Summary

Ekstracellulært Wire tetrode Optagelse i Brain fritgående Insekter

Published: April 01, 2014
doi:

Summary

Vi har tidligere udviklet en teknik til implantering tetrode ledningerne i det centrale kompleks af kakerlak hjerner, der giver os mulighed for at overvåge aktiviteten i individuelle enheder af forankrede kakerlakker. Her præsenterer vi en modificeret version af denne teknik, der giver os mulighed for at også optage hjernens aktivitet i frit bevægelige insekter.

Abstract

Stigende interesse i rollen som hjernens aktivitet i insekt motorstyring kræver, at vi kunne kontrollere neurale aktivitet, mens insekter udføre naturlig adfærd. Vi har tidligere udviklet en teknik til implantering tetrode ledningerne i det centrale kompleks af kakerlak hjerner, der tillod os at optage aktivitet fra flere neuroner samtidigt mens en tøjret kakerlak vendte eller ændret ganghastighed. Mens et stort fremskridt, tøjrede præparater giver adgang til begrænsede adfærd og ofte mangler feedback-processer, der foregår i frit bevægelige dyr. Vi præsenterer nu en modificeret version af denne teknik, der giver os mulighed for at optage fra det centrale kompleks af frit bevægelige kakerlakker, som de går i en arena og beskæftige sig med barrierer ved at dreje, klatring eller tunneling. Kombineret med høj hastighed video og klynge skæring, kan vi nu relatere hjernens aktivitet til forskellige parametre for flytning af frit opfører insekter.

Introduction

Denne artikel beskriver et vellykket system til optagelse fra neuroner i det centrale kompleks (CC) af kakerlak, Blaberus discoidalis, som insektet vandreture i en arena og beskæftiger sig med genstande, der forårsager den til at dreje rundt, tunnel under eller klatre over forhindringer. Trådene kan også være forbundet til en stimulator at fremkalde aktivitet i den omgivende neuropil med deraf følgende adfærdsændringer.

I det seneste årti betydelig opmærksomhed har været rettet mod de roller, som de forskellige områder af hjernen med at kontrollere insekt adfærd spilles. Meget af dette fokus har været rettet mod midterlinjen hjernen neuropils der er kollektivt benævnt centrale kompleks (CC). Der er gjort fremskridt som et resultat af mange sorter af teknikker rettet mod spørgsmål om den rolle, som CC i adfærd. Disse teknikker spænder fra neurogenetic manipulationer, primært i Drosophila, kombineret med opføoral analyse 1-3, til elektrofysiologiske teknikker, der overvåger neurale aktivitet inden for CC og forsøg på at relatere denne aktivitet til adfærdsmæssigt relevante parametre.

Elektrofysiologiske teknikker omfatter intracellulær optagelse fra de enkelte identificerede neuroner 4-9 og ekstracellulære optagelse, ofte med multi-kanal sonder 10,11. Disse to teknikker er gratis. Intracellulær optagelse med skarpe elektroder eller hel celle patch giver meget detaljerede oplysninger om identificerede neuroner, men er begrænset til en eller to celler på en gang, kræver begrænset eller ingen bevægelse, og kan opretholdes i relativt korte perioder. Ekstracellulære optagelser kan nemt oprette, ikke kræver tilbageholdenhed, og kan opretholdes i timevis. Med multi-kanal tetrodes og klynge skæring, kan forholdsvis store populationer af neuroner analyseres samtidig 9,12. Mens helcelle PATCh har været anvendt med succes i tøjrede insekter 13, mener vi, at der også er et behov for teknikker, der tillader os at optage neurale aktivitet i hjernen i lange perioder i frit opfører insekter, som de beskæftiger sig med barrierer for bevægelse fremad.

Behovet for at optage som insekt bevæger sig og hopper op og ned skubbet os mod ekstracellulære optagelse metoder. Vi har haft god succes optagelse tilbageholdende præparater med kommercielt tilgængelige 16 kanaler silicium sonder 11, men den lille størrelse af selv store kakerlakker betyder, at sonderne skal monteres fra kroppen. Det, kombineret med delikatesse af sonden tænder, gjorde dem uegnede til en gratis walking forberedelse. I to tidligere projekter, vi brugte bundter af fine tråde, der danner en tetrode at udrette lignende optagelse egenskaber, men i en mere robust arrangement. Disse tetrode bundter tilladt os at optage fra tøjrede kakerlakker end relatere CC enhed aktivitet til ændringer i ganghastighed 14 og dreje adfærd som følge af antennal kontakt med en stang 10.

Så nyttige som disse tøjrede forberedelser har været og vil fortsat være, gør de præsentere nogle begrænsninger. Først, den adfærd, insektet kan udføre er begrænset til et plan. Det er, kunne vi let fremkalde ændringer i ganghastighed eller drejning, men klatring og tunneling handlinger ikke var muligt, i det mindste med den typiske tøjr arrangement. For det andet, vores tøjrede præparater "open loop". Det vil sige, at de ikke giver mulighed for en normal bevægelse i forbindelse feedback til systemet. Således som den kakerlak tændt vores tøjr, dens visuelle verden blev ikke ændret i overensstemmelse hermed. Det er muligt at bygge lukkede sløjfe tether systemer til at indføre denne form for feedback. Men de er begrænset af kompleksiteten af ​​programmeringen og hardware simulerede visuelle miljø. Ikke desto mindre skals, vi følte, at vi kunne forbedre vores eksisterende tøjrede optagelse metoder ved at optage fra dyret, da det gik frit i en arena eller spor og stødte objekter, som det ville i sine naturlige omgivelser.

Selvom trådløse systemer til registrering af hjernens aktivitet 15 ville være ideelt, nuværende systemer har begrænsninger i antallet af optagekanaler, tidspunkt for dataopsamling, batterilevetid og vægt. Vi har derfor valgt at forsøge at tilpasse vor tøjret registreringssystem til brug i frit bevægelige præparater. Som bedre trådløse systemer bliver tilgængelige, kan denne teknik let kan tilpasses disse anordninger. Det system, der er beskrevet i denne artikel er lette vægt, virker meget godt og synes at have ringe skadelig virkning på kakerlak adfærd. Med en billig high speed kamera og klynge skæring software, kan aktivitet i individuelle hjerne neuroner være relateret til bevægelse. Her beskriver vi preparation af tetrode ledninger og deres implantation i insektets hjerne samt optagelse teknikker til elektrisk aktivitet og bevægelse, og hvordan disse data kan bringes sammen til efterfølgende analyse.

Protocol

1.. Fremstilling af tetrode Wires Træk en meget tynd nichromtråd (12 um diameter, PAC belægning) på ca 1,1 m længde. Vedhæft et bånd tag til hver ende. Hæng wiren over en horisontal gevindstang således at de to ender er i samme højde nær stationære. Gentag trin 1.1 for en anden tråd, hvilket gør yderligere to ender til en total på 4, og placere det ved siden af ​​den første tråd (ca. 1 cm i mellem). Holde de fire enderne sammen med et bånd-tag og vedhæfte tag til en …

Representative Results

Vi indspillede den neurale aktivitet på 50 enheder fra CC i 27 forberedelserne til vandre eksperimenter. For 15 af disse præparater (23 enheder) blev klatring eksperimenter også udført. Enkelte enheder er navngivet efter forberedelse og unit-numre (f.eks enhed 1-2 indikerer forberedelse 1 enhed 2). Snapshots af video af en klatring forsøg er vist i figur 4.. Hele videoen er tilgængelig i supplerende Video 1 (Lyden er fra enhed 1-2). Optagelsen…

Discussion

Mens tidligere elektrofysiologiske undersøgelser af CC eller andre regioner af insekt hjerne har givet os indsigt i den centrale styring af adfærd, blev de fleste af dem udført i enten tilbageholdende præparater 9,11 eller tøjret dem 10,14. Som et resultat, kan dyrets sanseoplevelse og fysiologiske tilstand være meget forskellige fra dem i naturlige omgivelser. Endvidere er de adfærdsmæssige opgaver at dyret kan udføre, er begrænset til et plan under disse situationer. Her præsenterede v…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Nick Kathman for forslag og hjælpe på at forberede manuskriptet. Denne teknik blev udviklet i samarbejde med arbejde støttes af AFOSR under tilskud FA9550-10-1 til 0054 og National Science Foundation under Grant No IOS-1.120.305 til RER.

Materials

Nichrome wire  Sandvik Heating Technology Kanthal RO-800 Use for tetrode
Biomedical polyethylene tubing A-M Systems 800700 Use for tetrode tubing
Lynx-8 Neuralynx Use for multi-unit recording
Cheetah 32 Neuralynx Use for multi-unit recording
High speed camera Basler A602f Use fir video recording for walking experiments
High speed camera Casio EX-FC150  Use for video recording for climbing experiments
WINanalyze Winanalyze version 1.4 3D Use for video tracking 
Matlab MathWorks MATLAB R2012b Use for TTL pulse generation and off-line data analysis

Referencias

  1. Strauss, R. The central complex and the genetic dissection of locomotor behaviour. Curr. Opin. Neurobiol. 12, 633-638 (2002).
  2. Pick, S., Strauss, R. Goal-driven behavioral adaptations in gap-climbing Drosophila. Curr. Biol. 15, 1473-1478 (2005).
  3. Triphan, T., Poeck, B., Neuser, K., Strauss, R. Visual targeting of motor actions in climbing Drosophila. Curr. Biol. 20, 663-668 (2010).
  4. Heinze, S., Gotthardt, S., Homberg, U. Transformation of polarized light information in the central complex of the locust. J. Neuorosci. 29, 11783-11793 (2009).
  5. Heinze, S., Homberg, U. Maplike representation of celestial E-vector orientations in the brain of an insect. Science. 315, 995-997 (2007).
  6. Heinze, S., Homberg, U. Neuroarchitecture of the central complex of the desert locust: Intrinsic and columnar neurons. J. Comp. Neurol. 511, 454-478 (2008).
  7. Heinze, S., Homberg, U. Linking the input to the output: new sets of neurons complement the polarization vision network in the locust central complex. J. Neurosci. 29, 4911-4921 (2009).
  8. Heinze, S., Reppert, S. M. Sun compass integration of skylight cues in migratory monarch butterflies. Neuron. 69, 345-358 (2011).
  9. Brill, M. F., et al. Parallel processing via a dual olfactory pathway in the honeybee. J Neurosci. 33, 2443-2456 (2013).
  10. Guo, P., Ritzmann, R. E. Neural activity in the central complex of the cockroach brain is linked to turning behaviors. J. Exp. Biol. 216, 992-1002 (2013).
  11. Ritzmann, R. E., Ridgel, A. L., Pollack, A. J. Multi-unit recording of antennal mechanosensitive units in the central complex of the cockroach, Blaberus discoidalis. J. Comp. Physiol. A. 194, 341-360 (2008).
  12. Buzsáki, G. Large-scale recording of neuronal ensembles. Nature Neurosci. 7.5, 446-445 (2004).
  13. Huston, S. J., Jayaraman, V. Studying sensorimotor integration in insects. Curr. Opin. Neurobiol. 21, 527-534 (2011).
  14. Bender, J. A., Pollack, A. J., Ritzmann, R. E. Neural activity in the central complex of the insect brain is linked to locomotor changes. Curr. Biol. 20, 921-926 (2010).
  15. Harrison, R. R., et al. Wireless Neural/EMG telemetry systems for small freely moving animals. IEEE. 5, 103-111 (2011).
  16. Straw, A. D., Dickinson, M. H. Motmot, an open-source toolkit for realtime video acquisition and analysis. Source Code Biol. Med. 4, 5 (2009).
  17. Tyrer, N. M., Shaw, M. K., Altman, J. S., Strausfeld, N. J., Miller, T. A. . Neuroanatomical Techniques. Insect Nervous System. , (1980).
  18. Daly, K., Wright, G., Smith, B. Molecular features of odorants systematically influence slow temporal responses across clusters of coordinated antennal lobe units in the moth, Manduca sexta. J. Neurophsyiol. 92, 236-254 (2004).
  19. Branson, K., Robie, A., Bender, J., Perona, P., Dickinson, M. High-throughput ethomics in large groups of Drosophila. Nat Methods. 6, 451-457 (2009).
check_url/es/51337?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Guo, P., Pollack, A. J., Varga, A. G., Martin, J. P., Ritzmann, R. E. Extracellular Wire Tetrode Recording in Brain of Freely Walking Insects. J. Vis. Exp. (86), e51337, doi:10.3791/51337 (2014).

View Video