Summary

La cuantificación de la actina filamentosa (F-actina) puntos lagrimales en las neuronas corticales de rata

Published: February 10, 2016
doi:

Summary

Filamentous actin (F-actin) plays an important role in spinogenesis, synaptic plasticity, and synaptic stability. Quantification of F-actin puncta is therefore a useful tool to study the integrity of synaptic structures. This protocol describes the procedures of quantifying F-actin puncta labeled with Phalloidin in low-density primary cortical neuronal cultures.

Abstract

proteína actina filamentosa (F-actina) juega un papel importante en espinogénesis, la plasticidad sináptica, y la estabilidad sináptica. Los cambios en las estructuras dendríticas ricas F-actina sugieren alteraciones en la integridad y la conectividad sináptica. Aquí se proporciona un protocolo detallado para el cultivo de neuronas corticales de rata primaria, tinción faloidina para puntos lagrimales F-actina, y técnicas de cuantificación posteriores. En primer lugar, la corteza frontal de embriones de rata E18 se disocia en cultivo de células de baja densidad, a continuación, las neuronas cultivadas in vitro durante al menos 12-14 días. Después del tratamiento experimental, las neuronas corticales se tiñeron con faloidina AlexaFluor 488 (para etiquetar los puntos lagrimales F-actina dendríticas) y la proteína asociada a microtúbulos 2 (MAP2, para validar las células neuronales y la integridad dendríticas). Finalmente, el software especializado se utiliza para analizar y cuantificar las dendritas neuronales seleccionados al azar. F-actina estructuras ricas están identificados en las ramas dendríticas de segundo orden (rango de longitud y 25-75# 181; m) con inmunofluorescencia MAP2 continua. El protocolo presentado aquí será un método útil para la investigación de cambios en las estructuras de la sinapsis dendríticas posteriores a los tratamientos experimentales.

Introduction

El objetivo principal de este estudio es desarrollar un método fiable de medida (estimación) de la integridad sináptica de la red dendrítica neuronal. A continuación se describe la cuantificación de los puntos lagrimales F-actina en la rata primaria neuronas cultivadas utilizando una combinación de tinción faloidina y detección inmunocitoquímica (CPI) de las dendritas con posterior análisis utilizando software especializado (NIS-Elements).

Falotoxinas etiquetados tienen afinidad similar para los filamentos tanto grandes como pequeñas (F-actina), pero no se unen a la actina monomérica globular (G-actina), a diferencia de algunos anticuerpos de actina 1. La unión no específica de faloidina es despreciable, lo que proporciona el fondo de imagen mínima durante celular. Faloidina es mucho más pequeño que los anticuerpos que normalmente se utilizan para etiquetar proteínas celulares por microscopía de fluorescencia, que permite mucho más intensa etiquetado de F-actina por faloidina. Por lo tanto, a los detalles de la localización de F-actina en neuronas pueden serobtenido mediante el uso de faloidina marcada.

Faloidina (F-actina) tinción de dendritas neuronales discretas genera "puntos calientes" o "puntos lagrimales" brillante, que representan una variedad de estructuras dendríticas maduras, incluyendo las espinas, las sinapsis no espinosas 2 y espinas inmaduras. Espinas inmaduras incluyen filopodios delgadas y algunas formas de la morfología de parches, y pueden representar el inicio de espinogénesis 3. Espinas inmaduras y parches no espinosas carecen PSD95 4. Los cambios en la producción de plomo F-actina a los cambios posteriores en no sólo las espinas dendríticas, sino también estructuras adicionales, con lo que faloidina una herramienta importante para la investigación de la integridad synaptodendritic 5-7. En general, el número de puntos lagrimales faloidina-positivo (F-actina) reflejan un equilibrio entre las sinapsis activas (excitatorias e inhibitorias), la dinámica de actina y la estabilidad sinapsis 8.

Aunque es importante para estudiar t específicaipos de sinapsis (es decir, espinas dorsales excitatorios), cuando se desconoce el objetivo de un tratamiento, es necesario estimar primero la integridad general de una variedad de estructuras dendríticas. Desde F-actina es un componente principal de las espinas dendríticas y otras estructuras, incluyendo las sinapsis inhibidoras, un número alterado de puntos lagrimales F-actina puede indicar un synaptopathy. Este synaptopathy puede entonces investigarse más a fondo de las alteraciones más específicas. Nuestro método de cuantificación para la detección de múltiples tipos / estructuras sinápticas se obtiene una estimación global de las alteraciones sinápticas dendríticas (aumentos y disminuciones) después de varios tratamientos experimentales.

Protocol

Todos los animales protocolos fueron revisados ​​y aprobados por el Comité de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Carolina del Sur (número de aseguramiento: A3049-01). 1. baja densidad cultivos neuronales embrionarias Preparación para el cultivo de neuronas corticales primaria soluciones: Preparar poli-L-lisina solución madre disolviendo 5 mg de poli-L-lisina en 10 ml de tampón de borato. Preparar la solución de tra…

Representative Results

En los presentes procedimientos, en primer lugar la cultura de rata neuronas corticales a baja densidad en placas con fondo de vidrio de 35 mm, la cual nos permite identificar las dendritas de las neuronas individuales. En la Figura 1, el contraste de interferencia diferencial (DIC) imágenes muestran los cambios morfológicos en el desarrollo de rata fetal neuronas corticales en los días 4, 6, 10, 14, 21 y 27 in vitro. Tenga en cuenta que la l…

Discussion

En este protocolo, se describe el cultivo de neuronas corticales de rata a baja densidad en placas con fondo de vidrio de 35 mm, que nos permite identificar las dendritas de las neuronas individuales. A continuación, utilizamos faloidina y tinción MAP2 para detectar cambios dendríticas. A continuación, se utilizó un software especializado para cuantificar los cambios en puntos lagrimales F-actina.

Para determinar los cambios en puntos lagrimales F-actina toda la red neuronal de una neur…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded by NIH grants DA013137, DA031604, and HD043680. Partial support was provided by a NIH T32 training grant in Biomedical-Behavioral science.

Materials

35 mm Glass Bottom Dishes No. 1.5 coverglass MatTek Corporation P35G-1.5-20-C
DMEM/F12 medium Life Technologies 10565-018
Trypsin-EDTA Life Technologies 15400-054
Poly-L-Lysine Sigma P9155
Boric acid Sigma B0252
Borax Sigma B9876
GlutaMax Life Technologies 35050-061 100X
Glucose VWR 101174Y
HBSS Sigma H4641 10X
Neurobasal medium Life Technologies 21103-049
B-27 supplement Life Technologies 17504-044 50X
Antibiotic-Antimycotic solution Cellgro 30004CI 100X
Sodium Bicarbonate Life Technologies 25080
Vannas Scissors World Precision Instruments 500086
Iris Scissors World Precision Instruments 500216
Iris Forceps World Precision Instruments 15914
Dumont #7 Forceps World Precision Instruments 14097
Dumont #5 Forceps World Precision Instruments 14095
ProLong Gold Life Technologies P36930
Paraformaldehyde  Sigma P6148
Cover glass VWR 631-0137
AlexaFluor 488 Phalloidin Life Technologies A12379
Normal horse serum Life Technologies 26050-070
Chicken polyclonal anti-MAP2 abcam Ab92434
Alexa Red 594-conjugated goat anti-chicken IgG Life Technologies A11042
NucBlue Live cell stain ReadyProbes Reagent Hoescht 33342 Life Technologies R37605
NIS-Elements software package Nikon Instruments
Nikon Eclipse TE2000-E inverted fluorescent computer-controlled microscope  Nikon Instruments
0.2 μm Nalgene nylon membrane filter Fishersci 151-4020

Referenzen

  1. Heller, E. A., et al. The biochemical anatomy of cortical inhibitory synapses. PLoS One. 7, e39572 (2012).
  2. Craig, A. M., Blackstone, C. D., Huganir, R. L., Banker, G. Selective clustering of glutamate and gamma-aminobutyric acid receptors opposite terminals releasing the corresponding neurotransmitters. Proc Natl Acad Sci USA. 91, 12373-12377 (1994).
  3. Johnson, O. L., Ouimet, C. C. A regulatory role for actin in dendritic spine proliferation. Brain Res. 1113, 1-9 (2006).
  4. Rao, A., Craig, A. M. Signaling between the actin cytoskeleton and the postsynaptic density of dendritic spines. Hippocampus. 10 (5), 527-541 (2000).
  5. Matus, A., Ackermann, M., Pehling, G., Byers, H. R., Fujiwara, K. High actin concentrations in brain dendritic spines and postsynaptic densities. Proc Natl Acad Sci USA. 79, 7590-7594 (1982).
  6. Allison, D. W., Gelfand, V. I., Spector, I., Craig, A. M. Role of actin in anchoring postsynaptic receptors in cultured hippocampal neurons: differential attachment of NMDA versus AMPA receptors. J Neurosci. 18, 2423-2436 (1998).
  7. Sekino, Y., Kojima, N., Shirao, T. Role of actin cytoskeleton in dendritic spine morphogenesis. Neurochem Int. 51, 92-104 (2007).
  8. Zhang, W., Benson, D. L. Stages of synapse development defined by dependence on F-actin. J Neurosci. 21 (14), 5169-5181 (2001).
  9. Bertrand, S. J., Aksenova, M. V., Mactutus, C. F., Booze, R. M. HIV-1 Tat protein variants: Critical role for the cysteine region in synaptodendritic injury. Exp Neurol. 248, 228-235 (2013).
  10. Bertrand, S. J., Mactutus, C. F., Aksenova, M. V., Espensen-Sturges, T. D., Booze, R. M. Synaptodendritic recovery following HIV Tat exposure: neurorestoration by phytoestrogens. J Neurochem. 128 (1), 140-151 (2014).
  11. Lau, P. M., Zucker, R. S., Bentley, D. Induction of filopodia by direct local elevation of intracellular calcium ion concentration. J Cell Biol. 145, 1265-1275 (1999).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Li, H., Aksenova, M., Bertrand, S. J., Mactutus, C. F., Booze, R. Quantification of Filamentous Actin (F-actin) Puncta in Rat Cortical Neurons. J. Vis. Exp. (108), e53697, doi:10.3791/53697 (2016).

View Video