Summary

Belirli Fonksiyonel İçsel Sinyal birleştiren tarafından neokorteks Mikro-etki ve İki foton Görüntüleme nöronlar Hedefli Etiketleme

Published: December 12, 2012
doi:

Summary

Bir yöntem olup, önceden belirlenmiş neokorteks fonksiyonel mikro etki floresan boyalar ile nöronlar etiketleme için açıklanmıştır. İlk olarak, iç sinyal optik görüntüleme fonksiyonel bir harita elde etmek için kullanılır. Sonra iki foton mikroskopi haritanın bir mikro-etki alanı içindeki etiket ve resim nöronlar için kullanılır.

Abstract

Kemirgen olmayan memeli primer görsel korteks, nöronların böyle bir yönelim 1-4, yön 5-7, baskın göz 8,9 ve binoküler eşitsizlik 9 olarak uyarıcı özellikler için kendi tercihinize göre kümelenmiş. Oryantasyon seçiciliği en çok çalışılan bir özelliktir ve tercihli yönelim için bir yarı-periyodik düzeni ile sürekli bir harita tüm primer görsel korteks 10,11 genelinde mevcuttur. Bu işlevsel haritaları uyarıcı seçici yanıtları yol, sinaptik hücresel ve ağ katkıları entegre milimetre mekansal ölçekler için alt-mikron yayılan görüntüleme tekniklerinin hibridizasyon gerektirir. Konvansiyonel intrinsik sinyal optik görüntüleme ile, görsel korteksin tüm yüzeyi boyunca işlevsel haritaların genel düzenini 12 tespit edilebilir. Kalsiyuma duyarlı boyalar kullanılarak in vivo olarak iki-fotonlu mikroskobu gelişme synapt belirlemek için bir olanakic giriş bireysel nöronal hücre gövdeleri 6,14 yüzlerce aynı anda bireysel dendritik dikenler az 13 veya kayıt aktivite gelen. Sonuç olarak, iki foton mikroskopi mikronaltı uzaysal çözünürlüğü ile intrinsik sinyal görüntüleme birleştirerek dendritik segmentleri ve hücrelerin neokorteks herhangi bir fonksiyonel haritanın mikro-etki katkıda bulunduğunu tam olarak belirleme olanağı sunuyor. Burada hızlı bir kortikal yönelim haritasını elde etmek ve bir kemirgen olmayan memeli floresan boyalar ile nöronlar etiketlenmesi için bu işlevsel harita belirli bir mikro-etki hedefleme için yüksek verim yöntemi göstermektedir. Iki foton görüntüleme için kullanılan aynı mikroskop ile önce intrinsik sinyal optik görüntüleme kullanarak bir yönelim haritasını oluşturur. Sonra da etikete boya ile yüklü bir mikropipet kullanarak ilgi bir mikro-etki hedef göstermek nöronal hücre gövdeleri veya etiket dendrit dikenleri ve aksonlar görülebilir böyle bir nöronun bir nüfusavivo. Önceki yöntemler üzerinde Bizim ayrıntılandırmaları neokortikal fonksiyonel mimarisi çerçevesinde alt-hücresel çözünürlük ile nöronal yapı-işlev ilişkilerinin incelenmesi kolaylaştıracaktır.

Protocol

1. Cerrahi Hazırlık Anestezi øndükle ve sürekli kalp atışlarının izlenmesi, tidal CO 2, EEG, ve sıcaklık bitirmek. Tüm prosedürler Güney Carolina Tıp Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından onaylanmış ve biz daha önce 9,15 yayınlanan bu esas alındı. Bistüri ile cilt keserek kafatasının dorsal yüzeyi Açığa. Bir Brudon küret kullanarak kemiği örten bağ dokuları diseke. Pamuk uçlu aplikatörler ve pamuklu gazlı bez ku…

Representative Results

Bizim boya etiketleme yöntemleri hassasiyeti göstermek için, biz kemirgen olmayan neokorteks bilinen herhangi bir fonksiyonel haritanın küçük mikro-etki hedeflenmiş. Seyrek tekilliklerin olan birincil görsel korteks yönelim harita boyunca noktaladı. Bunların hepsi tercih yönelimleri gibi yakınsama noktalarda meydana geldiğini tercihli yönelim, "fırıldak" (Şekil 2A-B) gibi tekillik göz çevresindeki bölgelerin sahte renk haritalarında. Kraniotomi başına bir fırıldak ö…

Discussion

Biz neokorteks önceden belirlenmiş fonksiyonel mikro alanlarda nöronal hücre gövdeleri (ya da dendrit ve akson) ve etiketleme hedeflemek için bir yöntem mevcut. Iki foton mikroskopi ile intrinsik sinyal optik görüntüleme birleştirme sinapslar ve hücrelerin herhangi bir fonksiyonel haritanın mikro-etki katkıda belirleme imkanı sunuyor, ister işlevsel haritası nöronun konumu ve nöronal devre ile nöronal seçicilik korele bileşenleri görsel deneyim 7 veya klinik tedavi edici ilaçlar 1…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Şekil 5A gösterilen dendritler izlemek için Grace Dion;; Bu eser Biz de cerrahi işlemler için yardım Matthew Petrella teşekkür Ulusal Göz Enstitüsü R01EY017925 ve R21EY020985 ve Dana & Whitehall Kuruluşlar PK fonlarından hibe tarafından desteklenen ve Pratik Chhatbar için yazması üzerine yorumlar.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalogue Number Comments
      1. Life support/experiment prep
Isoflurane Webster Vet NDC 57319-474-05  
Isoflurane vaporizer Midmark VIP 3000  
Feedback regulated heating blanket Harvard Apparatus 50-7079F  
ECG monitor Digicare Biomedical LifeWindow Lite  
EEG amplifier A-M Systems 1800  
EEG display monitor Hewlett Packard 78304A  
End tidal CO2 monitor Respironics Novametrix Capnoguard 1265 Optimize ventilation
Carbide drill burrs for drilling bone Henry Schein fine (0.5 mm tip) and coarse (1.25 mm tip)  
Cement for headplate/chamber Dentsply 675571, 675572  
Black Powder Tempera Paint Sargent Art Inc. 22-7185 Add to cement to improve light shielding and reduce reflections
Agarose – Type III-A Sigma A9793 For minimizing pulsations during intrinsic signal and two-photon imaging
Coverglass: 5 or 8 mm diameter, 0.17 mm thickness World Precision Instruments 502040, 502041 For minimizing pulsations during imaging, the coverglass may be cut as needed
Brudon curettes George Tiemann 105-715-0, 105-715-3 Cleaning skull surface
Bone wax Ethicon W31G Quickly stop bleeding
Cotton Tipped Applicator Electron Microscopy Sciences 72308-05 Clean and dry bone surface
Dumont #5CO Forceps Fine Science Tools 11295-20 Grab individual layers of dura or pia
Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 15000-03 Cut dura
Gelfoam Pfizer 09-0396-05 To stop bleeding on the dura
Absorption spears Fine Science Tools 18105-01 Ultra-fast and lint-free wicking of CSF
Blackout material Thorlabs BK5 Shield craniotomy
      2. Dye preparation / injection
Dimethyl Sulphoxide (DMSO) Sigma D2650  
Pluronic Sigma P2443  
Oregon Green 488 Bapta-1 AM Invitrogen O6807 Calcium indicator
Alexa Fluor 594 Invitrogen A10438  
Centrifugal filter (0.45 μm pore size) Millipore UFC30HV00 To remove impurities before injection
Glass pipette puller Sutter Instruments P97  
Borosilicate glass filamented capillary (1.5 mm outer diameter) World Precision Instruments 1B150F-4 Dye ejection pipette
Microloader Eppendorf 5242 956 003 For loading dye into pipette
Micromanipulator Sutter Instruments MP-285 To position pipette
Pressure pulse controller Parker Hannifin PicoSpritzer III For pressure injection of the dye
Single-cell electroporator Molecular Devices Axoporator 800A For electroporation of the dye
      3. Intrinsic imaging
4x Objective (0.13 NA, 17 mm WD) Olympus UPLFLN4X  
Intrinsic hardware / software Optical Imaging Inc. Imager 3001 / VDAQ VDAQ software is used for episodic imaging
CCD Camera Adimec Adimec-1000  
Light source power supply KEPCO ATE 15-15M  
Light source Optical Imaging Inc. HAL 100 Light intensity at the cortical surface is 3-5 mW
Green filter (for vascular image) Optical Imaging Inc. λ = 546 nm (bandpass 30 nm) For reference image of surface vasculature
Red filter (for intrinsic signal) Optical Imaging Inc. λ = 630 nm (bandpass 30 nm) To collect intrinsic signals
Heat filter Optical Imaging Inc. KG-1  
      4. Two-photon rig/imaging
Two-photon microscope and software Prairie Technologies   See Shen et al. 2012 for light path, filters and laser power
Ti:Sapphire laser Spectra-Physics Mai Tai XF  
20x (0.5 NA; 3.5 mm WD) Olympus UMPLFLN20X 0.5 NA objective is used only for aligning pipette over the craniotomy (not for two photon imaging)
20x (1.0 NA; 2.0 mm WD) Olympus XLUMPLFLN20X  
40x (0.8 NA; 3.3 mm WD) Olympus LUMPLFLN40X/IR  
Air table Newport ST-200 Isolates preparation from external vibrations
xy stage Mike’s Machine Co. (Attleboro, MA)   Experimental subject and Sutter micromanipulator placed on xy stage
     
Recipes
Artificial Cerebro-Spinal Fluid NaCl (135 mM), KCl (5.4 mM), MgCl2 (1.0 mM), CaCl2 (1.8 mM), HEPES (5 mM), pH 7.4
Pipette Solution14 NaCl (150 mM), KCl (2.5 mM), HEPES (10 mM), pH 7.4

Referencias

  1. Blasdel, G. G., Salama, G. Voltage-sensitive dyes reveal a modular organization in monkey striate cortex. Nature. 321, 579-585 (1986).
  2. Grinvald, A., Lieke, E., Frostig, R. D., Gilbert, C. D., Wiesel, T. N. Functional architecture of cortex revealed by optical imaging of intrinsic signals. Nature. 324, 361-364 (1986).
  3. Bonhoeffer, T., Grinvald, A. Iso-orientation domains in cat visual cortex are arranged in pinwheel-like patterns. Nature. 353, 429-431 (1991).
  4. Ohki, K., et al. Highly ordered arrangement of single neurons in orientation pinwheels. Nature. 442, 925-928 (2006).
  5. Shmuel, A., Grinvald, A. Functional organization for direction of motion and its relationship to orientation maps in cat area 18. J. Neurosci. 16, 6945-6964 (1996).
  6. Ohki, K., Chung, S., Ch’ng, Y. H., Kara, P., Reid, R. C. Functional imaging with cellular resolution reveals precise micro-architecture in visual cortex. Nature. 433, 597-603 (2005).
  7. Li, Y., Van Hooser, S. D., Mazurek, M., White, L. E., Fitzpatrick, D. Experience with moving visual stimuli drives the early development of cortical direction selectivity. Nature. 456, 952-956 (2008).
  8. Bonhoeffer, T., Kim, D. S., Malonek, D., Shoham, D., Grinvald, A. Optical imaging of the layout of functional domains in area 17 and across the area 17/18 border in cat visual cortex. Eur. J. Neurosci. 7, 1973-1988 (1995).
  9. Kara, P., Boyd, J. D. A micro-architecture for binocular disparity and ocular dominance in visual cortex. Nature. 458, 627-631 (2009).
  10. da Costa, N. M., Martin, K. A. Whose Cortical Column Would that Be. Frontiers in Neuroanatomy. 4, 16 (2010).
  11. Kaschube, M., et al. Universality in the evolution of orientation columns in the visual cortex. Science. 330, 1113-1116 (2010).
  12. Villeneuve, M. Y., Vanni, M. P., Casanova, C. Modular organization in area 21a of the cat revealed by optical imaging: comparison with the primary visual cortex. Neurociencias. 164, 1320-1333 (2009).
  13. Chen, X., Leischner, U., Rochefort, N. L., Nelken, I., Konnerth, A. Functional mapping of single spines in cortical neurons in vivo. Nature. 475, 501-505 (2011).
  14. Stosiek, C., Garaschuk, O., Holthoff, K., Konnerth, A. In vivo two-photon calcium imaging of neuronal networks. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 7319-7324 (2003).
  15. Shen, Z., Lu, Z., Chhatbar, P. Y., O’Herron, P., Kara, P. An artery-specific fluorescent dye for studying neurovascular coupling. Nat. Methods. 9, 273-276 (2012).
  16. Nevian, T., Helmchen, F. Calcium indicator loading of neurons using single-cell electroporation. Pflugers Archiv. 454, 675-688 (2007).
  17. Kitamura, K., Judkewitz, B., Kano, M., Denk, W., Hausser, M. Targeted patch-clamp recordings and single-cell electroporation of unlabeled neurons in vivo. Nat. Methods. 5, 61-67 (2008).
  18. Pohl-Guimaraes, F., Krahe, T. E., Medina, A. E. Early valproic acid exposure alters functional organization in the primary visual cortex. Exp. Neurol. 228, 138-148 (2011).
  19. Bock, D. D., et al. Network anatomy and in vivo physiology of visual cortical neurons. Nature. 471, 177-182 (2011).
  20. Rochefort, N. L., et al. Development of direction selectivity in mouse cortical neurons. Neuron. 71, 425-432 (2011).
  21. Mrsic-Flogel, T. D., et al. Homeostatic regulation of eye-specific responses in visual cortex during ocular dominance plasticity. Neuron. 54, 961-972 (2007).
  22. Bonhoeffer, T., Grinvald, A., Toga, A. W., Mazziotta, J. C. Optical Imaging Based on Intrinsic Signals. Brain mapping: The Methods. , 55-97 (1996).
  23. Kerr, J. N., Greenberg, D., Helmchen, F. Imaging input and output of neocortical networks in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102, 14063-14068 (2005).
  24. Hofer, S. B., et al. Differential connectivity and response dynamics of excitatory and inhibitory neurons in visual cortex. Nat. Neurosci. 14, 1045-1052 (2011).

Play Video

Citar este artículo
O’Herron, P., Shen, Z., Lu, Z., Schramm, A. E., Levy, M., Kara, P. Targeted Labeling of Neurons in a Specific Functional Micro-domain of the Neocortex by Combining Intrinsic Signal and Two-photon Imaging. J. Vis. Exp. (70), e50025, doi:10.3791/50025 (2012).

View Video