E. coli’de heterolog ekspresyon ve fransız presi kullanılarak hücrelerin lysis’inde üretilen membran vezikül preparatlarında proton-tahrikli membran taşıyıcılarının karakterizasyonu için bir yöntem tanımladık.
Yeni membran taşıyıcıları işlevsel olarak karakterize etmek için çeşitli yöntemler geliştirilmiştir. Poliaminler tüm organizmalarda her yerde bulunur, ancak bitkilerdeki poliamin eşanjörleri tanımlanmamıştır. Burada, escherichia coli hücrelerinin lysis’inden üretilen membran vezikülleri kullanarak poliamin antiporterlarını karakterize eden bir yöntem inanışı bir bitki antiporterını heterologolarak ifade eder. İlk olarak, atbat1’i poliamin ve arginin değişim taşıyıcılarında eksik olan Bir E. coli süzmesinde heterolog olarak ifade ettik. Veziküller bir Fransız presi kullanılarak üretildi, ultrasantrifüj ile saflaştırılmış ve taşıyıcının substrat özgüllüğünü göstermek için etiketli substratların membran filtrasyon telinde kullanıldı. Bu tahliller AtBAT1 arginin bir proton aracılı taşıyıcı olduğunu gösterdi, γ-aminobutirik asit (GABA), putrescine ve spermidin. AtBAT1 tahlil için geliştirilen mutant suşu bitki ve hayvan poliamin eşanjörlerin diğer ailelerin fonksiyonel analizi için yararlı olabilir. Ayrıca bu proteinler bakteri hücre zarında ifade edilebildiği sürece, bu yaklaşımın diğer birçok antiporter türünü karakterize etmek için kullanılabileceğini de varsayız. E. coli, yerli taşıyıcıları susturmak için kullanılan birden fazla yöntem olduğundan, yeni taşıyıcıların karakterizasyonu için iyi bir sistemdir.
Metabolitlerin ticaretinde rol oynayan proteinler fizyolojik düzenlemenin temel bir düzeyini oluşturmaktadır, ancak bitki zarı taşıyıcılarının büyük çoğunluğu henüz işlevsel olarak karakterize edilmemiştir. Yeni taşıma proteinlerini karakterize etmek için çeşitli stratejiler uygulanmıştır. E. coli gibi model organizmalarda heterolog ekspresyon ve maya, Kenopus oositleri, memeli hücreleri, böcek hücreleri ve bitki hücreleri gibi ökaryotik hücreler taşıma aktivitelerini belirlemek için kullanılmıştır1. Ökaryotik hücreler ökaryotik proteinlerin ekspresyonu için tercih edilir, çünkü temel hücresel bileşim, sinyal transducing yolları, transkripsiyon ve çeviri makineleri yerli koşullarla uyumludur.
Maya bitkilerde yeni taşıma proteinleri karakterizasyonu için önemli bir model organizma olmuştur. Başarıyla maya ifade edildi ilk bitki taşıma proteini(Saccharomyces pombe) Chlorella2heksoz taşıyıcı HUP1 oldu. O zamandan beri, birçok bitki taşıma proteinleri fonksiyonel bir maya ifade sistemi kullanılarak karakterize edilmiştir. Bunlar, bitki şekeri taşıyıcıları (SUC1 ve SUC23, VfSUT1 ve VfSTP14)ve auxin taşıyıcılar (AUX1 ve PIN5)içerir. Bitki proteinlerini ifade etmek için maya kullanmanın dezavantajları, mayanın bu organelden yoksun olması, yanlış hedeflenme6, yanlış katlanmış agregaların oluşumu ve membran proteinlerinin aşırı ekspresyonuna bağlı olarak mayadaki stres tepkilerinin aktivasyonu7,8,9.
Xenopus oositlerinde taşıma proteinlerinin heterolog ekspresyonu10taşıyıcıların elektrofizyolojik karakterizasyonu nda yaygın olarak kullanılmaktadır. Xenopus oositlerinde heterolog ekspresyon kullanılarak karakterize edilen ilk bitki taşıma proteinleri Arabidopsis potasyum kanalı KAT110 ve Arabidopsis heksoz taşıyıcısı STP111idi. O zamandan beri, Xenopus oositler plazma membran taşıyıcıları 12 gibi birçok bitki taşıma proteinleri karakterize etmek için istihdam edilmiştir12,vacuolar sakaroz taşıyıcı SUT413 ve vacuolar malate taşıyıcı ALMT914. Xenopus oositlerinin taşıma tahlilleri için önemli bir sınırlama hücre içi metabolitlerin konsantrasyonunun manipüle edilemeyeceğidir1. Ayrıca, profesyonel bilgi Xenopus oositler hazırlamak için gereklidir ve oosit toplu değişkenlik kontrol etmek zordur.
E. coli modelinde heterolog ifade, yeni bitki taşıma proteinlerinin karakterizasyonu açısından ideal bir sistemdir. Tam sekanslı genom15ile E. coli’nin moleküler ve fizyolojik özellikleri iyi bilinmektedir. Moleküler araçlar ve teknikler iyi16kurulmuştur. Buna ek olarak, farklı ekspresyon vektörleri, patojenik olmayan suşlar ve mutantlar mevcuttur17,18,19. Ayrıca, E. coli yüksek bir büyüme hızına sahiptir ve laboratuvar koşullarında kolayca yetiştirilebilir. Birçok protein kolayca ifade edilebilir ve E. coliyüksek miktarlarda saflaştırılmış9. Proteinler hücresel sistemlerde doğrudan titreşemediğinde, proteinlerin lipozomlara dönüştürülmesi de başarılı olmuştur, ancak saflaştırılmış membran proteinlerinin karakterizasyonu için zorlu bir yenilik olmuştur. Soya fasulyesi, mısır, pirinç ve Arabidopsis, Arabidosil-trikarboksilit taşıyıcı gibi soya, mısır, pirinç ve Arabidopsis, dikarboksilat-trikarboksilat taşıyıcı gibi solute taşıyıcılar da dahil olmak üzere bitki mitokondriyal taşıma proteinleri fonksiyonel karakterizasyonu bu model sistemi kullanılarak gerçekleştirilmiştir20,21. Ancak, domates proteini SICAT9 rekombinant proteinlerreconstitution deneylerde fonksiyonel olmayan bulundu, ve CAT taşıyıcı ailesinin diğer üyeleri Xenopus oosit tahlilleri fonksiyonel olmayan bulundu22. Bu nedenle membran taşıyıcılarının karakterizasyonu için ek moleküler araçlara ihtiyaç vardır.
E. coli23’tebeş poliamin taşıma sistemi bulunur. Bunlar spermidin ve putrescine alımı aracılık iki ABC taşıyıcılar, bir putrescine / ornitin eşanjör, bir kadavra / lizin değiştirici, bir spermidin ihracatçısı ve putrescine ithalatçısı içerir. Putrescine değiştirici PotE başlangıçta bir vezikül titreği kullanılarak karakterize edildi, iç dış veziküller bir Fransız basın ıskarta hücreleri lysing tarafından hazırlanan ve ornithine karşılığında veziküller içine radiolabeled putrescine alımını ölçme24. Vezikül tahlilleri de bir proton gradyan25yanıt olarak kalsiyum taşıma aracılık bir kalsiyum taşıyıcı karakterize etmek için kullanılmıştır. Bu deneyler bizi diğer poliamin eşanjörleri karakterizasyonu için bir strateji geliştirmek için istenir. Biz ilk PotE ve CadB değiştiriciler E. coli eksik bir gerginlik oluşturdu. Burada, modifiye E. coli suşunda heterlogous ifade ile bir bitki poliamin antiporter fonksiyonel karakterizasyonu göstermek, bir Fransız basın kullanarak membran vezikülüretimi, ve radiolabeled tahliller.
Bu çalışmada, önce E. coli’deki proteini ifade ederek ve daha sonra membran vezikülleri üreterek bir antiporterın karakterizasyonu için bir yöntem özetleyilmiştir, böylece heterolog olarak ifade edilen protein hücresiz bir sistemde doğrulanabilir. Çoğu moleküler biyoloji laboratuvarında bulunan ekipmana ek olarak, bu strateji bir Fransız basını, ultracentrifuge ve radyoizotop tahlilleri yapmak için bir tesise erişim gerektirir.
Bu tekniğin temel gereksinimlerin…
The authors have nothing to disclose.
Bu proje için destek BGSU Graduate College ve BGSU Ofis Sponsorprogramları ve Araştırma geldi.
2-mercaptoethanol | Sigma-Aldrich | M6250 | |
3H-putrescine | PerkinElmer | NET185001MC | |
3H-spermidine | PerkinElmer | NET522001MC | |
4-chloro-1-naphthol | Sigma-Aldrich | C8890 | |
14C arginine | Moravek Inc. | MC137 | |
Arginine | Sigma-Aldrich | A-5006 | |
Anti-His (C-term)-HRP antibody | ThermoFisher | R931-25 | Detects the C-terminal polyhistidine (6xHis) tag, requires the free carboxyl group for detection |
Arabinose | Sigma-Aldrich | A3256 | |
BCA protein assay kit | ThermoFisher | 23227 | Pierce BCA protein asay kit. |
Bromophenol blue | Bio-Rad | 161-0404 | |
Carboxypeptidase B | Sigma-Aldrich | C9584-1mg | |
Centrifuge | Sorvall | SS-34 fixed angle rotor and GA-6 fixed angle rotor | |
Dounce tissue grinder | LabGenome | 7777-7 | Corning 7777-7 pyrex homogenizer with pour spout. |
Ecoscint-H | National Diagnostics | LS275 | scintillation cocktail |
EDTA | Sigma-Aldrich | ||
Filtration manifold | Hoefer | FH225V | |
French Pressure Cell | Glen Mills | FA-080A120 | |
GABA | Sigma-Aldrich | A2129 | |
Glutamate | Sigma-Aldrich | G6904 | |
Glycerol | |||
GraphPad Prism software | http://www.graphpad.com/prism/Prism.htm | ||
Hydrogen peroxide | KROGER | ||
Potassium Chloride | J.T. Baker | 3040-01 | |
Liquid scintillation counter | Beckman | LS-6500 | |
Maleate | Sigma-Aldrich | M0375 | |
Nanodrop | ThermoFisher | ||
Nitrocellulose membrane filters | Merck Millipore | hawp02500 | 0.45 µM |
PCR clean up kit | Genscript | QuickClean II | |
Potassium Phosphate dibasic | ThermoFisher | P290-500 | |
putrescine | fluka | 32810 | |
Potassium Phosphate monobasic | J.T.Baker | 4008 | |
Spermidine | Sigma-aldrich | S2501 | |
Strains :E. coli ΔpotE740(del)::kan, ΔcadB2231::Tn10 | This manuscript | Available upon request. | Strain is deficient in the PotE and CadB polyamine exchangers. |
Tris-base | Research Products | T60040-1000 | |
Ultracentrifuge | Sorvall MTX 150 | 46960 | Thermo Fisher S150-AT fixed angle rotor |
Ultracentrifuge tubes | ThermoFisher | 45237 | Centrifuge tubes for S150-AT rotor |
Vector: pBAD-DEST49 | ThermoFisher | Gateway expression vector for E. coli |