Summary

उच्च टाइटर हेपेटाइटिस ई वायरस स्टॉक्स के उत्पादन के लिए एक सेल संस्कृति मॉडल

Published: June 26, 2020
doi:

Summary

यहां वर्णित कैसे हेपेटाइटिस ई वायरस (HEV) के उच्च वायरल टाइटर स्टॉक का उत्पादन करने के लिए कुशलतापूर्वक हेपेटोमा कोशिकाओं को संक्रमित करने पर एक प्रभावी तरीका है । प्रस्तुत विधि के साथ, दोनों गैर-छा, साथ ही छा वायरल कणों को काटा जा सकता है और विभिन्न कोशिका रेखाओं को फिर से प्राप्त करने के लिए उपयोग किया जा सकता है।

Abstract

हेपेटाइटिस ई वायरस दुनिया भर में बढ़ती व्यापकता के साथ जिगर सिरोसिस और जिगर की विफलता का प्रमुख कारण है । एकल फंसे आरएनए वायरस मुख्य रूप से रक्त चढ़ाने, अपर्याप्त स्वच्छता की स्थिति और दूषित खाद्य उत्पादों से फैलता है । ऑफ लेबल दवा रिबेनाविरिन (आरबीवी) को डेट करने के लिए कई रोगियों के लिए पसंद का इलाज है। फिर भी, एक विशिष्ट HEV उपचार की पहचान की जानी बाकी है । अब तक, एचईवी जीवन चक्र और रोगजनन के बारे में ज्ञान एक कुशल एचईवी सेल संस्कृति प्रणाली की कमी के कारण गंभीर रूप से बाधित हुआ है। वायरल जीवन चक्र के अध्ययन के लिए एक मजबूत सेल कल्चर सिस्टम जरूरी है जिसमें वायरल रोगजनक भी शामिल है । यहां वर्णित विधि के साथ एक गैर-छा एचईवी की 3 x 106 फोकस बनाने इकाई/एमएल (FFU/mL) और 5 x 104 FFU/mL तक छा HEV के वायरल टाइटर्स का उत्पादन कर सकते हैं । इन कणों का उपयोग करके, प्राथमिक कोशिकाओं और मानव, साथ ही पशु कोशिका लाइनों सहित विविध मूल की विभिन्न कोशिकाओं को संक्रमित करना संभव है। प्लाज्मिड्स से संक्रामक एचईवी कणों का उत्पादन एक अनंत स्रोत बन गया है, जो इस प्रोटोकॉल को बेहद कुशल बनाता है।

Introduction

हेपेटाइटिस ई दुनिया भर में बढ़ती व्यापकता के साथ एक काफी कम करके आंका रोग है । लगभग 20 मिलियन संक्रमणों के परिणामस्वरूप प्रति वर्ष 70,000 से अधिक मौतेंहोतीहैं । अंतर्निहित एजेंट, हेपेटाइटिस ई वायरस (HEV), हाल ही में फिर से असाइन किया गया था और अब जेनेरा ऑर्थोहेपेवायरस और पिसिहेपेवायरस सहित परिवार Hepeviridae के भीतर वर्गीकृत किया गया है । विभिन्न मूल के एचईवी को ऑर्थोहेपेवायरस ए-डी प्रजातियों के भीतर वर्गेड किया जाता है जिसमें मनुष्यों, सूअर, खरगोशों, चूहों, पक्षियों और अन्य स्तनधारियों2से आइसोलेट्स शामिल हैं। वर्तमान में, सकारात्मक केंद्रित, एकल फंसे आरएनए वायरस के आठ विभिन्न जीनोटाइप (जीटी) की पहचान की गई है यद्यपि वे अपनी अनुक्रम पहचान, पारेषण और भौगोलिक वितरण के मार्गों में भिन्न होते हैं, लेकिन उनकी जीनोमिक संरचना अत्यधिक संरक्षित होती है। अधिक विशिष्ट, 7.2 केबीपी एचईवी जीनोम को 3 प्रमुख ओपन रीडिंग फ्रेम (ओआरएफ 1-3) में विभाजित किया गया है। जबकि ORF1 मेजबान सेल के भीतर एक सफल प्रतिकृति के लिए आवश्यक सभी एंजाइमों को एन्कोड करता है, ओआरएफ 2 कैप्सिड प्रोटीन को एन्कोड करता है, और ओआरएफ 3 प्रोटीन असेंबली और संक्रामक कणों की रिहाई के लिए आवश्यक एक कार्यात्मक आयन चैनल के रूप में संचालित होता है3। एक बार बेसल या एपिकल ल्यूमेन हेव में छोड़े जाने के बाद, क्रमशः4,,5,5 के आधार पर वायरस रक्त या मल से उत्पन्न होता है या नहीं, दोनों में क्वासिएलोप्ड और गैर-छा/नग्न प्रजातियां मौजूद हैं।

जबकि GT1 और GT2 मुख्य रूप से विकासशील देशों में पाए जाते हैं केवल मल-मौखिक मार्ग के माध्यम से मनुष्यों को संक्रमित6, GT3, GT4 और GT7 मुख्य रूप से विकसित देशों में होते हैं1,,7 जलाशयों के रूप में सेवारत प्रजातियों की एक किस्म के साथ, उदाहरण के लिए, सूअर8,चूहा9,चिकन10,,11,हिरण12,नेवला13,बल्ले14,खरगोश15,,16,जंगली सूअर17 और कई और अधिक7, 18,,,19,ज़ूनोसिस7,20,18,,21,,22के सबूत प्रदान करते हैं । अपर्याप्त स्वच्छता स्थितियों के अलावा23 और दूषित खाद्य उत्पाद12,24,25,26, रक्ताधान और अंग प्रत्यारोपण के माध्यम से संचरण भी संभव है27,28.26 HEV जिगर सिरोसिस और जिगर की विफलता का एक आम कारण है29 विशेष रूप से पहले से मौजूद जिगर की बीमारी के साथ रोगियों में, इम्यूनोसमझे व्यक्तियों (जीनोटाइप 3, 4 और 7) और गर्भवती महिलाओं (जीनोटाइप 1) । ध्यान दें, हेमेटोपोइटिक रोग30 , 31,,32,,न्यूरोलॉजिकल विकार33और गुर्दे की चोट34 जैसे बाहरी अभिव्यक्तियां भी हैं।34

आज तक, ऑफ-लेबल दवा रिबाविरिन (आरबीवी) कई संक्रमित रोगियों35, 36,36के लिए पसंद का उपचार है। हालांकि, उपचार विफलता और खराब नैदानिक दीर्घकालिक परिणामों के मामलों की सूचना दी गई है । उपचार की विफलता को वायरल म्यूटेनेसिस से जोड़ा गया है और लंबे समय से संक्रमित रोगियों में वायरल विषमता में वृद्धि हुई है37,38,,39. इसके विपरीत, हाल ही में एक यूरोपीय पूर्वव्यापी मल्टीसेंटर अध्ययन आरबीवी उपचार विफलता40के लिए पॉलीमरेज म्यूटेशन को सहसंबंधित करने में सक्षम नहीं था। नैदानिक टिप्पणियों और इन विट्रो प्रयोगों में इंटरफेरॉन41,42, 43,,43सोफोस्बुविर44,,45,जिंक साल्ट46 और सिल्वेस्ट्रोल47,,48 ने भी एंटीवायरल प्रभाव दिखाया है।, बहरहाल, एक विशिष्ट HEV उपचार के लिए पाया जा रहा है, HEV जीवन चक्र और उसके रोगजनन के बारे में ज्ञान की कमी से बाधित । इसलिए, वायरलॉजिकल अध्ययनों के लिए एक मजबूत सेल कल्चर सिस्टम और नई एंटीवायरल दवाओं के विकास की तत्काल आवश्यकताहै।

दुर्भाग्य से, अन्य हेपेटाइटिस वायरस की तरह, एचईवी पारंपरिक सेल लाइनों में प्रचारित करना मुश्किल है और आमतौर पर बहुत धीरे-धीरे कम वायरल लोड की ओर बढ़ता है। फिर भी, कुछ समूह सेल लाइन उपकक्षों की पीढ़ी50 या मीडिया की खुराक51के समायोजन द्वारा वायरल भार को बढ़ावा देने में सक्षम थे। हाल ही में सीडीएनए क्लोन52 का उत्पादन और प्राथमिक रोगी का अनुकूलन 53,54को और बेहतर करके कोशिका संस्कृति55में एचईवी प्रचार में सुधार हुआ।54 इस प्रोटोकॉल में, हमने केर्नो-सी1 तनाव (जिसे p6_WT के रूप में संदर्भित किया जाता है)54 और एक उत्परिवर्ती तनाव को एक प्रतिकृति बढ़ाने वाले उत्परिवर्तन (जिसे p6_G1634R के रूप में संदर्भित)37के जीनोम का उपयोग किया। Kernow-C1 HEV सेल संस्कृति में सबसे अधिक बार इस्तेमाल किया तनाव है और उच्च वायरल भार का उत्पादन करने में सक्षम है । वायरल आरएनए कॉपी नंबरों का आकलन करके, एचईवी प्रतिकृति विट्रो में निगरानी की जा सकती है। इसके बावजूद ये तकनीकें पैदा किए जा रहे संक्रामक कणों की संख्या के आकलन की अनुमति नहीं देतीं । इसलिए, हमने फोकस फॉर्मिंग यूनिट्स (एफएफयू/एमएल) निर्धारित करने के लिए एक इम्यूनोफ्लोरेसेंस धुंधला स्थापित किया है।

यहां वर्णित विधि५६ पूर्ण लंबाई संक्रामक वायरल कणों का उत्पादन करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है जो प्राथमिक कोशिकाओं और स्तनधारी कोशिका लाइनों सहित विविध मूल से विभिन्न प्रकार के कोशिका प्रकारों को संक्रमित करने में सक्षम हैं । यह एचईवी संक्रमण और ट्रोपिज्म के महत्वपूर्ण पहलुओं को समझने के लिए एक मौलिक शर्त है। आमतौर पर सीमित रोगी आइसोलेशन के साथ टीका लगाने की कोई आवश्यकता नहीं है। प्लाज्मिड्स से संक्रामक एचईवी कणों का उत्पादन एक अनंत स्रोत बन गया है, जो इस प्रोटोकॉल को तुलनात्मक रूप से कुशल बनाता है। इसके अलावा, इस प्रणाली रिवर्स आनुवंशिकी के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है वीवो में की पहचान जीनोम परिवर्तन और HEV प्रतिकृति और फिटनेस पर उनके प्रभाव के अध्ययन को सक्षम करने । यह तकनीक कई सीमाओं पर काबू पा रही है और, दवा विकास, म्यूटेनेसिस अध्ययन और प्रतिबंध या प्रवेश कारकों जैसे वायरस-मेजबान इंटरैक्शन के मूल्यांकन के लिए रास्ता तय कर सकती है।

Protocol

नोट: सभी प्रयोग बीएसएल-2 स्थिति के तहत किए जाते हैं। हेपेटाइटिस ई वायरस आरएनए या संक्रामक वायरस के संपर्क में आने वाली सभी सामग्रियों को निपटान से पहले हुड के अंदर एक अपशिष्ट कंटेनर से 4% कोहरसोलिन एफएफ क…

Representative Results

इस प्रोटोकॉल में, हम उच्च टाइटर संक्रामक एचईवीसीसी के उत्पादन का वर्णन करते हैं। पहला कदम प्लाज्मिड डीएनए (pBluescript_SK_HEVp654 और pBluescript_SK_HEVp6-G1634R37, चित्रा 8a)को अलग करना है, जिसे तब प्रतिबंध ?…

Discussion

प्लाज्मिड तैयारी के साथ शुरू, डीएनए पैदावार १५० एनजी/μL से अधिक होना चाहिए एक ही प्लाज्मिड स्टॉक से कई रैखिकीकरण करने में सक्षम होना चाहिए, जो महत्वपूर्ण जीनोम दृश्यों के बैक्टीरिया प्रेरित म्यूटाजेन?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम हेपेटाइटिस ई वायरस p6 क्लोन के लिए सुजान इमर्सन के आभारी हैं। हेव-विशिष्ट खरगोश हाइपरइम्यून सीरम को रेनर उल्रिच, फ्रेडरिक लोफलर इंस्टीट्यूट, जर्मनी द्वारा कृपया प्रदान किया गया था। इसके अलावा, हम रूर विश्वविद्यालय बोचम में आणविक और चिकित्सा विषाणु विज्ञान विभाग के सभी सदस्यों को उनके समर्थन और चर्चा के लिए धन्यवाद देते हैं । आंकड़े 1-7 BioRender.com के साथ उत्पन्न किए गए थे।

Materials

0.45 µm mesh Sarstedt 83.1826 Harvest extracellular Virus
4 % Histofix CarlRoth P087.4 Immunofluorescence
Acetic acid CarlRoth 6755.1 Collagen working solution
Amicon Ultra-15 Merck Millipore UFC910024 Virus harvesting
Ampicillin Sigma-Aldrich A1593 Selection of transformed bacteria
ATP Roche 11140965001 in vitro transcription and electroporation
BioRender BioRender Figure Generation
CaCl2 Roth 5239.2 Cytomix
Collagen R solution 0.4 % sterile Serva 47256.01 Collagen working solution
CTP Roche 11140922001 in vitro transcription
Cuvette Biorad 165-2088 Electroporation
DAPI Invitrogen D21490 Immunofluorescence
DMEM gibco 41965-039 Cell culture
DNAse Promega M6101 in vitro transcription
DTT Promega included in P2077 in vitro transcription
EGTA Roth 3054.3 Cytomix
Escherichia coli JM109 Promega L2005 Transformation
Fetal bovine serum gibco 10270106 Cell culture
Fluoromount SouthernBiotech 0100-01 Immunofluorescence
GenePulser Xcell Electroporation System BioRad 1652660 Electroporation
Gentamycin gibco 15710049 Cell culture
GTP Roche 11140957001 in vitro transcription
H2O Braun 184238001 Immunofluorescence
Hepes Invitrogen 15630-03 Cytomix
Horse serum gibco 16050122 Immunofluorescence
K2HPO4 Roth P749.1 Cytomix
KCL Roth 6781.3 Cytomix
KH2PO4 Roth 3904.2 Cytomix
L-Glutamin gibco 25030081 Cell culture
L-Glutathione reduced Sigma-Aldrich G4251-5G Cytomix
MEM gibco 31095-029 Cell culture
MEM NEAA (100×) gibco 11140-035 Cell culture
MgCl2 Roth 2189.2 Cytomix
Microvolume UV-Vis spectrophotometer NanoDrop One Thermo Fisher ND-ONE-W DNA/RNA concentration
MluI enzyme NEB R0198L Linearization
NEB buffer NEB included in R0198L Linearization
NucleoSpin Plasmid kit Macherey & Nagel 740588.250 Plasmid preparation
NucleoSpin RNA Clean-up Kit Macherey & Nagel 740948.250 RNA purification
PBS gibco 70011051 Cell culture
Pen/Strep Thermo Fisher 15140122 Cell culture
Plasmid encoding full-length HEV genome (p6_G1634R) Todt et.al Virus production
Plasmid encoding full-length HEV genome (p6_WT) Shukla et al. GenBank accession no. JQ679013 Virus production
Primary antibody 1E6 LS-Bio C67675 Immunofluorescence
Primary antibody 8282 Rainer Ulrich, Friedrich Loeffler Institute, Germany
QIAprep Spin Miniprep Kit Qiagen 27106 DNA extraction
Ribo m7G Cap Analog Promega P1711 in vitro transcription
RNase away CarlRoth A998.3 RNA purification
RNasin (RNase inhibitor) Promega N2515 in vitro transcription
Secondary antibody donkey anti-mouse 488 Thermo Fisher A-21202 Immunofluorescence
Secondary antibody goat anti-rabbit 488 Thermo Fisher A-11008 Immunofluorescence
Sodium Pyruvat gibco 11360070 Cell culture
T7 RNA polymerase Promega P2077 in vitro transcription
Transcription Buffer Promega included in P2077 in vitro transcription
Triton X-100 CarlRoth 3051.3 Immunofluorescence
Trypsin-EDTA (0.5 %) gibco 15400054 Cell culture
ultra-low IgG gibco 1921005PJ Cell culture
UTP Roche 11140949001 in vitro transcription

Referenzen

  1. Wedemeyer, H., Pischke, S., Manns, M. P. Pathogenesis and treatment of hepatitis e virus infection. Gastroenterology. 142 (6), 1388-1397 (2012).
  2. Smith, D. B., et al. Proposed reference sequences for hepatitis E virus subtypes. The Journal of General Virology. 97 (3), 537-542 (2016).
  3. Ding, Q., et al. Hepatitis E virus ORF3 is a functional ion channel required for release of infectious particles. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (5), 1147-1152 (2017).
  4. Chapuy-Regaud, S., et al. Characterization of the lipid envelope of exosome encapsulated HEV particles protected from the immune response. Biochimie. 141, 70-79 (2017).
  5. Yin, X., Ambardekar, C., Lu, Y., Feng, Z. Distinct Entry Mechanisms for Nonenveloped and Quasi-Enveloped Hepatitis E Viruses. Journal of Virology. 90 (8), 4232-4242 (2016).
  6. Khuroo, M. S., Khuroo, M. S., Khuroo, N. S. Hepatitis E: Discovery, global impact, control and cure. World Journal of Gastroenterology. 22 (31), 7030-7045 (2016).
  7. Rasche, A., et al. Hepatitis E Virus Infection in Dromedaries, North and East Africa, United Arab Emirates, and Pakistan, 1983-2015. Emerging Infectious Diseases. 22 (7), 1249-1252 (2016).
  8. Hsieh, S. Y., et al. Identity of a novel swine hepatitis E virus in Taiwan forming a monophyletic group with Taiwan isolates of human hepatitis E virus. Journal of Clinical Microbiology. 37 (12), 3828-3834 (1999).
  9. Johne, R., et al. Detection of a novel hepatitis E-like virus in faeces of wild rats using a nested broad-spectrum RT-PCR. The Journal of General Virology. 91, 750-758 (2010).
  10. Payne, C. J., Ellis, T. M., Plant, S. L., Gregory, A. R., Wilcox, G. E. Sequence data suggests big liver and spleen disease virus (BLSV) is genetically related to hepatitis E virus. Veterinary Microbiology. 68 (1-2), 119-125 (1999).
  11. Haqshenas, G., Shivaprasad, H. L., Woolcock, P. R., Read, D. H., Meng, X. -. J. Genetic identification and characterization of a novel virus related to human hepatitis E virus from chickens with hepatitis–splenomegaly syndrome in the United States. Journal of General Virology. 82, 2449-2462 (2001).
  12. Tei, S., Kitajima, N., Takahashi, K., Mishiro, S. Zoonotic transmission of hepatitis E virus from deer to human beings. The Lancet. 362 (9381), 371-373 (2003).
  13. Nakamura, M., et al. Hepatitis E virus infection in wild mongooses of Okinawa, Japan: Demonstration of anti-HEV antibodies and a full-genome nucleotide sequence. Hepatology Research: the Official Journal of the Japan Society of Hepatology. 34 (3), 137-140 (2006).
  14. Drexler, J. F., et al. Bats worldwide carry hepatitis E virus-related viruses that form a putative novel genus within the family Hepeviridae. Journal of Virology. 86 (17), 9134-9147 (2012).
  15. Zhao, C., et al. A novel genotype of hepatitis E virus prevalent among farmed rabbits in China. Journal of Medical Virology. 81 (8), 1371-1379 (2009).
  16. Lhomme, S., et al. Risk of zoonotic transmission of HEV from rabbits. Journal of Clinical Virology: the Official Publication of the Pan American Society for Clinical Virology. 58 (2), 357-362 (2013).
  17. Kaci, S., Nöckler, K., Johne, R. Detection of hepatitis E virus in archived German wild boar serum samples. Veterinary Microbiology. 128 (3-4), 380-385 (2008).
  18. Liu, B., et al. Avian hepatitis E virus infection of duck, goose, and rabbit in northwest China. Emerging Microbes & Infections. 7 (1), 76 (2018).
  19. Raj, V. S., et al. Novel hepatitis E virus in ferrets, the Netherlands. Emerging Infectious Diseases. 18 (8), 1369-1370 (2012).
  20. Dong, C., et al. Restricted enzooticity of hepatitis E virus genotypes 1 to 4 in the United States. Journal of Clinical Microbiology. 49 (12), 4164-4172 (2011).
  21. Goens, S. D., Perdue, M. L. Hepatitis E viruses in humans and animals. Animal Health Research Reviews. 5 (2), 145-156 (2004).
  22. Geng, Y., Wang, Y. Transmission of Hepatitis E Virus. Advances in Experimental Medicine and Biology. 948, 89-112 (2016).
  23. Naik, S. R., Aggarwal, R., Salunke, P. N., Mehrotra, N. N. A large waterborne viral hepatitis E epidemic in Kanpur, India. Bulletin of the World Health Organization. 70 (5), 597-604 (1992).
  24. Feagins, A. R., Opriessnig, T., Guenette, D. K., Halbur, P. G., Meng, X. -. J. Detection and characterization of infectious Hepatitis E virus from commercial pig livers sold in local grocery stores in the USA. The Journal of General Virology. 88, 912-917 (2007).
  25. Colson, P., et al. Pig liver sausage as a source of hepatitis E virus transmission to humans. The Journal of Infectious Diseases. 202 (6), 825-834 (2010).
  26. Wenzel, J. J., et al. Detection of hepatitis E virus (HEV) from porcine livers in Southeastern Germany and high sequence homology to human HEV isolates. Journal of Clinical Virology: the Official Publication of the Pan American Society for Clinical Virology. 52 (1), 50-54 (2011).
  27. Colson, P., et al. Transfusion-associated Hepatitis E, France. Emerging Infectious Diseases. 13 (4), 648-649 (2007).
  28. Kamp, C., et al. Impact of hepatitis E virus testing on the safety of blood components in Germany – results of a simulation study. Vox Sanguinis. , (2018).
  29. Kamar, N., Dalton, H. R., Abravanel, F., Izopet, J. Hepatitis E virus infection. Clinical Microbiology Reviews. 27 (1), 116-138 (2014).
  30. Pischke, S., Behrendt, P., Manns, M. P., Wedemeyer, H. HEV-associated cryoglobulinaemia and extrahepatic manifestations of hepatitis E. The Lancet Infectious Diseases. 14 (8), 678-679 (2014).
  31. Colson, P., et al. Severe thrombocytopenia associated with acute hepatitis E virus infection. Journal of Clinical Microbiology. 46 (7), 2450-2452 (2008).
  32. Mishra, P., Mahapatra, M., Kumar, R., Pati, H. P. Autoimmune hemolytic anemia and erythroid hypoplasia associated with hepatitis E. Indian Journal of Gastroenterology: Official Journal of the Indian Society of Gastroenterology. 26 (4), 195-196 (2007).
  33. Sood, A., Midha, V., Sood, N. Guillain-Barré syndrome with acute hepatitis E. The American Journal of Gastroenterology. 95 (12), 3667-3668 (2000).
  34. Fousekis, F. S., Mitselos, I. V., Christodoulou, D. K. Extrahepatic manifestations of hepatitis E virus: An overview. Clinical and Molecular Hepatology. 26 (1), 16-23 (2020).
  35. Pischke, S., et al. Ribavirin treatment of acute and chronic hepatitis E: A single-centre experience. Liver International: Official Journal of the International Association for the Study of the Liver. 33 (5), 722 (2013).
  36. Kamar, N., et al. Ribavirin for Chronic Hepatitis E Virus Infection in Transplant Recipients. The New England Journal of Medicine. 370, 1111-1120 (2014).
  37. Todt, D., et al. In vivo evidence for ribavirin-induced mutagenesis of the hepatitis E virus genome. Gut. 65, 1733-1743 (2016).
  38. Todt, D., Walter, S., Brown, R. J. P., Steinmann, E. Mutagenic Effects of Ribavirin on Hepatitis E Virus-Viral Extinction versus Selection of Fitness-Enhancing Mutations. Viruses. 8 (10), 8100283 (2016).
  39. Todt, D., Meister, T. L., Steinmann, E. Hepatitis E virus treatment and ribavirin therapy: Viral mechanisms of nonresponse. Current Opinion in Virology. 32, 80-87 (2018).
  40. Kamar, N., et al. Ribavirin for Hepatitis E Virus Infection After Organ Transplantation: A Large European Retrospective Multicenter Study. Clinical Infectious Diseases: An Official Publication of the Infectious Diseases Society of America. , (2019).
  41. Kamar, N., et al. Influence of immunosuppressive therapy on the natural history of genotype 3 hepatitis-E virus infection after organ transplantation. Transplantation. 89 (3), 353-360 (2010).
  42. Kamar, N., et al. Pegylated interferon-alpha for treating chronic hepatitis E virus infection after liver transplantation. Clinical Infectious Diseases: An Official Publication of the Infectious Diseases Society of America. 50 (5), 30-33 (2010).
  43. Todt, D., et al. Antiviral Activities of Different Interferon Types and Subtypes against Hepatitis E Virus Replication. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 60 (4), 2132-2139 (2016).
  44. Dao Thi, V. L., et al. Sofosbuvir Inhibits Hepatitis E Virus Replication In Vitro and Results in an Additive Effect When Combined with Ribavirin. Gastroenterology. 150 (1), 82-85 (2016).
  45. van der Valk, M., Zaaijer, H. L., Kater, A. P., Schinkel, J. Sofosbuvir shows antiviral activity in a patient with chronic hepatitis E virus infection. Journal of Hepatology. 66 (1), 242-243 (2017).
  46. Kaushik, N., et al. Zinc Salts Block Hepatitis E Virus Replication by Inhibiting the Activity of Viral RNA-Dependent RNA Polymerase. Journal of Virology. 91 (21), (2017).
  47. Todt, D., et al. The natural compound silvestrol inhibits hepatitis E virus (HEV) replication in vitro and in vivo. Antiviral Research. 157, 151-158 (2018).
  48. Glitscher, M., et al. Inhibition of Hepatitis E Virus Spread by the Natural Compound Silvestrol. Viruses. 10 (6), 301 (2018).
  49. Kinast, V., Burkard, T. L., Todt, D., Steinmann, E. Hepatitis E Virus Drug Development. Viruses. 11 (6), 485 (2019).
  50. Schemmerer, M., et al. Enhanced Replication of Hepatitis E Virus Strain 47832c in an A549-Derived Subclonal Cell Line. Viruses. 8 (10), 267 (2016).
  51. Huang, R., et al. Cell Culture of Sporadic Hepatitis E Virus in China. Clinical and Vaccine Immunology. 6 (5), 729-733 (1999).
  52. Emerson, S. U., et al. Recombinant hepatitis E virus genomes infectious for primates: Importance of capping and discovery of a cis-reactive element. PNAS. 98 (26), 15270-15275 (2001).
  53. Shukla, P., et al. Cross-species infections of cultured cells by hepatitis E virus and discovery of an infectious virus-host recombinant. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (6), 2438-2443 (2011).
  54. Shukla, P., et al. Adaptation of a genotype 3 hepatitis E virus to efficient growth in cell culture depends on an inserted human gene segment acquired by recombination. Journal of Virology. 86 (10), 5697-5707 (2012).
  55. Meister, T. L., Bruening, J., Todt, D., Steinmann, E. Cell culture systems for the study of hepatitis E virus. Antiviral Research. 163, 34-49 (2019).
  56. Todt, D., et al. Robust hepatitis E virus infection and transcriptional response in human hepatocytes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , (2020).
  57. Ankavay, M., et al. New insights into the ORF2 capsid protein, a key player of the hepatitis E virus lifecycle. Scientific Reports. 9 (1), 6243 (2019).
  58. Schemmerer, M., Johne, R., Erl, M., Jilg, W., Wenzel, J. J. Isolation of Subtype 3c, 3e and 3f-Like Hepatitis E Virus Strains Stably Replicating to High Viral Loads in an Optimized Cell Culture System. Viruses. 11 (6), 483 (2019).

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Diesen Artikel zitieren
Meister, T. L., Klöhn, M., Steinmann, E., Todt, D. A Cell Culture Model for Producing High Titer Hepatitis E Virus Stocks. J. Vis. Exp. (160), e61373, doi:10.3791/61373 (2020).

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