Summary

Génération et entretien à long terme sans nerve<em> Hydra</em

Published: July 07, 2017
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Summary

Grâce à un double traitement avec de la colchicine, une toxine végétale qui tue des cellules en division, Hydra vulgaris sans nerf peut être générée. Ces Hydra ne peuvent pas se nourrir ou se passer par eux-mêmes. Cet article décrit une méthode améliorée pour le maintien à long terme d' Hydra vulgaris sans nerf en laboratoire.

Abstract

La lignée cellulaire interstitielle d' Hydra comprend des cellules souches multipotentes et leurs dérivés: cellules de glandes, nématocytes, cellules germinales et cellules nerveuses. Les cellules interstitielles peuvent être éliminées par deux traitements consécutifs avec de la colchicine, une toxine végétale qui tue les cellules en division, ce qui supprime le potentiel de renouvellement des cellules différenciées issues des cellules souches interstitielles. Cela permet la génération d' Hydra qui manque de cellules nerveuses. Un polype sans nerf ne peut pas ouvrir sa bouche pour nourrir, par exemple, ou réguler la pression osmotique. Ces animaux, cependant, peuvent survivre et être cultivés indéfiniment dans le laboratoire si régulièrement alimentés par force et burpe. Le manque de cellules nerveuses permet d'étudier le rôle du système nerveux dans la régulation du comportement et de la régénération des animaux. Les protocoles précédemment publiés pour l'entretien Hydra sans nerf nécessitent des techniques obsolètes telles que la pipetage à la bouche avec une micropipette tIps pour nourrir et nettoyer l' Hydra . Ici, un protocole amélioré pour la maintenance de l' hydre sans nerf est introduit. Des pinces à pointe fine sont utilisées pour forcer l'ouverture de la bouche et l'insertion d' Artemia fraîchement tuée. À la suite de l'alimentation forcée, la cavité corporelle de l'animal est rincée avec un moyen frais à l'aide d'une seringue et d'une aiguille hypodermique pour éliminer le matériau non digéré, désigné ici comme «éructement». Cette nouvelle méthode d'alimentation forcée et d'hydratation éructrice sans nerf à l'aide de pinces et de seringues élimine le besoin de pipeter à la bouche en utilisant des pointes à micropipettes tirées à la main. Cela rend le processus plus sûr et beaucoup plus efficace dans le temps. Pour s'assurer que les cellules nerveuses de l'hypostome ont été éliminées, une immunohistochimie utilisant une anti-tyrosine-tubuline est réalisée.

Introduction

Le système nerveux d' Hydra se compose d'un filet nerveux, avec des neurones associés aux deux couches de tissu épithélial 1 . Le filet nerveux est plus dense dans l'hypostome et le pédoncule et moins dense dans la colonne 2 du corps. Les cellules nerveuses proviennent de cellules souches interstitielles, qui sont des cellules souches multipotentes qui donnent naissance à des cellules sécrétoires, des nématocytes, des cellules germinales et des neurones 1 . Il est possible d'éliminer les cellules interstitielles d' Hydra vulgaris par traitement avec la colchicine 3 , 4 , une toxine végétale qui tue les cellules en division. Bien que la colchicine ait inhibé la polymérisation des microtubules dans d'autres organismes, une étude antérieure a montré que les microtubules sont présents dans Hydra tout au long du traitement, ce qui suggère que la colchicine n'agit pas dans Hydra 3 . Une autre stSuggère que la colchicine ne se lie pas efficacement à la tubuline dans certains organismes, y compris Tetrahymena pyriformis, Zea mays, Chlamydomonas et Schizosaccharomyces pombe, ce qui peut expliquer cette différence 5 . Le traitement par la colchicine induit la phagocytose des cellules interstitielles par les cellules épithéliales endodermiques 3 et permet ainsi la création d'animaux qui manquent de cellules nerveuses, de cellules de glandes et de nématocytes. Il n'est pas clair pourquoi les cellules interstitielles sont particulièrement sensibles au traitement par la colchicine. Étant donné que les cellules interstitielles post-mitotiques et la lignée interstitielle des cellules souches sont endommagées et phagocytées, Campbell a conclu que la colchicine ne touchait pas directement l'activité mitotique 3 . Notamment, le traitement contre la colchicine fonctionne bien chez Hydra vulgaris, mais il a également été démontré qu'il ne fonctionne pas aussi bien dans d'autres espèces, comme Hydra oligactis 6 . </Em> Un traitement modifié avec colchicine et hydroxyurée peut être utilisé pour produire Hydra viridis sans nerf 7 . L' hydre sans nerf (également appelée parfois « Hydra épithéliale» 8 ) est donc un outil utile pour étudier les rôles de ces types de cellules spécialisées à partir de la lignée cellulaire interstitielle dans l'homéostasie et la régénération des tissus.

Hydra peut être le seul exemple connu d'un animal capable de vivre sans système nerveux. L' hydre sans nerf sert de modèle particulièrement utile pour disséquer le rôle du réseau nerveux dans la régulation de la régénération, de l'homéostasie et du comportement de l' Hydra . Par exemple, l'introduction de cellules interstitielles dans l' hydre sans nerf par greffage a permis de caractériser la différenciation des cellules nerveuses en tant que région spécifique 9 . En outre, parce que l' hydre sans nerf peut se régénérer, ilsPermettre l'étude de voies de régénération alternatives, indépendantes du système nerveux. Un tel exemple est la neurogénèse apicale et la formation de la tête, ce qui a démontré qu'elle dépend de la fonction cnox-2 dans le système nerveux dans l' hydre de type sauvage, mais semble être dispensable dans Hydra sans nerf, ce qui suggère qu'il peut y avoir un processus alternatif de régénération de la tête 10 .

L' hydre sans nerf a également été utilisée pour étudier l'expression des cellules épithéliales et la régulation des gènes neurogéniques et de neurotransmission après la perte de la neurogénèse 11 . L' hydre sans nerf ne présente pas de rafale de contraction spontanée 12 , ce qui indique que ces rafales sont régulées par le système nerveux. Cependant, l' hydre sans nerf se contracte en cas de pincement de la colonne du corps avec une pince, ce qui suggère que la contraction en réponse aux stimuli mécaniques est médiée par l'accouplementJumelles gap gap dans les cellules épithéliales, alors que le comportement contractile spontané est médié par couplage à travers des jonctions dans les cellules nerveuses 13 .

L' hydre sans nerf n'ouvre pas la bouche lorsqu'elle est présentée avec de la nourriture ou une glutathion réduite 3 , ce qui suggère que les neurones sensoriels sont nécessaires pour détecter la présence de nourriture et signaler la bouche à ouvrir. En outre, le filet nerveux semble jouer un rôle dans la détection de la pression osmotique, car les animaux sans nerf sont incapables de réguler de manière autonome leur pression hydrostatique interne par l'ouverture de la bouche, ce qui provoque leur apparence caractéristique ballon 3 , 4 ( figure 1B ). La régulation de la pression hydrostatique dans l' hydre sans nerf par une déflation manuelle fréquente a entraîné une perte de morphologie anormale dans l'hypostome et la colonne du corps. Cependant, la déflation chronique a entraîné une interférence avec la croissance, elOrganisation, développement et organisation tissulaire 8 .

Bien que l' Hydra sans nerf soit incapable de se nourrir et de se séparer seul, il est possible de les maintenir indéfiniment au laboratoire en forçant à forcer et à éduquer tous les animaux. Les publications antérieures ont décrit des méthodes d'alimentation forcée et d'éruction sans hydromes , mais ces protocoles impliquaient l'utilisation de conseils à micropipettes qui doivent être tirés à la main avec attention à la taille appropriée ainsi que l'utilisation d'un embout buccal relié à la pipette par un tube 14 . Ici, une méthode d'alimentation et d'éructage plus simple, plus sûre et plus efficace dans le temps est décrite.

De plus, des études antérieures ont consisté à vérifier l'absence de cellules nerveuses par la dissociation d'animaux fixes dans des cellules individuelles et l'examen de la morphologie cellulaire 3 , 4 , 15 . HAvant, l'immunohistochimie avec un anticorps monoclonal contre le carboxy-terminal terminal tyrosiné de l'alpha-tubuline a été utilisée comme méthode complémentaire pour la macération afin de vérifier l'épuisement des neurones dans l'hypostome 13,16. Des études antérieures ont montré que les neurones dans le pédoncule peuvent également être visualisés en utilisant cet anticorps 13 , mais ces neurones aussi bien que ceux dans la colonne du corps sont plus difficiles à distinguer. Bien que l'immunohistochimie soit suffisante pour confirmer l'absence de cellules nerveuses dans l'hypostome et ne nécessite pas d'expertise sur la morphologie du type cellulaire, elle ne peut pas être utilisée pour vérifier l'absence des cellules souches interstitielles et les autres dérivés de ces cellules. La dissociation et les études de morphologie cellulaire sont plus rigoureuses et peuvent donner un compte rendu quantitatif des nombres de chaque type de cellule restant à la suite de chaque étape du traitement.

Protocol

1. Traitement double colchicine Faire une solution de 0,4% de colchicine (poids / volume) dans Hydra medium 3 , 4 , 17 . Attention: la colchicine est très toxique, mortelle si elle est avalée, peut causer des défauts génétiques et peut causer des lésions oculaires. Manipulez la poudre dans une hotte et utilisez un équipement de protection individuelle complet (EPI). I…

Representative Results

Immédiatement après le traitement initial de 8 h de colchicine, tous les Hydra survivent. Certaines de ces Hydra ne contiennent que des talons de tentacule ( Figure 3 A ), tandis que d'autres auront complètement perdu leurs tentacules ( figure 3 B ). Au cours des 1 ou 2 jours suivants, les tentacules continueront à diminuer jusqu'à ce que tous les Hydra ai…

Discussion

Les cellules interstitielles Hydra peuvent être éliminées par un double traitement par colchicine 3 , 4 . Dans les jours qui suivent le premier traitement, il est essentiel d'éviter tout contact entre Hydra individuel afin d'éviter la fusion des pièces d' Hydra en Hydra déformée. En outre, les animaux qui peuvent manger sans assistance après le premier traitement doivent être éliminés car le de…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs remercient le Dr Dick Campbell (UC Irvine) pour des discussions sur le protocole original pour la génération et le maintien d'animaux sans nerf, Mme Rui Wang pour aider à adapter la seringue et la technique de l'aiguille, et Mme Danielle Hagstrom et le Dr Rob Steele (UC Irvine) pour les commentaires sur le manuscrit. Ce travail a été soutenu par la subvention RCSA et NSF CMMI-1463572.

Materials

Colchicine Acros Organics 227120010
1 ml Syringe BD 301025
Brine Shrimp Eggs Brine Shrimp Direct N/A Can be purchased locally
Brine Shrimp Hatchery Dish Brine Shrimp Direct N/A
60 mm x 15 mm Petri Dish Celltreat 229663
30 G x 3/4" Hypodermic Needle Covidien 1188830340 A 27G needle may also be used
2 x Fine-tip Tweezers Dumont 0109-5-PO
Rifampicin EMD Millipore 557303
Goat anti-mouse lgG, Pab (HRP Conjugate) Enzo ADI-SAB-100-J
Bovine Serum Albumin (BSA) Fisher BP9703-100
Scalpel Fisher 08-920A
Fetal Bovine Serum (FBS) Gibco 10437028
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) Invitrogen D1306
PBS Tablets MP Bio 2810305
Monoclonal Anti-Tubulin, Tyrosine Sigma T9028
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Sigma D2650
Hydrogen Peroxide Sigma 216763
Paraformaldehyde (PFA) Sigma P6148
Triton X – 100 Sigma T9284
Tween 20 Sigma P1379
Urethane Sigma U2500
Air Pump Tetra 77846-00
Glass Pasteur Pipette VWR 53283-916 Length of the pipet does not matter
15 ml Tube VWR 89039-670
P320 Sandpaper 3M IBGABBV00397 Can be purchased at local home improvement store

Referenzen

  1. Bode, H. R. The interstitial cell lineage of Hydra: a stem cell system that arose early in evolution. J. Cell. Sci. 109, 1155-1164 (1996).
  2. Hager, G., David, C. N. Pattern of differentiated nerve cells in hydra is determined by precursor migration. Development. 124, 569-576 (1997).
  3. Campbell, R. D. Elimination of Hydra interstitial and nerve cells by means of colchicine. J. Cell. Sci. 21, 1-13 (1976).
  4. Marcum, B. A., Campbell, R. D. Development of Hydra lacking nerve and interstitial cells. J. Cell. Sci. 29, 17-33 (1978).
  5. Burns, R. G. 3H-colchicine binding: Failure to detect any binding to soluble proteins from various lower organisms. Exp. Cell. Res. 81, 285-292 (1973).
  6. Lee, H. -. T., Campbell, R. D. Development and Behavior of an Intergeneric Chimera of Hydra (Pelmatohydra oligactis Interstitial Cells Hydra attenuata Epithelial Cells). Biol. Bull. 157 (2), 288-296 (1979).
  7. Novak, P. Preparing Hydra viridis with Nerve Cells and No Interstitial Cells, or with Neither of These Cell Types. Hydra: Research Methods. , 295-297 (1983).
  8. Wanek, N., Marcum, B. A., Lee, H. -. T., Chow, M., Campbell, R. D. Effect of hydrostatic pressure on morphogenesis in nerve-free Hydra. J. Exp. Zool. 211, 275-280 (1980).
  9. Minobe, S., Koizumi, O., Sugiyama, T. Nerve cell differentiation in nerve-free tissue of epithelial Hydra from precursor cells introduced by grafting. Dev. Biol. 172 (1), 170-181 (1995).
  10. Miljkovic-Licina, M., Chera, S., Ghila, L., Galliot, B. Head regeneration in wild-type hydra requires de novo neurogenesis. Development. 134 (6), 1191-1201 (2007).
  11. Wenger, Y., Buzgariu, W., Galliot, B. Loss of neurogenesis in Hydra leads to compensatory regulation of neurogenic and neurotransmission genes in epithelial cells. Phil. Trans. R. Soc. B. 371 (20150040), (2015).
  12. Campbell, R. D., Josephson, R. K., Schwab, W. E., Rushforth, N. B. Excitability of nerve-free Hydra. Nature. 262, 388-390 (1976).
  13. Takaku, Y., Hwang, J. S., et al. Innexin gap junctions in nerve cells coordinate spontaneous contractile behavior in Hydra polyps. Sci. Rep. 4 (3573), (2014).
  14. Marcum, B. A. Culturing Epithelial Hydra. Hydra: Research Methods. , 287-290 (1983).
  15. David, C. N. A quantitative method for maceration of Hydra tissue. Wilhelm Roux Arch. Entwickl. Mech. Org. 171, 259-268 (1973).
  16. Gröger, H., Schmid, V. Larval development in Cnidaria: A connection to Bilateria. Genesis. 29 (3), 110-114 (2001).
  17. Lenhoff, H. M. Water, Culture Solutions, and Buffers. Hydra: Research Methods. , 29-34 (1983).
  18. Shenk, M. A., Bode, H. R., Steele, R. E. Expression of Cnox-2, a HOM/HOX homeobox gene in hydra, is correlated with axial pattern formation. Development. 117, 657-667 (1993).
  19. Böttger, A., et al. Horizontal Gene Transfer Contributed to the Evolution of Extracellular Surface Structures: The Freshwater Polyp Hydra Is Covered by a Complex Fibrous Cuticle Containing Glycosaminoglycans and Proteins of the PPOD and SWT (Sweet Tooth) Families. PLoS One. 7 (12), (2012).
  20. King, R. S., Newmark, P. A. In situ hybridization protocol for enhanced detection of gene expression in the planarian Schmidtea mediterranea. BMC Dev. Biol. 13 (8), (2013).

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Diesen Artikel zitieren
Tran, C. M., Fu, S., Rowe, T., Collins, E. S. Generation and Long-term Maintenance of Nerve-free Hydra. J. Vis. Exp. (125), e56115, doi:10.3791/56115 (2017).

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