macaque cone photoreceptors: adaptation, noise, and kinetics. J. Neurosci. 19, 1203-1216 (1999).
  37. Heikkinen, H., Vinberg, F., Nymark, S., Koskelainen, A. Mesopic background lights enhance dark-adapted cone ERG flash responses in the intact mouse retina: a possible role for gap junctional decoupling. J. Neurophysiol. 105, 2309-2318 (2011).
  38. Gouras, P., MacKay, C. J. Growth in amplitude of the human cone electroretinogram with light adaptation. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 30, 625-630 (1989).
  39. Peachey, N. S., Goto, Y., al-Ubaidi, M. R., Naash, M. I. Properties of the mouse cone-mediated electroretinogram during light adaptation. Neurosci. Lett. 162, 9-11 (1993).

Play Video

Citar este artículo
Vinberg, F., Kefalov, V. Simultaneous ex vivo Functional Testing of Two Retinas by in vivo Electroretinogram System. J. Vis. Exp. (99), e52855, doi:10.3791/52855 (2015).

View Video