Summary

piggyBac تعديل النظام الأساسي للخلايا ينقول T الإنسان

Published: November 05, 2012
doi:

Summary

وصفنا طريقة لتعديل خلايا T وراثيا الأساسي الإنسان مع التحوير باستخدام غير الفيروسية<em> piggyBac</em> ينقول النظام. خلايا T تعديلها لاستخدام<em> piggyBac</em> نظام ينقول التعبير المعرض التحوير مستقرة.

Abstract

نظام ينقول piggyBac نشط بشكل طبيعي، والمستمدة أصلا من 1،2 الملفوف فراشة وبير. هذا النظام غير الفيروسية هو البلازميد القائم، والأكثر شيوعا استخدام البلازميدات 2 مع واحد يعبر عن انزيم transposase piggyBac وينقول البلازميد إيواء الجينات (ق) في المصالح بين عناصر تكرار مقلوب وهي مطلوبة من أجل نقل الجينات النشاط. PiggyBac نقل الجينات من خلال يتوسط و"قص ولصق" آلية يمكن من خلالها للtransposase يدمج الجزء ينقول في جينوم الخلية الهدف (ق) من الفائدة. أثبتت كفاءة النشاط PiggyBac توصيل الجينات في مجموعة متنوعة واسعة من 1،2 الحشرات، الثدييات 3-5، و الإنسان بما في ذلك cells6 الأولية خلايا T الإنسان 7،8. مؤخرا، تم إنشاء transposase piggyBac مفرط تحسين كفاءة نقل الجينات 9،10.

الإنسان الخلايا الليمفاوية T هي من intere السريريةسانت لعلاج مناعي لسرطان بالتبني 11. من المذكرة، تمت الموافقة على أول محاكمة سريرية شملت ينقول تعديل خلايا T الإنسان باستخدام نظام ينقول الجميلة النائمة 12. لدينا تقييم من قبل الأداة المساعدة من piggyBac كمنهجية غير الفيروسية للالتعديل الوراثي للخلايا T الإنسان. وجدنا piggyBac لتكون فعالة في التعديل الوراثي للخلايا T الإنسان مع الجينات مراسل والانتحار غير محرض مناعة الجين 7. كشف تحليل لمواقع التكامل الجينومية عدم وجود تفضيل للاندماج الجينات المسرطنة بروتو أو بالقرب منها معروفة 13. كنا piggyBac لتعديل الجينات السامة للخلايا الليمفاوية T للقيام مستقبلات مستضد خيالية موجهة ضد مستضد الورم HER2، ووجد أن الجين بوساطة استهدفت خلايا T-معدلة قتل HER2 إيجابية الخلايا السرطانية في التجارب المختبرية والحية في نموذج الفأر مثلي 14. وقد استخدمنا أيضا piggyBacعلى توليد خلايا T المقاومة للrapamycin الإنسان، التي ينبغي أن تكون مفيدة في علاج السرطان حيث يستخدم rapamycin 15.

هنا، نحن تصف طريقة لاستخدام piggyBac لتعديل وراثيا خلايا T الأساسي الإنسان. وهذا يشمل عزل الخلايا الدموية المحيطية وحيدات النوى (PBMCs) من دم الإنسان تليها الثقافة والتحوير الجيني، وتنشيط خلايا T. لغرض هذا التقرير، تم تعديل الخلايا T مع الجينات مراسل (EGFP) للتحليل الكمي والتعبير الجيني من قبل التدفق الخلوي.

ويمكن استخدام خلايا لتعديل PiggyBac T الإنسان مع مجموعة متنوعة من الجينات في المصالح. على الرغم من أننا قد استخدمت لتوجيه الخلايا piggyBac لمستضدات الأورام T 14، وقد استخدمنا أيضا piggyBac لإضافة مفتاح السلامة محرض من أجل القضاء على خلايا الجينات تعديل إذا لزم الأمر 7. وقد مكنت طاقة شحن كبيرة من piggyBac أيضا نقل الجينات منلمقاومة كبيرة rapamycin جزيء mTOR (15 KB) 15. ولذلك، فإننا نقدم منهجية غير مستقرة للفيروسات لتعديل الجينات من الخلايا الأولية T الإنسان لطائفة واسعة من الأغراض.

Protocol

اليوم 0 1. عزل PBMCs من دم الإنسان جمع 20 مل من الدم البشري الطازج باستخدام بزل الوريد إلى أنابيب vacutainer نا الهيبارين. مزيج الدم والمتقدم RPMI 1640 في 1:1 (V / V) النسبة. …

Representative Results

ويرد التخطيطي تبين الخطوات في تعديل وراثيا الخلايا الليمفاوية T الإنسان مع الجينات مراسل (EGFP) في الشكل رقم 1. هذه البلازميدات متوفرة عند الطلب من المؤلفين. A schemtic مما يدل على الخطوات في الخلايا الليمفاوية T المعدلة وراثيا الإنسان مع الجينات مراسل (EGFP) هو شووين ?…

Discussion

الطريقة الموضحة هنا يمكن تعديل مستقرة التحوير الأولية الخلايا الليمفاوية T الإنسان. لقد اختبرنا سابقا استخدام نظام ينقول piggyBac لتعديل خلايا T للتعبير عن الجينات مراسل (لأكثر من 4 أسابيع)، جين الانتحار غير مناعة، ومستقبلات مستضد خيالية لعلاج مناعي بالتبني (لأكثر م…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ويدعم SS في جزء من البحر المتوسط ​​إلى HHMI غراد التدريب من خلال برنامج المنح TBMM. ويدعم MHW في جزء من مهنة جائزة التنمية من وزارة شؤون المحاربين القدامى، وبدعم سخي من الدكتور هارولد والسيدة Selzman M.. وأيد أيضا هذا العمل في جزء من المعاهد الوطنية للصحة سرطان الغدد الليمفاوية P50CA126752 منحة المعاهد الوطنية للصحة وSPORE R01 DK093660.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Lympholyte Cedarlane CL5015  
Advanced RPMI 1,640 LifeTechnologies 12633020  
Hyclone Fetal Bovine Serum Fisher Scientific SH3008803  
GlutaMAX-I Supplement LifeTechnologies 35050-061  
Human IL-15 Recombinant Protein eBioscience 14-8159  
EndoFree Plasmid Maxi Kit Qiagen 12362  
Amaxa Nucleofector Lonza AAD-1001S  
Human T Cell Nucleofector Kit Lonza VPA-1002  
CD8-APC Southern Biotech 9536-11  
Anti-Human CD3 eBioscience 16-0037-81  
Anti-Human CD28 BD Pharmingen 555725  
24 Well Tissue Culture Treated Plate BD Falcon 353047  
24 Well Non Tissue Culture Treated Plate BD Falcon 351147  
      Complete T cell media composition
1x Advanced RPMI 1,640
5% Heat Inactivated Fetal Bovine Serum
2 mM GlutamaxIM-I

Referencias

  1. Cary, L. C. Transposon mutagenesis of baculoviruses: analysis of Trichoplusia ni transposon IFP2 insertions within the FP-locus of nuclear polyhedrosis viruses. Virology. 172 (1), 156 (1989).
  2. Fraser, M. J. Assay for movement of Lepidopteran transposon IFP2 in insect cells using a baculovirus genome as a target DNA. Virology. 211 (2), 397 (1995).
  3. Ding, S. Efficient transposition of the piggyBac (PB) transposon in mammalian cells and mice. Cell. 122 (3), 473 (2005).
  4. Saridey, S. K. PiggyBac transposon-based inducible gene expression in vivo after somatic cell gene transfer. Mol. Ther. 17 (12), 2115 (2009).
  5. Nakanishi, H. piggyBac transposon-mediated long-term gene expression in mice. Mol. Ther. 18 (4), 707 (2010).
  6. Wilson, M. H., Coates, C. J., George, A. L. PiggyBac Transposon-mediated Gene Transfer in Human Cells. Mol. Ther. 15 (1), 139 (2007).
  7. Nakazawa, Y. Optimization of the PiggyBac transposon system for the sustained genetic modification of human T lymphocytes. J. Immunother. 32 (8), 826 (2009).
  8. Raja Manuri, P. V. piggyBac transposon/transposase system to generate CD19-specific T cells for treatment of B-lineage malignancies. Hum. Gene Ther. 21 (4), 427 (2010).
  9. Doherty, J. E. Hyperactive piggyBac gene transfer in human cells and in vivo. Hum. Gene Ther. , (2011).
  10. Yusa, K. A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108 (4), 1531 (2011).
  11. Bonini, C. Genetic modification of T cells. Biol. Blood Marrow Transplant. 17, S15-S20 (2011).
  12. Hackett, P. B., Largaespada, D. A., Cooper, L. J. A transposon and transposase system for human application. Mol. Ther. 18 (4), 1531 (2010).
  13. Galvan, D. L. Genome-wide mapping of PiggyBac transposon integrations in primary human T cells. J. Immunother. 32 (8), 837 (2009).
  14. Nakazawa, Y. PiggyBac-Mediated Cancer Immunotherapy Using EBV-Specific Cytotoxic T-Cells Expressing HER2-Specific Chimeric Antigen Receptor. Mol. Ther. 19 (12), 2133 (2011).
  15. Huye, L. E. Combining mTor Inhibitors With Rapamycin-resistant T Cells: A Two-pronged Approach to Tumor Elimination. Mol. Ther. 19 (12), 2239 (2011).
  16. Vera, J. F. Accelerated production of antigen-specific T cells for preclinical and clinical applications using gas-permeable rapid expansion cultureware (G-Rex). J. Immunother. 33 (3), 305 (2010).
  17. Kahlig, K. M. Multiplexed transposon-mediated stable gene transfer in human cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (4), 1343 (2010).

Play Video

Citar este artículo
Saha, S., Nakazawa, Y., Huye, L. E., Doherty, J. E., Galvan, D. L., Rooney, C. M., Wilson, M. H. piggyBac Transposon System Modification of Primary Human T Cells. J. Vis. Exp. (69), e4235, doi:10.3791/4235 (2012).

View Video