Nous décrivons une méthode pour modifier génétiquement des cellules T humaines primaires avec un transgène en utilisant la non-virale<em> PiggyBac</em> Transposon système. Lymphocytes T modifiés à l'aide de la<em> PiggyBac</em> Transposon exposition expression du transgène système stable.
Le système piggyBac transposon est active par sa nature, l'origine dérivé de la 1,2 arpenteuse du chou papillon. Ce système non viral est un plasmide à base, le plus souvent en utilisant deux plasmides avec une expression de l'enzyme transposase piggyBac et un transposon plasmide hébergeant le gène (s) d'intérêt entre répétées inversées d'éléments qui sont nécessaires à l'activité de transfert de gène. PiggyBac transfert de gènes par médiation un "couper et coller" mécanisme par lequel la transposase intègre le segment de transposon dans le génome de la cellule cible (s) d'intérêt. PiggyBac a démontré l'efficacité de délivrance de gènes activité dans une large gamme de 1,2 insecte, de mammifère 3-5, et humaine cells6 y compris les cellules T humaines primaires 7,8. Récemment, une transposase hyperactive piggyBac a été générée en améliorant l'efficacité de transfert de gènes 9,10.
Lymphocytes T humains sont des intere cliniqueer pour l'immunothérapie adoptive du cancer 11. Fait à noter, le premier essai clinique impliquant une modification transposon des lymphocytes T humains en utilisant le système Sleeping beauty transposon a été approuvée le 12. Nous avons déjà évalué l'utilité de piggyBac comme une méthode non virale pour la modification génétique de cellules T humaines. Nous avons trouvé piggyBac pour être efficace dans la modification génétique de cellules T humaines avec un gène rapporteur et un gène non immunogène inductible suicide 7. L'analyse des sites d'intégration génomique a révélé un manque de préférence pour une intégration dans ou à proximité connues proto-oncogènes 13. Nous avons utilisé piggyBac de gènes modifient les lymphocytes T cytotoxiques pour réaliser un récepteur d'antigène chimérique dirigé contre l'antigène tumoral HER2, et a trouvé que le gène modifiés lymphocytes T médié assassinat ciblé de HER2-positives cellules tumorales de vitro et in vivo dans un modèle de souris orthotopique 14. Nous avons également utilisé piggyBacpour générer des cellules T humaines résistantes à la rapamycine, qui devraient être utiles dans les thérapies du cancer, où la rapamycine est utilisée 15.
Nous décrivons ici une méthode pour utiliser piggyBac de modifier génétiquement les cellules T humaines primaires. Ceci inclut l'isolement des cellules mononucléées du sang périphérique (PBMC) à partir de sang humain suivie par la culture, la modification génétique, et l'activation des cellules T. Aux fins du présent rapport, les cellules T ont été modifiées avec un gène rapporteur (eGFP) pour l'analyse et la quantification de l'expression génique par cytométrie en flux.
PiggyBac peuvent être utilisées pour modifier des cellules T avec une variété de gènes d'intérêt. Bien que nous ayons utilisé piggyBac de diriger les lymphocytes T aux antigènes tumoraux 14, nous avons également utilisé piggyBac d'ajouter un interrupteur de sécurité inductible afin d'éliminer les cellules gènes modifiés si nécessaire 7. La capacité de chargement importante de piggyBac a également permis le transfert de gènes deune molécule de rapamycine grande résistance mTOR (15 ko) 15. Par conséquent, nous présentons une méthodologie non-virale pour le gène-modification stable de cellules T humaines primaires pour une large variété de fins.
Le procédé décrit ici permet de modifier transgène stable de lymphocytes T humains primaires. Nous avons déjà testé l'utilisation du système piggyBac transposon pour modifier des cellules T pour exprimer un gène rapporteur (pour plus de 4 semaines), un gène suicide non immunogène, un récepteur d'antigène chimérique pour l'immunothérapie adoptive (pour plus de 100 jours), et à concevoir une résistance aux médicaments immunosuppresseurs 7,13-15. Non-virale modification des…
The authors have nothing to disclose.
SS est soutenu en partie par le HHMI Med en Grad Subvention de formation par l'intermédiaire du Programme TBMM. MHW est soutenu en partie par une bourse de développement de carrière du ministère des Anciens combattants et le soutien généreux de M. et Mme Harold M. Selzman. Ce travail a également été soutenu en partie par le NIH lymphome SPORE P50CA126752 subvention et le NIH R01 DK093660.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
Lympholyte | Cedarlane | CL5015 | |
Advanced RPMI 1,640 | LifeTechnologies | 12633020 | |
Hyclone Fetal Bovine Serum | Fisher Scientific | SH3008803 | |
GlutaMAX-I Supplement | LifeTechnologies | 35050-061 | |
Human IL-15 Recombinant Protein | eBioscience | 14-8159 | |
EndoFree Plasmid Maxi Kit | Qiagen | 12362 | |
Amaxa Nucleofector | Lonza | AAD-1001S | |
Human T Cell Nucleofector Kit | Lonza | VPA-1002 | |
CD8-APC | Southern Biotech | 9536-11 | |
Anti-Human CD3 | eBioscience | 16-0037-81 | |
Anti-Human CD28 | BD Pharmingen | 555725 | |
24 Well Tissue Culture Treated Plate | BD Falcon | 353047 | |
24 Well Non Tissue Culture Treated Plate | BD Falcon | 351147 | |
Complete T cell media composition 1x Advanced RPMI 1,640 5% Heat Inactivated Fetal Bovine Serum 2 mM GlutamaxIM-I |