Summary

Hel-mount Imaging av Mouse Embryo Sensory Axon Anslag

Published: December 09, 2014
doi:

Summary

We present here an optimized protocol to genotype, stain and prepare fetal mice for the imaging of peripheral nociceptor axon projections in the whole animal, as an effective method to assess sensory axon growth phenotypes in developing genetically engineered mice.

Abstract

Visualisering av helaftens nevronale anslag i embryoer er viktig å få en forståelse av hvordan pattedyr nevrale nettverk utvikle. Her beskriver vi en metode for å merke in situ en undergruppe av dorsal root ganglion (DRG) axon anslag for å vurdere deres fenotypiske egenskaper ved hjelp av flere genetisk manipulerte mus linjer. TrkA-positive nevroner er nociceptor nevroner, dedikert til overføring av smerte signaler. Vi bruker et TrkA taulacZ mus linje å merke baner av alle trkA–positive perifere axoner i intakt museembryo. Vi avler videre TrkA taulacZ linje på en Bax null bakgrunn, som i hovedsak opphever nerveapoptose, for å vurdere vekstrelaterte spørsmål uavhengig av mulige effekter av genetiske manipulasjoner på neuronoverlevelse. Deretter blir genmodifiserte mus av interesse avlet med TrkA TaulACZ / Bax null linje og er deretter klar for studien ved hjelp av teknikker som er beskrevet her. Denne presentasjonen inneholder detaljert informasjon om muse avl planer, genotyping på tidspunktet for disseksjon, vev forberedelse, beising og rydding for å tillate visualisering av helaftens aksonale baner i hel-mount forberedelse.

Introduction

Etablering av presise nevrale nettverk er en kompleks utviklingsprosess viktig for funksjonaliteten av nervesystemet. Forstyrrelse i denne prosessen fører til nevronal dysfunksjon, som har vært implisert i humane nevrologiske sykdommer 1-3. Å studere de underliggende molekylære mekanismene for axon vekst og mål innervasjon i pattedyr, har vi utviklet en protokoll for å visualisere de aksonale baner av TrkA-uttrykke sensoriske nevroner ved bruk av en kombinasjon av to genmodifiserte mus linjer.

TrkA er en reseptor for NGF nervevekstfaktor, og er en funksjonell markør for nociceptive sensoriske nevroner 4. TrkA er sterkt uttrykt i nociceptive nevroner under tidlig utvikling og formidler NGF-avhengige nevron overlevelse, axon vekst, arborization og mål innervation 5-9. I TrkA taulacZ mus, er villtype TrkA-genet erstattet med et taulacZ ekspresjon cAssette 10, slik at aksonal morfologi putative trkA-positive nevroner kan visualiseres ved β-gal (X-gal) farging 11. Ved hjelp av en heterozygot TrkA taulacZ / WT linje, kan vi undersøke faktorer som kan regulere eller forstyrre utviklingen av sensoriske afferente anslag in vivo.

Videre er TrkA ekspresjon fraværende i homozygot TrkA taulacZ / taulacZ mus, som derfor kan brukes til å vurdere axon vekstfremmende mekanismer i fravær av NGF / TrkA signalering. Siden nociceptive neuroner avhenger av NGF / TrkA signalering, ikke bare for axon vekst, men også for å overleve, anvender vi en annen muselinje som mangler den pro-apoptotiske Bax-genet, for å hemme apoptose i embryonale DRG-neuroner, redning dem fra celledød som ellers observert i fravær av TrkA signalering. Den Bax – / – bakgrunn 12 tillater dermed for molecuLar disseksjon av signalveier som spesifikt påvirker axon vekst 7-9,13-15. I TrkA – / -: Bax – / – mus, DRG nevroner overleve, men sensorisk afferent innervasjon i huden er fullstendig avskaffet 14,15. Vi kan selektivt aktivere signalveier å bestemme sine respektive bidrag til utviklingen av axon anslag. Nytten av denne fremgangsmåte er at den gjør det mulig å vurdere endringer i aksonal vekstfenotyper når forskjellige genetiske modifikasjoner er avlet på TrkA taulacZ / taulacZ: Bax – / – eller TrkA taulacZ / WT: Bax – / – bakgrunner.

Protocol

MERK: Alle prosedyrer i samsvar med NIH Guide for bruk og vedlikehold av forsøksdyr. Dyret protokollen ble godkjent av IACUC ved Weill Cornell Medical College. 1. Vevspreoarerlng Avlive timet-graviditet hunner ved halshugging 15. Dissekere embryoniske E16 – E18 embryoer fra tidsbestemte-graviditet hunner og plassere embryoer individuelt i brønnene i en 6-brønners skål, som er fylt med kaldt fosfatbufret saltvann (PBS). Skyll embryo i kald PBS. Fj…

Representative Results

Genotypene av TrkA WT / taulacZ: Bax – / – og TrkA taulacZ / taulacZ: Bax – / – embryo kan entydig bestemmes av standard PCR genotyping (figur 1). X-gal-farging viser detaljerte perifere aksonal dor subkutant i konvensjonelt farget embryoer (figurene 2, 3a), og i hele embryoet etter at vevet lysning (fig 3b, 4). Vi har oppdrettet trkA WT / taulacZ: Bax – / – linje med mus som …

Discussion

Den ovenfor beskrevne X-gal-farging Måten i embryonale TrkA taulacZ mus muliggjør den raske og detaljert visualisering av lang avstand axon spring i intakt fast embryo. På grunn av den Bax null bakgrunns disse musene tillate for sondering av signaleringsmekanismer som kan bidra til både axon vekst og neuronal overlevelse. Parring med transgene eller knockout mus av interesse åpner for omfattende vurdering av aksonale fenotyper og kan tjene som nyttig guide for fremtidige eksperimenter f…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke Dr. Louis Reichardt for TrkA taulacZ mus og Dr. Annette Markus for innsiktsfull diskusjon og forslag. Dette arbeidet ble støttet av oppstart midler fra Burke Foundation samt Whitehall Foundation forskningsstipend 2010-08-61, et forskningsstipend fra Wings for Life Foundation (WFL-US-028/14), gi ZB1-1102-1 fra Christopher & Dana Reeve Foundation, og tilskudd 1R01EY022409 og 3R01EY022409-01S1 fra National Eye Institute, til JZ. KJo er en Goldsmith stipendiat.

Materials

Company Catalog Number
PFA Sigma-Aldrich P6418
PBS Life Tech 10010-023
Tissue Rinse Solution A Millipore BG-6-B
Tissue Rinse Solution B Millipore BG-7-B
Tissue Stain Base Solution Millipore BG-8-C
X-gal  Sigma-Aldrich B4252
Glass scintiallation vial Kimble Chase 74500-20
Incubator Labline Model 120
Insect pins FST 26000-30
DMSO Sigma-Aldrich D8418
6 well dish USA Scientific CC7672-7506
Primers IDT custom DNA primers
Takara dNTP mixture Takara 4030
Takara LA buffer Takara RR002A
Takara LA Taq Takara RR002A
PCR machine Bio-Rad  DNA Engine Dyad
Benzyl alcohol Sigma-Aldrich B-1042
Benzyl benzoate Sigma-Aldrich B-6630
Dissecting microscope Leica M205A
Camera Leica DFC310FX
Ring light  Leica  MEB110
Photoshop Adobe Photoshop 4.0

Referencias

  1. Verze, L., et al. Cutaneous innervation in hereditary sensory and autonomic neuropathy type IV. Neurology. 55, 126-128 (2000).
  2. Sethna, N. F., Meier, P. M., Zurakowski, D., Berde, C. B. Cutaneous sensory abnormalities in children and adolescents with complex regional pain syndromes. Pain. 131, 153-161 (2007).
  3. Uceyler, N., et al. Small fibers in Fabry disease: baseline and follow-up data under enzyme replacement therapy. J Peripher Nerv Syst. 16, 304-314 (2011).
  4. Reichardt, L. F., Mobley, W. C. Going the distance, or not, with neurotrophin signals. Cell. 118, 141-143 (2004).
  5. White, F. A., et al. Synchronous onset of NGF and TrkA survival dependence in developing dorsal root ganglia. J Neurosci. 16, 4662-4672 (1996).
  6. Farinas, I., Wilkinson, G. A., Backus, C., Reichardt, L. F., Patapoutian, A. Characterization of neurotrophin and Trk receptor functions in developing sensory ganglia: direct NT-3 activation of TrkB neurons in vivo. Neuron. 21, 325-334 (1998).
  7. Markus, A., Zhong, J., Snider, W. D. Raf and akt mediate distinct aspects of sensory axon growth. Neuron. 35, 65-76 (2002).
  8. Kuruvilla, R., et al. A neurotrophin signaling cascade coordinates sympathetic neuron development through differential control of TrkA trafficking and retrograde signaling. Cell. 118, 243-255 (2004).
  9. Zhong, J., et al. Raf kinase signaling functions in sensory neuron differentiation and axon growth in vivo. Nature. 10, 598-607 (2007).
  10. Bulfone, A., et al. An olfactory sensory map develops in the absence of normal projection neurons or GABAergic interneurons. Neuron. 21, 1273-1282 (1998).
  11. Moqrich, A., et al. Expressing TrkC from the TrkA locus causes a subset of dorsal root ganglia neurons to switch fate. Nature. 7, 812-818 (2004).
  12. Knudson, C. M., Tung, K. S., Tourtellotte, W. G., Brown, G. A., Korsmeyer, S. J. Bax-deficient mice with lymphoid hyperplasia and male germ cell death. Science. 270 (5233), 96-99 (1995).
  13. Lentz, S. I., Knudson, C. M., Korsmeyer, S. J., Snider, W. D. Neurotrophins support the development of diverse sensory axon morphologies. J. Neurosci. 19, 1038-1048 (1999).
  14. Patel, T. D., Jackman, A., Rice, F. L., Kucera, J., Snider, W. D. Development of sensory neurons in the absence of NGF/TrkA signaling in vivo. Neuron. 25, 345-357 (2000).
  15. Donovan, K. J., et al. B-RAF kinase drives developmental axon growth and promotes axon regeneration in the injured mature CNS. The Journal of experimental medicine. 211, 801-814 (2014).
  16. Mercer, K., et al. Expression of endogenous oncogenic V600EB-raf induces proliferation and developmental defects in mice and transformation of primary fibroblasts. Cancer research. 65, 11493-11500 (2005).
  17. Tronche, F., et al. Disruption of the glucocorticoid receptor gene in the nervous system results in reduced anxiety. Nature genetics. 23, 99-103 (1999).
  18. Madisen, L., et al. A toolbox of Cre-dependent optogenetic transgenic mice for light-induced activation and silencing. Nat Neurosci. 15, 793-802 (2012).
  19. Feng, G., et al. Imaging Neuronal Subsets in Transgenic Mice Expressing Multiple Spectral Variants of GFP. Neuron. 28, 41-51 (2000).
  20. Schmidt, H., Rathjen, F. G. DiI-labeling of DRG neurons to study axonal branching in a whole mount preparation of mouse embryonic spinal cord. J Vis Exp. , (2011).

Play Video

Citar este artículo
O’Donovan, K. J., O’Keeffe, C., Zhong, J. Whole-mount Imaging of Mouse Embryo Sensory Axon Projections. J. Vis. Exp. (94), e52212, doi:10.3791/52212 (2014).

View Video