Summary

Escherichia coli-basert Cell-Free proteinsyntese: protokoller for en robust, fleksibel og tilgjengelig plattform-teknologi

Published: February 25, 2019
doi:

Summary

Denne protokollen detaljer trinn, kostnader, og nødvendig å generere E. coliutstyr-basert celle ekstrakter og implementere i vitro protein syntese reaksjoner innen 4 dager eller mindre. For å utnytte denne plattformen bred Søknadsfrist fleksibel natur, diskutere vi reaksjonen forhold som kan tilpasses og optimalisert.

Abstract

Over de siste 50 årene, Cell-Free Protein syntese (CFPS) har dukket opp som en kraftig teknologi for å utnytte av transcriptional og translasjonsforskning antall celler i et reagensrør. Obviating behovet for å opprettholde levedyktigheten til cellen, og eliminere mobilnettet barrieren, er CFPS fundamentet til emerging programmer i biomanufacturing av tradisjonelt utfordrende proteiner, samt programmer i rapid prototyping for Metabolsk engineering og funksjonell genomforskning. Våre metoder for å implementere en E. coli-basert CFPS plattform at nye brukere tilgang til mange av disse programmene. Her beskriver vi metoder for å forberede pakke ved bruk av beriket medier, forbløffe flasker og en reproduserbar metode for tunable sonication-baserte celle lysis. Dette ekstrakt kan deretter brukes til protein uttrykk kan produsere 900 µg/mL eller flere super mappen grønne fluorescerende protein (sfGFP) i bare 5 timer fra experimental oppsettet til dataanalyse, gitt at riktig reagens aksjer er utarbeidet på forhånd. Anslått oppstart prisen for innhenting reagenser er $4500 som vil opprettholde tusenvis av reaksjoner til en estimert kostnad på $0.021 per µg protein produsert eller $0.019 per µL av reaksjonen. I tillegg speilet metodene protein uttrykk enkel reaksjon oppsettet i kommersielt tilgjengelige systemer på grunn av optimalisering av reagens pre mikser, til en brøkdel av prisen. For å aktivere brukeren å utnytte CFPS plattformen bred Søknadsfrist fleksibel natur, har vi identifisert en rekke aspekter av plattformen som kan innstilt og optimalisert avhengig av tilgjengelige ressurser og protein uttrykk utfall ønsket.

Introduction

Cellen gratis Protein syntese (CFPS) har dukket opp som en teknologi som har låst opp en rekke nye muligheter for protein produksjon, funksjonell genomforskning, metabolske engineering og mer i de siste 50 år1,2. Sammenlignet med standard i vivo protein uttrykk plattformer, CFPS gir tre viktige fordeler: 1) cellen-fri natur plattformen gjør produksjonen av proteiner som ville være potensielt giftig eller utenlandske til celle3,4 ,5,6; 2) inaktivering av genomisk DNA og innføring av en mal DNA koding gene(s) rundt kanalen alle systemisk energien i reaksjonen til produksjon av protein(s) steder. og 3) den åpne naturen plattformen gjør det mulig å endre og overvåke reaksjonen forhold og komposisjon i sanntid7,8. Denne direkte tilgang til reaksjonen støtter augmentation av biologiske systemer med utvidet kjemikalier og redoks forholdene for produksjon av romanen proteiner og tuning av metabolske prosesser2,9, 10. direkte tilgang gir også brukeren å kombinere CFPS reaksjon med aktivitet analyser i et enkelt-potten system for rask utformingen-bygge-test sykluser11. Kapasitet til å utføre CFPS reaksjonen i små dråper eller på papir-baserte enheter videre støtter høy gjennomstrømming oppdagelsen innsats og rask prototyping12,13,14,15 ,16. Disse fordelene og plug and play natur systemet, CFPS har unikt aktivert en rekke bioteknologi programmer som produksjonen av proteiner som er vanskelige å solubly express i vivo17, 18,19,20, påvisning av sykdom21,22,23, på etterspørsel biomanufacturing18,24 ,25,26,27, og utdanning28,29, som viser fleksibilitet og nytten av celle-fri plattformen.

CFPS systemer kan genereres fra en rekke råolje lysates fra både prokaryotic og eukaryotic linjer. Dette gir forskjellige alternativer i systemet av valg, hver har fordeler og ulemper avhengig av anvendelsen av interesse. CFPS systemer også variere i Forberedelsestid, kostnader og produktivitet. De benyttes vanligvis celle ekstrakter produseres fra hvetespirer, kanin retikulocytt, insekt celler og Escherichia coli celler, sistnevnte er den mest kostnadseffektive hittil mens de høyeste volumetriske gir protein30 . Mens andre CFPS systemer kan være fordelaktig for medfødte post-translasjonell modifikasjon maskiner, nye programmer ved hjelp av E. coli-baserte maskiner kan bygge bro ved å generere site-specifically fosforylert og Glycosylated proteiner på etterspørsel,31,,32,,33,,34,,35.

CFPS reaksjoner kan kjøres i enten bakst, kontinuerlig-utveksling celle-free (CECF) eller kontinuerlig flyt celle-fritt (CFCF) format. Batch-format er et lukket system som reaksjon levetid er begrenset på grunn av avtagende mengder reaktantene og akkumulering av hemmende biprodukter av reaksjonen. CECF og CFCF øke levetiden til reaksjonen og føre dermed til økt volumetriske protein gir sammenlignet med satsvise reaksjonen. Dette gjøres ved at biprodukter av proteinsyntese fjernes fra reaksjonen fartøyet mens nye reaktantene leveres i løpet av reaksjon2. Når det gjelder CFCF, kan protein rundt også fjernes fra reaksjon kammer, i CECF, protein av interesse i reaksjon kammeret består av et halvt gjennomtrengelig membran36,37. Disse metodene er spesielt nyttig i å overvinne dårlig volumetriske gir vanskelig-å-uttrykker proteiner av interesse38,39,40,41,42, 43. Utfordringene med å implementere CECF og CFCF tilnærminger er at 1) mens de resultere i mer effektiv bruk av bio maskiner ansvarlig for transkripsjon og oversettelse, de krever spesielt større mengder reagenser som øker totalkostnad og 2) de krever mer komplekse reaksjon oppsett og spesialisert utstyr forhold til satsvise format44. For å sikre tilgjengelighet for nye brukere, beskrevet protokollene heri fokus på batch-format på reaksjon mengder 15 µL med konkrete anbefalinger for å øke volumet reaksjon til milliliter skala.

Metodene presenteres her at ikke-eksperter med grunnleggende laboratorium ferdigheter (for eksempel studentene) kan implementere cellevekst, ekstra forberedelse og satsvis format reaksjon installasjon for en E. coli-basert CFPS system. Denne tilnærmingen er kostnadseffektiv sammenlignet kommersielt tilgjengelig kits uten å ofre enkel kit-baserte reaksjon oppsett. Videre lar denne tilnærmingen programmer i laboratoriet, og i feltet. Når beslutter å implementere CFPS, bør nye brukere grundig vurdere effekten av konvensjonelle protein uttrykk for oppstart investeringer, som CFPS ikke kan bli bedre i alle tilfeller. CFPS metodene beskrevet her at brukeren direkte implementere en rekke programmer, inkludert funksjonell genomforskning, høy gjennomstrømming testing, produksjonen av proteiner som er vanskelige for i vivo uttrykk, i tillegg til feltet programmer inkludert biosensors og pedagogisk kits for syntetisk biologi. Tilleggsprogrammer som metabolske engineering, tuning av protein uttrykk forhold, sykdom gjenkjenning og skalere opp bruke CECF eller CFCF er fortsatt mulig, men kan kreve erfaring med CFPS plattform for videre modifikasjon av reaksjon forhold. Våre metoder kombinere vekst i beriket media og forvirret flasker, med relativt rask og reproduserbar metoder for cellen lysis gjennom sonication, etterfulgt av en forenklet CFPS reaksjon oppsett som utnytter optimalisert premixes45. Mens metodene mobilnettet vekst har blitt noe standardisert innen dette feltet, varierer metoder for cellen lysis mye. I tillegg til sonication omfatter felles lysis metoder bruk av en fransk trykk, en homogenizer, perle beaters, eller lysozyme og andre biokjemiske og fysiske avbrudd metoder46,47,48, 49. bruke våre metoder, ca 2 mL olje celle pakke hentes per 1 L celler. Dette antallet av cellen ekstrakt kan støtte fire hundre 15 µL CFPS reaksjoner, hver produserende ~ 900 µg/mL reporter sfGFP protein fra malen plasmider pJL1-sfGFP. Denne metoden koster $0.021/µg av sfGFP produsert ($.019/µL av reaksjonen), unntatt arbeidskraft og utstyret (supplerende figur 1). Denne metoden starter fra scratch, kan implementeres i 4 dager ved en enkelt person, og gjenta CFPS reaksjoner kan fullføres innen timer (figur 1). I tillegg kan protokollen skaleres i volumet for større batcher av forberedelse av reagenser etter brukerens behov. Viktigere, kan protokollen presenteres her implementeres av laboratoriet trent ikke-eksperter som studenter, som det bare krever grunnleggende laboratorium ferdigheter. Fremgangsmåtene nedenfor og på videoen har blitt spesielt utviklet for å forbedre tilgjengeligheten av E. coli CFPS plattform for bred bruk.

Protocol

1. Media forberedelse og cellevekst Dag 1 Strek E. coli BL21*(DE3) celler fra en glyserol lager på en LB agar plate og ruge minst 18 h på 37 ° C. Forbered 50 mL av LB media og autoklav løsningen på en flytende syklus i 30 min på 121 ° C. Lagre ved romtemperatur. Dag 2 Forberede 750 mL av 2 x YTP media og 250 mL 0,4 M D-glukose løsning som beskrevet i tilleggsinformasjon. Hell 2 x YTP media i en …

Representative Results

Vi har presentert en sonication-baserte E. coli ekstrakt forberedelse protokoll som kan gjennomføres over en firedagers, med figur 1 demonstrere fremgangsmåter for nedbryting over hver dag. Det er malleability til fremgangsmåten som kan gjennomføres på hver dag med ulike pause poeng, men vi har funnet denne arbeidsflyten til å være den mest effektive kjøre. I tillegg både celle pellets (trinn 1.3.18) og fullt forberedt ekstrakt (trinn 2.10) …

Discussion

Cellen gratis proteinsyntese har dukket opp som en kraftig og aktivere teknologi for en rekke applikasjoner, fra biomanufacturing til rask prototyping biokjemiske systemer. Bredden av programmer støttes av evnen til å overvåke, manipulere og øke cellulære maskiner i sanntid. Til tross for den voksende effekten av denne plattform-teknologi, bred tilpasning har vært langsom på grunn av tekniske nyansene i gjennomføringen av metodene. Gjennom dette arbeidet, som mål å tilby enkelhet og klarhet for å etablere denn…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfattere ønsker å erkjenne Dr. Jennifer VanderKelen, Andrea Laubscher, og Tony Turretto kundestøtte, Wesley Kao, Layne Williams og Christopher Hight for nyttig diskusjoner. Forfatterne også erkjenner finansiering støtte fra Bill og Linda Frost fondet, senter for programmer i Bioteknologis Chevron bioteknologi brukt legat forskningsstipend, Cal Poly forskning, Scholarly og kreative aktiviteter Grant Program (RSCA 2017), og National Science Foundation (NSF-1708919). MZL erkjenner California State University Graduate stipendet. MCJ erkjenner den Army Research Office W911NF-16-1-0372, gir National Science Foundation kalt MCB-1413563, kalt MCB-1716766 og den Luftforsvaret forskning laboratorium Center for Excellence Grant FA8650-15-2-5518, forsvar trussel reduksjon Agency stipendet HDTRA1-15-10052/P00001, David and Lucile Packard Foundation, Camille Dreyfus lærer-forsker programmet, Institutt for energi BER Grant DE-SC0018249, programmet for menneskelig grenser Science (RGP0015/2017), DOE Joint Genome Institute ETOP Grant, og Chicago biomedisinsk konsortiet med støtte fra Searle midlene i Chicago samfunnet Trust for støtte.

Materials

Luria Broth ThermoFisher 12795027
Tryptone Fisher Bioreagents 73049-73-7
Yeast Extract Fisher Bioreagents 1/2/8013
NaCl Sigma-Aldrich S3014-1KG
Potassium Phosphate Dibasic Sigma-Aldrich 60353-250G
Potassium Phosphate Monobasic Sigma-Aldrich P9791-500G
D-Glucose Sigma-Aldrich G8270-1KG
KOH Sigma-Aldrich P5958-500G
IPTG Sigma-Aldrich I6758-1G
Mg(OAc)2 Sigma-Aldrich M5661-250G
K(OAc) Sigma-Aldrich P1190-1KG
Tris(OAc) Sigma-Aldrich T6066-500G
DTT ThermoFisher 15508013
tRNA Sigma-Aldrich 10109541001
Folinic Acid Sigma-Aldrich F7878-100MG
NTPs ThermoFisher R0481
Oxalic Acid Sigma-Aldrich P0963-100G
NAD Sigma-Aldrich N8535-15VL
CoA Sigma-Aldrich C3144-25MG
PEP Sigma-Aldrich 860077-250MG
K(Glu) Sigma-Aldrich G1501-500G
NH4(Glu) MP Biomedicals 02180595.1
Mg(Glu)2 Sigma-Aldrich 49605-250G
Spermidine Sigma-Aldrich S0266-5G
Putrescine Sigma-Aldrich D13208-25G
HEPES ThermoFisher 11344041
Molecular Grade Water Sigma-Aldrich 7732-18-5
L-Aspartic Acid Sigma-Aldrich A7219-100G
L-Valine Sigma-Aldrich V0500-25G
L-Tryptophan Sigma-Aldrich T0254-25G
L-Phenylalanine Sigma-Aldrich P2126-100G
L-Isoleucine Sigma-Aldrich I2752-25G
L-Leucine Sigma-Aldrich L8000-25G
L-Cysteine Sigma-Aldrich C7352-25G
L-Methionine Sigma-Aldrich M9625-25G
L-Alanine Sigma-Aldrich A7627-100G
L-Arginine Sigma-Aldrich A8094-25G
L-Asparagine Sigma-Aldrich A0884-25G
Glycine Sigma-Aldrich G7126-100G
L-Glutamine Sigma-Aldrich G3126-250G
L-Histadine Sigma-Aldrich H8000-25G
L-Lysine Sigma-Aldrich L5501-25G
L-Proline Sigma-Aldrich P0380-100G
L-Serine Sigma-Aldrich S4500-100G
L-Threonine Sigma-Aldrich T8625-25G
L-Tyrosine Sigma-Aldrich T3754-100G
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 2.0 mL Fisher Scientific 05-408-138
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5 mL Fisher Scientific 05-408-129
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 0.6 mL Fisher Scientific 05-408-120
PureLink HiPure Plasmid Prep Kit ThermoFisher K210007
Ultrasonic Processor QSonica Q125-230V/50Hz 3.175 mm diameter probe
Avanti J-E Centrifuge Beckman Coulter 369001
JLA-8.1000 Rotor Beckman Coulter 366754
1L Centrifuge Tube Beckman Coulter A99028
Tunair 2.5L Baffeled Shake Flask Sigma-Aldrich Z710822
Microfuge 20 Beckman Coulter B30134
New Brunswick Innova 42/42R Incubator Eppendorf M1335-0000
Cytation 5 BioTek
Strep-Tactin XT Starter Kit IBA 2-4998-000
pJL1-sfGFP Addgene 69496
BL21(DE3) New England BioLabs

Referenzen

  1. Jiang, L., Zhao, J., Lian, J., Xu, Z. Cell-free protein synthesis enabled rapid prototyping for metabolic engineering and synthetic biology. Synthetic and Systems Biotechnology. 3 (2), 90-96 (2018).
  2. Carlson, E. D., Gan, R., Hodgman, C. E., Jewett, M. C. Cell-free protein synthesis: Applications come of age. Biotechnology Advances. 30 (5), 1185-1194 (2012).
  3. Watanabe, M. Cell-Free Protein Synthesis for Structure Determination by X-ray Crystallography. Methods in molecular biology (Clifton, N.J). 607, 149-160 (2010).
  4. Martemyanov, K. A., Shirokov, V. A., Kurnasov, O. V., Gudkov, A. T., Spirin, A. S. Cell-Free Production of Biologically Active Polypeptides: Application to the Synthesis of Antibacterial Peptide Cecropin. Protein Expression and Purification. 21 (3), 456-461 (2001).
  5. Renesto, P., Raoult, D. From genes to proteins: in vitro expression of rickettsial proteins. Annals of the New York Academy of Sciences. 990, 642-652 (2003).
  6. Xu, Z., Chen, H., Yin, X., Xu, N., Cen, P. High-Level Expression of Soluble Human b-Defensin-2 Fused With Green Fluorescent Protein in Escherichia coli Cell-Free System. Applied Biochemistry and Biotechnology. 127 (1), 053-062 (2005).
  7. Baumann, A. In-situ observation of membrane protein folding during cell-free expression. PLoS ONE. 11 (3), 1-15 (2016).
  8. Wang, Y., Percival, Y. H. P. Cell-free protein synthesis energized by slowly-metabolized maltodextrin. BMC Biotechnology. 9, 1-8 (2009).
  9. Whittaker, J. W. Cell-free protein synthesis: the state of the art. Biotechnology Letters. 35 (2), 143-152 (2013).
  10. Martin, R. W. Cell-free protein synthesis from genomically recoded bacteria enables multisite incorporation of noncanonical amino acids. Nature Communications. 9 (1), 1203 (2018).
  11. Kwon, Y. C., Song, J. K., Kim, D. M. Cloning-Independent Expression and Screening of Enzymes Using Cell-Free Protein Synthesis Systems. Methods in Molecular Biology. 1118, 97-108 (2014).
  12. Chappell, J., Jensen, K., Freemont, P. S. Validation of an entirely in vitro approach for rapid prototyping of DNA regulatory elements for synthetic biology. Nucleic Acids Research. 41 (5), 3471-3481 (2013).
  13. Takahashi, M. K. Characterizing and prototyping genetic networks with cell-free transcription-translation reactions. Methods. 86, 60-72 (2015).
  14. Karim, A. S., Jewett, M. C. A cell-free framework for rapid biosynthetic pathway prototyping and enzyme discovery. Metabolic Engineering. 36, 116-126 (2016).
  15. Dudley, Q. M., Anderson, K. C., Jewett, M. C. Cell-Free Mixing of Escherichia coli Crude Extracts to Prototype and Rationally Engineer High-Titer Mevalonate Synthesis. ACS Synthetic Biology. 5 (12), 1578-1588 (2016).
  16. Pardee, K. Paper-based synthetic gene networks. Cell. 159 (4), 940-954 (2014).
  17. Zawada, J. F. Microscale to manufacturing scale-up of cell-free cytokine production-a new approach for shortening protein production development timelines. Biotechnology and Bioengineering. 108 (7), 1570-1578 (2011).
  18. Sullivan, C. J. A cell-free expression and purification process for rapid production of protein biologics. Biotechnology Journal. 11 (2), 238-248 (2016).
  19. Li, J. Cell-free protein synthesis enables high yielding synthesis of an active multicopper oxidase. Biotechnology Journal. 11 (2), 212-218 (2016).
  20. Heinzelman, P., Schoborg, J. A., Jewett, M. C. pH responsive granulocyte colony-stimulating factor variants with implications for treating Alzheimer’s disease and other central nervous system disorders. Protein Engineering Design and Selection. 28 (10), 481-489 (2015).
  21. Pardee, K. Low-Cost Detection of Zika Virus Using Programmable Biomolecular Components. Cell. 165 (5), 1255-1266 (2016).
  22. Slomovic, S., Pardee, K., Collins, J. J. Synthetic biology devices for in vitro and in vivo diagnostics. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (47), 14429-14435 (2015).
  23. Gootenberg, J. S. Nucleic acid detection with CRISPR-Cas13a/C2c2. Science. 356 (6336), 438-442 (2017).
  24. Pardee, K. Portable, On-Demand Biomolecular Manufacturing. Cell. 167 (1), 248-259 (2016).
  25. Karig, D. K., Bessling, S., Thielen, P., Zhang, S., Wolfe, J. Preservation of protein expression systems at elevated temperatures for portable therapeutic production. Journal of the Royal Society, Interface. 14 (129), (2017).
  26. Smith, M. T., Berkheimer, S. D., Werner, C. J., Bundy, B. C. Lyophilized Escherichia coli-based cell-free systems for robust, high-density, long-term storage. BioTechniques. 56 (4), 186-193 (2014).
  27. Hunt, J. P., Yang, S. O., Wilding, K. M., Bundy, B. C. The growing impact of lyophilized cell-free protein expression systems. Bioengineered. 8 (4), 325-330 (2017).
  28. Stark, J. C. BioBitsTM Bright: A fluorescent synthetic biology education kit. Science Advances. 4 (8), (2018).
  29. Huang, A. BioBitsTM Explorer: A modular synthetic biology education kit. Science Advances. 4 (8), (2018).
  30. Zemella, A., Thoring, L., Hoffmeister, C., Kubick, S. Cell-Free Protein Synthesis: Pros and Cons of Prokaryotic and Eukaryotic Systems. ChemBioChem. 16 (17), 2420-2431 (2015).
  31. Oza, J. P. Robust production of recombinant phosphoproteins using cell-free protein synthesis. Nature Communications. 6 (1), 8168 (2015).
  32. Zemella, A. Cell-free protein synthesis as a novel tool for directed glycoengineering of active erythropoietin. Scientific Reports. 8 (1), 8514 (2018).
  33. Jaroentomeechai, T. Single-pot glycoprotein biosynthesis using a cell-free transcription-translation system enriched with glycosylation machinery. Nature Communications. 9 (1), 2686 (2018).
  34. Kightlinger, W. Design of glycosylation sites by rapid synthesis and analysis of glycosyltransferases. Nature Chemical Biology. 14 (6), 627-635 (2018).
  35. Schoborg, J. A. A cell-free platform for rapid synthesis and testing of active oligosaccharyltransferases. Biotechnology and Bioengineering. 115 (3), 739-750 (2018).
  36. Chekulayeva, M. N., Kurnasov, O. V., Shirokov, V. A., Spirin, A. S. Continuous-Exchange Cell-Free Protein-Synthesizing System: Synthesis of HIV-1 Antigen Nef. Biochemical and Biophysical Research Communications. 280 (3), 914-917 (2001).
  37. Hong, S. H. Improving Cell-Free Protein Synthesis through Genome Engineering of Escherichia coli Lacking Release Factor 1. ChemBioChem. 16 (5), 844-853 (2015).
  38. Endo, Y., Otsuzuki, S., Ito, K., Miura, K. Production of an enzymatic active protein using a continuous flow cell-free translation system. Journal of Biotechnology. 25 (3), 221-230 (1992).
  39. Volyanik, E. V., Dalley, A., Mckay, I. A., Leigh, I., Williams, N. S., Bustin, S. A. Synthesis of Preparative Amounts of Biologically Active Interleukin-6 Using a Continuous-Flow Cell-Free Translation System. Analytical Biochemistry. 214 (1), 289-294 (1993).
  40. Martin, G. A., Kawaguchi, R., Lam, Y., DeGiovanni, A., Fukushima, M., Mutter, W. High-yield, in vitro protein expression using a continuous-exchange, coupled transcription/ translation system. BioTechniques. 31 (4), 948-950 (2001).
  41. Stech, M., Quast, R. B., Sachse, R., Schulze, C., Wüstenhagen, D. A., Kubick, S. A Continuous-Exchange Cell-Free Protein Synthesis System Based on Extracts from Cultured Insect Cells. PLoS ONE. 9 (5), e96635 (2014).
  42. Quast, R. B., Sonnabend, A., Stech, M., Wüstenhagen, D. A., Kubick, S. High-yield cell-free synthesis of human EGFR by IRES-mediated protein translation in a continuous exchange cell-free reaction format. Scientific Reports. 6 (1), 30399 (2016).
  43. Thoring, L., Dondapati, S. K., Stech, M., Wüstenhagen, D. A., Kubick, S. High-yield production of "difficult-to-express" proteins in a continuous exchange cell-free system based on CHO cell lysates. Scientific Reports. 7 (1), 11710 (2017).
  44. Hoffmann, M., Nemetz, C., Madin, K., Buchberger, B. Rapid translation system: A novel cell-free way from gene to protein. Biotechnology annual review. 10, 1-30 (2004).
  45. Kwon, Y. C., Jewett, M. C. High-throughput preparation methods of crude extract for robust cell-free protein synthesis. Scientific Reports. 5 (1), 8663 (2015).
  46. Katsura, K. A reproducible and scalable procedure for preparing bacterial extracts for cell-free protein synthesis. Journal of Biochemistry. 162 (June), 357-369 (2017).
  47. Fujiwara, K., Doi, N. Biochemical preparation of cell extract for cell-free protein synthesis without physical disruption. PLoS ONE. 11 (4), 1-15 (2016).
  48. Shrestha, P., Holland, T. M., Bundy, B. C. Streamlined extract preparation for Escherichia coli-based cell-free protein synthesis by sonication or bead vortex mixing. BioTechniques. 53 (3), 163-174 (2012).
  49. Krinsky, N. A Simple and Rapid Method for Preparing a Cell-Free Bacterial Lysate for Protein Synthesis. PLoS ONE. 11 (10), (2016).
  50. Jewett, M. C., Swartz, J. R. Mimicking the Escherichia coli cytoplasmic environment activates long-lived and efficient cell-free protein synthesis. Biotechnology and Bioengineering. 86 (1), 19-26 (2004).
  51. Swartz, J. R., Jewett, M. C., Woodrow, K. A. Cell-Free Protein Synthesis With Prokaryotic Combined Transcription-Translation. Recombinant Gene Expression. (267), 169-182 (2004).
  52. Voloshin, A. M., Swartz, J. R. Efficient and scalable method for scaling up cell free protein synthesis in batch mode. Biotechnology and Bioengineering. 91 (4), 516-521 (2005).
  53. Vernon, W. B. The role of magnesium in nucleic-acid and protein metabolism. Magnesium. 7 (5-6), 234-248 (1988).
  54. Pratt, J. M. . Transcription and Translation: A Practical Approach. , (1984).
  55. Kim, D. M., Kigawa, T., Choi, C. Y., Yokoyama, S. A Highly Efficient Cell-Free Protein Synthesis System from Escherichia coli. European Journal of Biochemistry. 239 (3), 881-886 (1996).
  56. Shin, J., Noireaux, V. Efficient cell-free expression with the endogenous E. Coli RNA polymerase and sigma factor 70. Journal of Biological Engineering. 4 (1), 8 (2010).
  57. Zubay, G. In Vitro Synthesis of Protein in Microbial Systems. Annual Review of Genetics. 7 (1), 267-287 (1973).
  58. Kigawa, T. Preparation of Escherichia coli cell extract for highly productive cell-free protein expression. Journal of Structural and Functional Genomics. 5 (1/2), 63-68 (2004).
  59. Liu, D. V., Zawada, J. F., Swartz, J. R. Streamlining Escherichia Coli S30 Extract Preparation for Economical Cell-Free Protein Synthesis. Biotechnology Progress. 21 (2), 460-465 (2008).
  60. Yang, W. C., Patel, K. G., Wong, H. E., Swartz, J. R. Simplifying and streamlining Escherichia coli-based cell-free protein synthesis. Biotechnology Progress. 28 (2), 413-420 (2012).
  61. Foshag, D. The E. coli S30 lysate proteome: A prototype for cell-free protein production. New Biotechnology. 40 (Pt B), 245-260 (2018).
  62. Caschera, F. Bacterial cell-free expression technology to in vitro systems engineering and optimization. Synthetic and Systems Biotechnology. 2 (2), 97-104 (2017).
  63. Chizzolini, F., Forlin, M., Yeh Martín, N., Berloffa, G., Cecchi, D., Mansy, S. S. Cell-Free Translation Is More Variable than Transcription. ACS Synthetic Biology. 6 (4), 638-647 (2017).
  64. Hong, S. H., Kwon, Y. C., Jewett, M. C. Non-standard amino acid incorporation into proteins using Escherichia coli cell-free protein synthesis. Frontiers in Chemistry. 2, 34 (2014).
  65. Sawasaki, T., Ogasawara, T., Morishita, R., Endo, Y. A cell-free protein synthesis system for high-throughput proteomics. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (23), 14652-14657 (2002).
  66. Dudley, Q. M., Karim, A. S., Jewett, M. C. Cell-free metabolic engineering: Biomanufacturing beyond the cell. Biotechnology Journal. 10 (1), 69-82 (2015).
  67. Garcia, D. C. Elucidating the potential of crude cell extracts for producing pyruvate from glucose. Synthetic Biology. 3 (1), 1-9 (2018).
  68. Hurst, G. B. Proteomics-Based Tools for Evaluation of Cell-Free Protein Synthesis. Analytical Chemistry. 89 (21), 11443-11451 (2017).
check_url/de/58882?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Levine, M. Z., Gregorio, N. E., Jewett, M. C., Watts, K. R., Oza, J. P. Escherichia coli-Based Cell-Free Protein Synthesis: Protocols for a robust, flexible, and accessible platform technology. J. Vis. Exp. (144), e58882, doi:10.3791/58882 (2019).

View Video