Ci descrivono un<em> In vitro</emMetodo> per schistosomula coltura del parassita verme piatto<em> Schistosoma mansoni</em>, Attraverso la raccolta e la trasformazione di cercarie infettive da acqua dolce glabrata ospite intermedio Biomphalaria lumaca.
Parassiti schistosoma sono gli agenti causali della schistosomiasi, una malattia cronica debilitante che colpisce oltre 200 milioni di persone nel mondo e al secondo posto alla malaria tra le malattie parassitarie, in termini di salute pubblica e impatto socio-economico (1-4). Schistosoma sono vermi parassiti trematode con un ciclo di vita complesso interscambio tra una vita parassitaria in ospiti di molluschi e di mammiferi con intervenendo libero nuoto fasi. In breve, nuoto libero cercarie infettare un ospite mammifero penetrando la pelle con l'ausilio di proteasi secrete, durante i quali le cercarie perdono la coda, si trasforma in schistosomules. Il schistosomules deve ora eludere il sistema immunitario ospite, sviluppare un intestino per la digestione dei globuli rossi, e migrano attraverso i polmoni e la circolazione portale in rotta verso la destinazione finale nel sistema portale epatico ed eventualmente le vene mesenteriche (per S. mansoni) dove maschile e femminile coppia vermi e compagno, producendo centinaia di uova ogni giorno. Alcune delle uova sono espulso dal corpo in acqua dolce, dove le uova si schiudono in free-nuoto miracidi (5-10). Il miracidi infettare specie di lumaca specifici e si trasformano in sporocisti madre e figlia, che a loro volta, producono cercarie infettive, completando il ciclo di vita. Purtroppo, l'intero ciclo di vita schistosoma non può essere coltivato in vitro, ma cercarie infettive può essere trasformato in schistosomules, e il schistosomules può essere coltivato per settimane per l'analisi dello sviluppo schistosoma in vitro o l'analisi microarray. In questo protocollo, forniamo una descrizione visiva di trasformazione cercarie e de coltura in vitro di schistosomules. Noi capannone cercarie infettive dal glabrata Biomphalaria lumaca di accoglienza e manualmente li trasformano in schistosomules staccando la coda con un emulsionante doppio attacco ago. In vitro cercarie trasformazione e tecniche di coltura schistosomules descritte evitare l'uso di un ospite mammifero, che semplifica la visualizzazione di schistosomi e facilita la raccolta del parassita per l'analisi sperimentale. Trasformazione in vitro e le tecniche di coltura schistosomi sono state fatte da anni (11, 12), ma non esistono ancora protocolli visivo sono stati sviluppati che sono disponibili per l'intera comunità.
Diversi potenziali problemi potrebbero insorgere durante la procedura di trasformazione, tuttavia, questo protocollo è stato progettato per evitare la maggior parte di questi problemi. Un potenziale pericolo è l'intasamento dell'ago emulsionante, che nasce di solito a causa di detriti lasciati dalla raccolta al punto 1.3. Assicuratevi di lasciare tutto il particolato di stabilirsi a passo 1,5 e di trasferire le cercarie attenzione al punto da 1,6 a evitare questo problema. Inoltre, come descritto in precedenza, lavorando all'interno di una cappa di sicurezza biologica, l'uso di dispositivi di protezione individuale (anche visiere) e di evitare una pressione eccessiva sulla siringhe è consigliabile.
Staccata code cercarie possono essere visualizzati nei media, che è indicativo della scarsa separazione durante la fase 2.9. Le code mostra uno spasmo, come movimento e hanno una forma distinta (vedi Figura 2), e questa convenzione sono facilmente distinguibili dal schistosomules. La coda può essere rimosso lavando il schistosomules in eccesso di RPMI completo che permette la schistosomules di stabilirsi. Le code rimarranno galleggianti e possono essere aspirate fuori.
Se cercarie intatti sono presenti nei media, la trasformazione in fase 2.5 non è stato eseguito correttamente. L'immagine di un cercarie intatto è raffigurato in Figura 3b di riferimento. Se si verifica questo problema, assicurarsi che l'ago emulsionante utilizzato è delle dimensioni appropriate. Inoltre, il numero di volte in cui viene passato il composto cercarie attraverso l'ago può essere aumentata, anche se 40 volte è in genere molto più che sufficiente per raggiungere il 100% di taglio delle code cercarie.
Trasformazione di cercarie in schistosomules è stato descritto nel 1974 da Colley e Wikel (13). Da allora, la preparazione di schistosomules è stato fatto utilizzando la strategia di taglio con un ago e la siringa come descritto in questo protocollo, o utilizzando un approccio vortex e separati con gradienti di Percoll (14, 15) o vorticoso, come dimostrato in questo documento. Queste due tecniche per la preparazione schistosomules sono ben descritti da Fred Lewis (16) e ulteriori informazioni per la coltura di ulteriori schistosomules per la crescita a lungo termine si possono trovare presso il Centro Risorse NIAID schistosoma ( www.schisto-resource.org ).
The authors have nothing to disclose.
Questo progetto è stato finanziato dalla Case Western Reserve fondi di avvio Università fornite E. Jolly. Lumache infette sono stati forniti dal Centro Risorse schistosoma, NIAID-NIH (NIAID Contratto N. HHSN272201000009I). Ringraziamo anche Chris King e Ronald Blanton per il supporto nel garantire infetti lumache schistosoma e per utili discussioni.
Name of reagent | Company | Catalogue number |
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22g x 2-7/8″ Emulsifying needle | Fisher Scientific | 14-825-17G |
RPMI 1640 Medium 1X (500ml) | Invitrogen | 11835030 |
Fetal Bovine Serum (FBS) heat inactivated | Invitrogen | 10082139 |
Penicillin/Streptomycin (100X) | Invitrogen | 15070063 |
Crystallizing Dish (100mm) | Fisher Scientific | 08-741D |
General Purpose Tweezers | Fisher Scientific | 10-316C |
Petco Aquarium net for brine shrimp | Petco | SKU:1190954 |