Qui, presentiamo un protocollo per registrare il cervello e cuore bio segnali nei topi utilizzando il video simultanei, l’elettroencefalografia (EEG) ed elettrocardiografia (ECG). Descriviamo anche metodi per analizzare le registrazioni di EEG-ECG risultante per i grippaggi, potenza spettrale EEG, funzione cardiaca e variabilità della frequenza cardiaca.
Nell’epilessia, convulsioni possono evocare disturbi del ritmo cardiaco come cambiamenti di frequenza cardiaca, blocchi di conduzione, Asistolie e aritmie, che possono potenzialmente aumentare il rischio della morte inattesa improvvisa nell’epilessia (SUDEP). L’elettroencefalografia (EEG) ed elettrocardiogramma (ECG) sono ampiamente usati strumenti diagnostici clinici per il monitoraggio cerebrale anormale e ritmi cardiaci nei pazienti. Qui, una tecnica per registrare simultaneamente video, ECG e EEG nei topi per comportamento di misurazione, cervello e attività cardiaca, rispettivamente, è descritta. La tecnica descritta nel presente documento utilizza un tethered (cioè, cablato) configurazione di registrazione in cui l’elettrodo impiantato sulla testa del mouse è hard-wired all’apparecchio di controllo. Rispetto ai sistemi di registrazione di telemetria wireless, la disposizione tethered possiede diversi vantaggi tecnici come ad esempio un maggior numero possibile di canali per la registrazione EEG o altri biopotentials; minori costi di elettrodo; e una maggiore frequenza di banda (cioè, frequenza di campionamento) delle registrazioni. Le basi di questa tecnica possono anche essere facilmente modificate per ospitare la registrazione altri BCI, ad esempio l’elettromiografia (EMG) o pletismografia per la valutazione del muscolo e l’attività respiratoria, rispettivamente. Oltre a descrivere come eseguire le registrazioni di EEG-ECG, dettagliamo anche metodi per quantificare i dati risultanti per i grippaggi, potenza spettrale EEG, funzione cardiaca e variabilità della frequenza cardiaca, che dimostriamo in un esperimento di esempio utilizzando un mouse con epilessia a causa di omissione del gene Kcna1 . Video-EEG-ECG monitoraggio in modelli murini di epilessia o altre malattie neurologiche fornisce un potente strumento per identificare la disfunzione a livello del cervello, cuore o interazioni cervello-cuore.
L’elettroencefalografia (EEG) ed elettrocardiogramma (ECG) sono tecniche potenti e ampiamente utilizzati per la valutazione in vivo del cervello e funzione cardiaca, rispettivamente. EEG è la registrazione dell’attività elettrica cerebrale collegando gli elettrodi al cuoio capelluto1. Il segnale registrato con EEG non invasiva rappresenta le fluttuazioni di tensione derivanti da potenziali postsinaptici eccitatori ed inibitori compiuti generati principalmente da neuroni piramidali corticali1,2. EEG è la prova più comune neurodiagnostic per valutazione e gestione dei pazienti con epilessia3,4. È particolarmente utile quando i grippaggi epilettici si verificano senza evidenti manifestazioni comportamentali convulsive, quali i grippaggi di assenza o stato non-convulsivo epilettico5,6. Al contrario, l’epilessia non correlate a condizioni che portano a episodi convulsivi o perdita di coscienza possono essere mal diagnosticate come crisi epilettiche senza monitoraggio video-EEG7. Oltre alla sua utilità nel campo dell’epilessia, EEG è anche ampiamente usato per rilevare l’attività anormale del cervello associate a disturbi del sonno, encefalopatie e disturbi della memoria, come pure per integrare l’anestesia generale durante interventi chirurgici2 , 8 , 9.
A differenza di EEG, ECG (o EKG come esso è a volte abbreviato) è la registrazione dell’attività elettrica del cuore10. Gli ECG sono di solito eseguiti collegando gli elettrodi alle estremità degli arti e della parete toracica, che consente di rilevare i cambiamenti di tensione generati dal miocardio durante ogni ciclo cardiaco di contrazione e rilassamento10,11. I componenti principali di forma d’onda ECG di un normale ciclo cardiaco includono l’onda P, complesso QRS e l’onda T, che corrisponde alla depolarizzazione atriale, ventricolare depolarizzazione e ripolarizzazione ventricolare, rispettivamente10, 11. monitoraggio ECG è usata ordinariamente per identificare le aritmia cardiache e difetti del sistema cardiaco di conduzione12. Fra i pazienti di epilessia, l’importanza dell’utilizzo di ECG per identificare potenzialmente life-threatening aritmia è amplificato dal momento che sono al rischio significativamente aumentato di arresto cardiaco improvviso, come pure la morte inattesa improvvisa nell’epilessia13, 14,15.
Oltre alle loro applicazioni cliniche, registrazioni ECG e di EEG sono diventati uno strumento indispensabile per l’identificazione di disfunzione del cervello e cuore in modelli murini di malattia. Anche se tradizionalmente queste registrazioni sono state eseguite separatamente, qui descriviamo una tecnica per ECG, EEG e registrare video contemporaneamente in topi. Il metodo simultaneo di video-EEG-ECG dettagliato qui utilizza una configurazione di registrazione legato in cui l’elettrodo impiantato sulla testa del mouse è hard-wired all’apparecchio di controllo. Storicamente, questo legato, o cablato, configurazione è stato lo standard e più estesamente usato metodo per le registrazioni di EEG nei topi; Tuttavia, sistemi di telemetria wireless EEG sono stati sviluppati recentemente e stanno guadagnando nella popolarità16.
Rispetto ai sistemi wireless di EEG, la disposizione tethered possiede diversi vantaggi tecnici che possono rendere preferibile a seconda dell’applicazione desiderata. Tali vantaggi includono un numero maggiore di canali per la registrazione EEG o altri biopotentials; minori costi di elettrodo; disponibilità di elettrodo; meno suscettibilità per segnalare la perdita; e una maggiore larghezza di banda di frequenza (cioè., frequenza di campionamento) di registrazioni17. Fatto correttamente, il metodo di registrazione legato qui descritto è in grado di fornire alta qualità, priva di artefatti, ECG e di EEG dati contemporaneamente, insieme al video corrispondente per il monitoraggio del comportamento. Questi dati ECG e di EEG quindi possono essere estratta per identificare neurali, cardiache, o neurocardiac le anomalie quali i grippaggi, cambiamenti nel EEG di potenza dello spettro, blocchi di conduzione cardiaca (cioè., saltato battiti cardiaci) e cambiamenti nella variabilità di frequenza cardiaca. Per illustrare l’applicazione di questi metodi quantitativi di EEG-ECG, presentiamo un esperimento di esempio utilizzando un knockout Kcna1 (- / -) del mouse. Kcna1 topi – / – mancano tensione-gated KV 1.1 subunità α e di conseguenza presentano crisi epilettiche spontanee, disfunzione cardiaca e morte prematura, che li rende un modello ideale per la valutazione simultanea di EEG-ECG di deleteri associata a epilessia disfunzione neurocardiac.
Per ottenere registrazioni di EEG-ECG di alta qualità che sia esente da artefatti, dovrebbero essere prese tutte le precauzioni per prevenire la degradazione o allentamento dell’elettrodo impiantato e fili. Come un impianto per testa del EEG si allenta, dei contatti dei fili con il cervello si degrada leader per le ampiezze in diminuzione del segnale. Gli impianti allentati o povero filo contatti possono anche causare distorsione dei segnali elettrici, introducendo artefatti di movimento e rumore di fondo per le registr…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato supportato da cittadini Uniti per la ricerca nell’epilessia (concessione numero 35489); il National Institutes of Health (concedere numeri R01NS100954, R01NS099188); e una borsa di studio post-dottorato di Louisiana State University Health Sciences Center Malcolm Feist.
VistaVision stereozoom dissecting microscope | VWR | ||
Dolan-Jenner MI-150 microscopy illuminator, with ring light | VWR | MI-150RL | |
CS Series scale | Ohaus | CS200 | for weighing animal |
T/Pump professional | Stryker | recirculating water heat pad system | |
Ideal Micro Drill | Roboz Surgical Instruments | RS-6300 | |
Ideal Micro Drill Burr Set | Cell Point Scientific | 60-1000 | only need the 0.8-mm size |
electric trimmer | Wahl | 9962 | mini clipper |
tabletop vise | Eclipse Tools | PD-372 | PD-372 Mini-tabletop suction vise |
fine scissors | Fine Science Tools | 14058-11 | ToughCut, Straight, Sharp/Sharp, 11.5 cm |
Crile-Wood needle holder | Fine Science Tools | 12003-15 | Straight, Serrated, 15 cm, with lock – For applying wound clips |
Dumont #7 forceps | Fine Science Tools | 11297-00 | Standard Tips, Curved, Dumostar, 11.5 cm |
Adson forceps | Fine Science Tools | 11006-12 | Serrated, Straight, 12 cm |
Olsen-Hegar needle holder with suture cutter | Fine Science Tools | 12002-12 | Straight, Serrated, 12 cm, with lock |
scalpel handle #3 | Fine Science Tools | 10003-12 | |
surgical blades #15 | Havel's | FHS15 | |
6-0 surgical suture | Unify | S-N618R13 | non-absorbable, monofilament, black |
gauze sponges | Coviden | 2346 | 12 ply, 7.6 cm x 7.6 cm |
cotton-tipped swabs | Constix | SC-9 | 15.2-cm total length |
super glue | Loctite | LOC1364076 | gel control |
Michel wound clips, 7.5mm | Kent Scientific | INS700750 | |
polycarboxylate dental cement kit | Prime-dent | 010-036 | Type 1 fine grain |
tuberculin syringe | BD | 309623 | |
polyethylene tubing | Intramedic | 427431 | PE160, 1.143 mm (ID) x 1.575 mm (OD) |
chlorhexidine | Sigma-Aldrich | C9394 | |
ethanol | Sigma-Aldrich | E7023-500ML | |
Puralube vet ointment | Dechra Veterinary Products | opthalamic eye ointment | |
mouse anesthetic cocktail | Ketamine (80 mg/kg), Xylazine (10 mg/kg), and Acepromazine (1 mg/kg) | ||
carprofen | Rimadyl (trade name) | ||
HydroGel | ClearH20 | 70-01-5022 | hydrating gel; 56-g cups |
Ponemah software | Data Sciences International | data acquisition and analysis software; version 5.2 or greater with Electrocardiogram Module | |
7700 Digital Signal conditioner | Data Sciences International | ||
12 Channel Isolated Bio-potential Pod | Data Sciences International | ||
fish tank | Topfin | for use as recording chamber; 20.8 gallon aquarium; 40.8 cm (L) X 21.3 cm (W) X 25.5 cm (H) | |
Digital Communication Module (DCOM) | Data Sciences International | 13-7715-70 | |
12 Channel Isolated Bio-potential Pod | Data Sciences International | 12-7770-BIO12 | |
serial link cable | Data Sciences International | J03557-20 | connects DCOM to bio-potential pod |
Acquisition Interface (ACQ-7700USB) | Data Sciences International | PNM-P3P-7002 | |
network video camera | Axis Communications | P1343, day/night capability | |
8-Port Gigabit Smart Switch | Cisco | SG200-08 | 8-port gigabit ethernet swith with 4 power over ethernet supported ports (Cisco Small Business 200 Series) |
10-pin male nanoconnector with guide post hole | Omnetics | NPS-10-WD-30.0-C-G | electrode for implantation on the mouse head |
10-socket female nanoconnector with guide post | Omnetics | NSS-10-WD-2.0-C-G | connector for electrode implant |
1.5-mm female touchproof connector cables | PlasticsOne | 441 | 1 signal, gold-plated; for connecting the wiring from the head-mount implant to the bio-potential pod |
soldering iron | Weller | WESD51 BUNDLE | digital soldering station |
solder | Bernzomatic | 327797 | lead free, silver bearing, acid flux core solder |
heat shrink tubing | URBEST | collection of tubing with 1.5- to 10-mm internal diameters | |
heat gun | Dewalt | D26960 | |
mounting tape (double-sided) | 3M Scotch | MMM114 | 114/DC Heavy Duty Mounting Tape, 2.54 cm x 1.27 m |
desktop computer | Dell | recommended minimum requirements: 3rd Gen Intel Core i7-3770 processor with HD4000 graphics; 4 GB RAM, 1 GB AMD Radeon HD 7570 video card; 1 TB hard drive; Windows 7 OS | |
permanent marker | Sharpie | 37001 | black color, ultra fine point |
toothpicks | for mixing and applying the polycarboxylate dental cement | ||
LabChart Pro software | ADInstruments | power spectrum software; version 8.1.3 or greater | |
Kubios HRV software | Univ. of Eastern Finland | HRV analysis software; version 2.2 | |
Notepad | Microsoft | simple text editor software |