Микроинъекции Nasonia vitripennis эмбрионов является важным метод для генерации изменения наследственными генома. Описанные здесь является детальная процедура микроинъекции и трансплантации эмбрионов Nasonia vitripennis , что значительно облегчит будущие генома манипуляции в этом организме.
Драгоценность осы Nasonia vitripennis возник как систему эффективной моделью для изучения процессов, включая определение пола, определение пола haplo диплоидные, яд синтеза и хост Симбионт взаимодействий, среди других. Основным ограничением работы с этого организма является отсутствие эффективных протоколов для выполнения изменения направлены генома. Важной частью генома модификации является поставка реагентов, ТРИФОСФАТЫ/Cas9 молекулы, в том числе в эмбрионов путем микроинъекции редактирования. В то время как микроинъекции в многих модельных организмов, этот метод является особенно сложным для выполнения в N. vitripennis главным образом из-за его небольшой эмбриона размер и тот факт, что развитие эмбриона происходит полностью в пределах Воднорастворимый blowfly куколки. Следующая процедура преодолевает эти серьезные проблемы, в то время как демонстрации обтекаемый, визуальные процедуры для эффективного удаления осы эмбрионов от паразитируют хост куколок, microinjecting их, и тщательно трансплантировать их обратно в принимающей для продолжения и завершения разработки. Этот протокол будет сильно укрепить потенциал исследовательских групп выполнять расширенные генома изменения в этом организме.
Драгоценность Оса, н. vitripennis, является одним из четырех видов в пределах рода Nasonia , которые эктопаразитоидов плоти есть мух например аристолохиевая пузырчатая1. Из-за их быстрый поколений периодов, простота воспитания в лаборатории и целый ряд уникальных и важных биологических атрибутов, н. vitripennis был фокус для разработки нескольких экспериментальных инструментов, найденных в традиционной модели организмов . Например некоторые уникальные биологические атрибуты включают в себя haplo диплоидные воспроизводства системы2, отношения с микробов и генетические паразитов3,4и supernumary (B) хромосомы5,6 ,7. Взятые вместе, они делают N. vitripennis важным экспериментальная система для экспериментов, направленных на изучение молекулярных и клеточных аспекты этих процессов, помимо других включая яд производства8, 9, секс определение10,11и эволюция и развитие оси модель формирования12,,1314. Кроме того генетические инструментарий для изучения биологии N. vitripennis резко возросли за последние десять лет или так, с секвенирования генома с высоким разрешением15, несколько экспрессии генов исследований16,17,18и возможность функционально нарушить экспрессии генов, полагаясь на РНК-интерференции (RNAi)19,20, которые вместе улучшили уступчивость и возможности выполнения обратной генетики в этом организме.
Несмотря на множество важных научных достижений и расширенных инструментов в этом организме по состоянию на настоящее время знаний только одна группа успешно выполнил эмбриональных микроинъекций для создания генома наследственные изменения21. Это главным образом из-за трудностей работы с эмбрионами N. vitripennis , как они довольно хрупкие и малых, будучи ~2/3 размер Drosophila melanogaster эмбрионов, делая их обычно трудно манипулировать. Кроме того н. vitripennis самок депонировать свои яйца на предварительно задело blowfly куколок, в рамках которых происходит полностью и эмбриогенеза, личинки, куколки развития. Таким образом для успешного микроинъекций, предварительно бластодермы стадии, эмбрионы должны быть эффективно собраны из принимающих куколок, быстро microinjected и сразу же пересаженные обратно в их хосты для развития. Эти шаги требуют точность и ловкость, чтобы избежать повреждения microinjected эмбрионы, или куколки узлов, что делает технику исключительно сложной. Несмотря на это существует один короткий протокол, опубликовано более десяти лет назад, описывающий N. vitripennis эмбриона микроинъекции22. Однако эта процедура требует сморщившимися свежезаваренным положил эмбрионов, он использует клейкой лентой, чтобы якорь яйца для микроинъекции и не включают в себя визуальные демонстрации техники. Таким образом описанные здесь это обновленный и пересмотренный Протокол, включая визуальные процедуры, подробно улучшения шаг за шагом протокол для микроинъекций эмбриона N. vitripennis , которые могут сопровождаться любой базовой лаборатории для создания наследуемого генома изменения в этой важной моделью насекомых.
Последние секвенирования генома N. vitripennis развязал важную потребность в молекулярных инструменты функционально характеризовать неизвестных генов в рамках этого вида23. ТРИФОСФАТЫ-Cas9 системы и многие другие инструменты гена редактирования, оказались полезными в расследовании функции гена для ряда организмов24. Однако для создания наследственные мутации, эти инструменты требуют выполнения эмбриона микроинъекций. Таким образом, продемонстрировал, Вот подробный визуальный метод, который включает ряд новшеств, которые позволяют эффективно N. vitripennis эмбриона микроинъекций.
В целом, что этот подробный метод предлагает целый ряд важных нововведений, в отношении существующих методов23, позволяют для эффективного N. vitripennis эмбриона микроинъекций. Например чтобы облегчить быстрое коллекции эмбрионов, инструмент откладки яиц (пена пробкой) создается и используется для ограничения откладки яиц полностью к концу задняя узла (рис. 1), что значительно облегчает совокупность многочисленных эмбрионы в течение короткий период времени. Методы воспитания осы колоний с большим числом собрать большее количество яиц также улучшена и определены. Кроме того чтобы ускорить выравнивание эмбриона, разрабатывается эмбриона выравнивание устройство, которое позволяет эмбрионы эффективно согласовать и вводится без необходимости использования двухсторонняя клейкая лента для обеспечения эмбрионов в месте (рис. 3).
Кроме того выяснилось, что, сохраняя эмбрионы влажные с водой во время инъекций и не осушающий эмбрионы или покрывая их с маслом улучшение выживаемости. Кроме того несколько типов капиллярных стекла тестируются и определяются параметры для создания идеальной иглы для N. vitripennis микроинъекции (Таблица 1, рис. 4). Кроме того следующие микроинъекции, выживаемости эмбрионов, что цены могут значительно увеличить благодаря инкубации вводят яйца в предварительно задело хостов размещены в камерах высокой влажности (70%). Эти нововведения позволяют для более рациональной и успешных микроинъекции процедуры для н. vitripennis.
Можно внесены незначительные изменения с точки зрения инъекции аппарат и воспитания процедуры к настоящему Протоколу, в зависимости от предпочтений пользователя. Однако ряд критических шагов будет существенно важное значение для успешного создания мутантов в н. vitripennis. Например, работая быстро, так что эмбрионы вводят > 1 h старого и обеспечить достаточно острым свести к минимуму ущерб для эмбриона инъекционным иглам оба будет необходимым. Хотя этот протокол должен быть эффективным для генерации мутации в генах, многих (если не все), одним из основных ограничений является требование CRIPSR/Cas9 для PAM (НЭС) последовательность, которая будет диктовать последовательности целевого объекта.
В заключение Этот улучшенный метод может использоваться для создания различных модификаций генома, например мутации, удаления и возможно даже вставки с использованием технологии CRIPSR/Cas921, или даже трансген вставок для создания трансгенных Н. vitripennis, который следует значительно ускорить функциональные исследования в этом организме.
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана щедрой университет Калифорнии, Риверсайд (УЦР) Лаборатория начальный фонд O.S.A, USDA национального института продовольствия и сельского хозяйства (НИФА) Люк проекта (1009509) O.S.A.
Bugdorm | Bugdorm | 41515 | Insect Rearing Cage |
Glass Test Tubes | Fisher Scientific | 982010 | |
Flesh fly pupae, Sarcophaga bullata | Carolina Insects | 144440 | |
Microelectrode Beveler | Sutter Instruments | BV10 | |
Diamond abrasive plate (0.7u to 2.0u tip sizes) | Sutter Instruments | 104E | |
Micromanipulator | World Precision Instruments | Kite R | |
Femtojet Express programmable microinjector | Eppendorf | ||
Micropipette Puller | Sutter Instruments | P-1000 or P-2000 | |
Stereo Microscope | Olympus | SZ51 | |
Compound Microscope | Leica DM-750 | ||
Aluminosilicate glass capillary tubing 1mm(outside diameter) X 0.58mm (inner diameter) | Sutter Instruments | BF100-58-10 | Can also use Borosilicate or Quartz |
Identi-Plugs | JAECE | L800-B | Foam plugs |
Microscope Slides | Fisherbrand | 12-550-A3 | |
Micro Cover glass | VWR | 48366045 | |
Adhesive | Aron Alpha | AA471 | For glueing coverslip onto microscope slide |
Fine-tip paintbrush | ZEM | 2595 | |
Ultra-fine tip forcep | Fisher Scientific | 16-100-121 | |
Femtotips Microloader tips | Fisher Scientific | E5242956003 |