Summary

Une cellule endothéliale Planar Modèle for Imaging Dynamics Synapse immunologique

Published: December 24, 2015
doi:

Summary

Adaptive immunity is controlled by dynamic ‘immunological synapses’ formed between T cells and antigen presenting cells. This protocol describes methods for investigating endothelial cells both as understudied physiologic APCs and as a novel type of ‘planar cellular APC model’.

Abstract

L'immunité adaptative est régulée par des interactions dynamiques entre les cellules T et les cellules présentatrices d'antigènes ("APC") appelés «synapses immunologiques». Au sein de ces interfaces cellule-cellule intimes grappes de sous-cellulaire discrètes de CMH / Ag-TCR, la F-actine, l'adhérence et des molécules de signalisation forment et remodeler rapidement. Ces dynamiques sont pensés pour être des facteurs déterminants de l'efficacité et la qualité des réponses immunitaires qui développent et donc de protection contre l'immunité pathologique. La compréhension actuelle des synapses immunologiques avec physiologique APC est limitée par l'insuffisance de la résolution obtenue d'imagerie. Bien que les modèles de substrat artificiel (par exemple, des bicouches lipidiques planes) offrent une excellente résolution et ont été des outils extrêmement précieux, ils sont intrinsèquement non-physiologique et simpliste. Les cellules endothéliales vasculaires et lymphatiques ont émergé comme un tissu périphérique importante (ou stroma) compartiment de 'semi-professional APC ». Ces APC (qui expriment la plupart de la machinerie moléculaire des APC professionnelle) ont la particularité de former surface cellulaire pratiquement plane et sont facilement transfectable (par exemple, avec les journalistes de protéines fluorescentes). Ici une approche de base pour mettre en œuvre les cellules endothéliales comme un roman et physiologique »plane modèle APC cellulaire» pour l'amélioration de l'imagerie et de l'interrogatoire des processus fondamentaux de signalisation antigéniques sera décrit.

Introduction

Les lymphocytes T sont une branche du système immunitaire adaptatif caractérisé par la capacité de reconnaître efficacement antigène peptidique (Ag) lié à complexe majeur d'histocompatibilité (CMH) à travers leurs récepteurs de lymphocytes T (TCR) 1. Lymphocytes naïfs migrent constitutivement et Scan 'Ag cellules présentatrices professionnels »(CPA; par exemple, les cellules dendritiques) dans les ganglions lymphatiques, tandis que les cellules mémoire / T effecteurs doivent pouvoir surveiller efficacement une gamme extrêmement large d'APC et les cellules cibles potentielles dans les tissus périphériques.

Dans le min après la comptabilisation initiale de l'apparenté Ag sur une APC, les lymphocytes arrêter leur migration et de commencer à former intime une interface spécialisée cellule-cellule appelée "synapse immunologique" (IS). Soutenue (c.-à 30-60 min) EST contacts sont nécessaires pour amplifier et soutenir signalisation 2-7. Nouvelles études identifient que dans le SI, il est la formation continue et r rapideemodeling de signalisation sous-cellulaire des micro-amas discrets (par exemple, contenant du CMH / Ag-TCR, la F-actine, l'adhérence et des molécules de signalisation) qui déterminent la résistance et la qualité de la réponse immunitaire résultante 2-7. Cependant, les détails dynamiques et mécanisme de régulation de ce processus sont encore mal compris 8,9. Cette situation découle en grande partie des défis techniques liés aux topologies de surfaces irrégulières APC et l'orientation mal contrôlée des plans d'interaction cellule-cellule, les problèmes qui limitent profondément l'imagerie spatio-temporelle requise approches 8-10 (Figure1A).

Figure 1

Figure 1. Un physiologique Planar cellulaire APC Modèle pour l'imagerie immunologique Synapse Dynamics. Le schéma illustre l'imagerie traditionnelle de la synapse immunologique entre un lymphocyte T et un professio APC nal (A) et des cellules T et un modèle traditionnel plane lipidique bicouche APC (B) par rapport à ce nouveau modèle plane APC endotheliales (C). APC professionnelles fournissent des synapses immunologiques physiologiques, mais offrent l'interface mal orienté cellule-cellule (par exemple, par rapport au plan optimal de formation d'image xy, la résolution ~ 0,2 pm), ce qui compromet considérablement spatial (z imagerie avion résolution ~ 1 um) et temporelle (par exemple, en raison de la nécessité de numériser plusieurs reprises à travers tous les plans z d'imagerie) résolution de l'imagerie. Modèles bicouches ont une topologie planaire qui fournit une résolution spatio-temporelle optimale d'imagerie, mais sont également très simplifiées, non physiologique et rigide. Ce modèle associe des cellules endotheliales de la topologie du plan de bicouches lipidiques avec le substrat physiologique d'un APC classique pour fournir la résolution de l'imagerie spatiale et temporelle optimale dans un contexte physiologique.m / files / ftp_upload / 53288 / 53288fig1large.jpg "target =" _ blank "> S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

Des travaux antérieurs ont partiellement contourné ces obstacles en élaborant des modèles de substrat plan (c.-à-bicouches lipidiques et des surfaces revêtues d'anticorps) qui fournissent la résolution spatio-temporelle optimale (ie, par l'intermédiaire de la fixation de la surface de l'activation des cellules T dans un plan unique qui est parallèle à l'imagerie xy optimale plan) 11 à 15 (figure 1B). Ces modèles ont facilité des informations importantes sur la dynamique sous-cellulaires / moléculaires qui contrôlent la signalisation antigénique des lymphocytes T, y compris la découverte d'actine dynamique / TCR de signalisation micro-clusters 7,11-14. Toutefois, ces modèles sont intrinsèquement trop simplifiées, ainsi que rigide (excluant le développement / étude des caractéristiques topologiques 3 dimensions) (figure 1B). Par conséquent, il reste incertain comment relier ces résultats à PHYcellule-cellule siologic de la surveillance immunitaire.

Bien que toujours sous-étudié, vasculaire et les cellules endothéliales lymphatiques apparaissent comme un grand (ie, plus nombreux que tous les APC professionnelles, par ~ 1000 fois) compartiment périphérique de «semi-professionnel» APC 16-18. Ces cellules expriment MHC-I, MHC-II et une multitude de molécules co-stimulatrices (par exemple, CD40, LFA3, ICOSL, 4-1BB, OX40L, TL1A, PD-L1; mais pas CD80 et CD86) et sont stratégiquement positionné à l'interface sang-tissus où ils remplissent des fonctions sentinelles spécialisées 16-18. Des études antérieures ont démontré que les cellules endothéliales peuvent effectivement re-stimuler effecteur / mémoire, mais pas naïfs, les cellules T 19-25. Ainsi, les cellules endotheliales sont susceptibles de jouer un rôle unique APC en phase effectrice de la réponse immunitaire adaptative dans les tissus périphériques, tels que l'influence locale sur activation des lymphocytes T, la différenciation, de la mémoire et de la tolérance 16,17,26. Critiquement, lorsqu'elles sont cultivées in vitro, les cellules endotheliales forment des surfaces planes pratiquement cellulaires et sont facilement transfectables (par exemple, avec les reporters de protéines fluorescentes). Ces caractéristiques sont idéales pour la résolution spatio-temporelle de haute imagerie de la dynamique topologiques au cours des interactions cellule-cellule 19,27. Ainsi, les cellules endothéliales pourraient servir de «cellulaire plane APC« modèle physiologique distinctement adapté pour l'étude des mécanismes de remodelage sous-cellulaires / moléculaires qui conduisent reconnaissance de l'antigène et régulent les réponses (figure 1C) 19,20.

Auparavant établi des techniques d'imagerie complémentaires (y compris la transfection de cellules endotheliales avec une machine de protéines fluorescentes de la membrane plasmique et cytosol) pour étudier les détails de l'interaction des leucocytes-endothélial au cours de l'adhérence et de la migration transendotheliale 27, ont montré que les leucocytes sonde active la surface de l'endothélium par dynamique l'insertion d'und rétraction de sous-échelle du micron, protubérances cylindriques actine riche (~ 200-1,000 nm de diamètre et de profondeur) appelé invadosome-comme des saillies (ie, "PAI") 27,28. Ces approches d'imagerie ont été encore élargi avec la création de protocoles de profiter de la fonction endothéliale APC pour développer les premières méthodes de résolution spatio-temporelle de l'imagerie haute cellule T-endothélial synapse immunologique comme rapporté 19,20 et décrire plus en détail ici. Une conclusion centrale dérivé de ce roman plane cellulaire modèle APC est que PAI de cellules T fonctionnent à la fois dans la promotion de la détection initiale Ag et dans le maintien de la signalisation subséquente. En effet, les tableaux de multiples PAI (qui ont été stabilisés et comptabilisée en réponse à parapher le flux de calcium) montrent un enrichissement en molécules TCR et suggestives de la signalisation actif tel PKC-Q, ZAP-70, phosphotyrosine et HS1. Par conséquent, PAI semblent représenter une tridimensionnel équivalent physiologique de la micro-TCR de signalisationgrappes observés dans les modèles à deux couches planes. Cette approche, donc, révèle sensible / rapports dynamique moléculaire et architecturaux (et implicites biomécanique) pas autrement détectable.

La méthode décrite ici devrait être utile à combler le fossé entre les APC professionnelle et modèles artificiels de substrat APC afin d'améliorer notre capacité d'interroger les mécanismes de base de réponses immunitaires adaptatives. Alors que l'accent est mis ici sur l'activation de CD4 + de type Th1 effecteur / cellule de mémoire, cette approche de base peut être facilement modifié pour étudier un large éventail de types et de Ags de cellules T, comme on le verra ci-dessous.

Protocol

Toutes les expériences décrites dans ce protocole sont menées avec des cellules T humaines primaires et des cellules primaires humaines disponibles dans le commerce endothéliales (cutanée ou microvasculaire du poumon EC) .Tout protocole de recherche impliquant des sujets humains doit être approuvée par un comité d'examen institutionnel et le consentement éclairé écrit doit être fourni à partir de chaque donneur de sang. Des expériences menées en utilisant ce protocole a été approuvé par la CISR de Beth Israel Deaconess…

Representative Results

Une nouvelle approche de formation d'image en utilisant des cellules endotheliales et en combinant les avantages de résolution du plan modèle de bicouches lipidiques avec la complexité physiologique et la déformabilité des APC professionnelle a été développé (figure 1). La figure 2 donne des exemples de migration typique, le flux de calcium et de la dynamique topologiques observé avec ce approche. En l'absence d'aff…

Discussion

Dans l'ensemble, ce protocole décrit des méthodes pour étudier les cellules endothéliales que i) APC physiologiques peu étudiés et ii) comme un type de «modèle plane APC cellulaire» de roman. En ce qui concerne le premier, il est devenu de plus en plus apprécié que les APC périphérique non-hématopoïétiques (ou «stromales ') jouent des rôles critiques, non redondants (ie, par rapport à hématopoïétique APC) dans l'élaboration de réponses immunitaires adaptatives 16-18.</su…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Dr. Peter T. Sage for his assistance in generating some of the representative images. This work was supported by an NIH R01 grant to C.V.C. (HL104006).

Materials

BD Vacutainer stretch latex free tourniquet BD Biosciences 367203
BD alcohol swabs BD Biosciences 326895
BD Vacutainer Safety-Lok BD Biosciences 367861 K2 EDTA
BD Vacutainer Push Button Blood Collection Set BD Biosciences 367335
RPMI-1640 Sigma-Aldrich R8758-1L
Ficoll-Paque  Sigma-Aldrich GE17-1440-02 Bring to RT before use
FCS-Optima Atlanta Biologics s12450 Heat inactivated
Penicillin-Streptomycin  Sigma-Aldrich  P4458-100ML  
Trypan blue Sigma-Aldrich T8154-20ML
staphylococcal enterotoxin B  Toxin Technology BT202RED Stock solution 1mg/ml in PBS
toxic shock syndrome toxin 1  Toxin Technology TT606RED Stock solution 1mg/ml in PBS
human IL-15 R&D Systems 247-IL-025 Stock solution 50ug/ml in PBS
PBS Life Technologies 10010-049
Fibronectin Life Technologies 33016-015 Stock solution 1mg/ml in H20
HMVEC-d Ad-Dermal MV Endo Cells Lonza CC-2543 Other Human Microvascular ECs can be used, i.e. HLMVECs
EGM-2 MV bullet kit Lonza CC-3202
Trypsin-EDTA Sigma-Aldrich T-4174 Stock solution 10x, dilute in PBS
amaxa-HMVEC-L Nucleofector Kit Lonza vpb1003 Required Kit for step 4
IFN-g Sigma-Aldrich I3265 Stock solution 1mg/ml in H20
TNF-alpha 10ug, human Life Technologies PHC3015 Stock solution 1mg/ml in H20
phenol Red-free HBSS  Life Technologies 14175-103
Hepes Fisher Scientific BP299-100
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C1016-100G Stock solution 1M in H20
Magnesium chloride Sigma-Aldrich 208337 Stock solution 1M in H20
Human Serum albumin Sigma-Aldrich A6909-10ml
Immersol 518 F fluorescence free Immersion oil Fisher Scientific 12-624-66A
Fura-2 AM 20x50ug Life Technologies F1221 Stock solution 1mM in DMSO
pEYFP-Mem (Mem-YFP) Clontech 6917-1
pDsRed-Monomer (Soluble Cytoplasmic DsRed) Clontech 632466
pDsRed-Monomer Membrane (Mem-DsRed) Clontech 632512
pEGFP-Actin Clontech 6116-1
Alexa Fluor 488 Phalloidin Life Technologies A12379
Formaldehyde solution 37% Fisher Scientific BP531-500 Toxic, use fumehood
Triton X-100 Sigma-Aldrich X100-5ML
 Falcon 15mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-959-70C
Falcon 50mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-959-49A 
Falcon Tissue Culture Treated Flasks T25 Fisher Scientific 10-126-9
 Falcon Tissue Culture Treated Flasks T75 Fisher Scientific   13-680-65
 Corning Cell Culture Treated T175 Fisher Scientific 10-126-61 
Glass coverslips  Fisher Scientific 12-545-85  12 mm diameter
 Falcon Tissue Culture Plates 24-well Fisher Scientific 08-772-1
Delta-T plates Bioptechs 04200415B
Wheaton Disposable Pasteur Pipets Fisher Scientific 13-678-8D
1.5 ml Eppendorf tube  Fisher Scientific 05-402-25
 ICAM1 mouse anti-human BD Biosciences 555509
HS1 mouse anti-human BD Biosciences 610541
Anti-Human CD11a (LFA-1alpha) Purified ebioscience BMS102
Anti-Human CD3 Alexa Fluor® 488 ebioscience 53-0037-41
Anti-MHC Class II antibody  Abcam ab55152
Anti-Talin 1 antibody Abcam ab71333
Anti-PKC theta antibody  Abcam ab109481
phosphotyrosine (4G10 Platinum) Millipore 50-171-463
Nucleofector II Amaxa Biosystems Required electroporator for step 4
Zeiss Axiovert Carl Zeiss MicroImaging
Zeiss LSM510  Carl Zeiss MicroImaging
Zeiss Axiovison Software Carl Zeiss MicroImaging
NU-425 (Series 60) Biological Safety Cabinet NuAIRE Nu-425-600
 Forma STRCYCLE 37 °C, 5% CO2 Cell culture Incubator Fisher Scientific 202370
Centrifuge 5810 Eppendorf EW-02570-02
Hemocytometer Sigma-Aldrich  Z359629 Bright-Line Hemocytometer
Isotemp Waterbath model 202 Fisher Scientific 15-462-2

Referenzen

  1. von Andrian, U. H., Mackay, C. R. T-cell function and migration. Two sides of the same coin. N. Engl. J. Med. 343 (14), 1020-1034 (2000).
  2. Springer, T. A. Adhesion receptors of the immune system. Nature. 346 (6283), 425-434 (1990).
  3. Shaw, A. S., Dustin, M. L. Making the T cell receptor go the distance: a topological view of T cell activation. Immunity. 6 (4), 361-369 (1997).
  4. Monks, C. R., Freiberg, B. A., Kupfer, H., Sciaky, N., Kupfer, A. Three-dimensional segregation of supramolecular activation clusters in T cells. Nature. 395 (6697), 82-86 (1998).
  5. Delon, J., Stoll, S., Germain, R. N. Imaging of T-cell interactions with antigen presenting cells in culture and in intact lymphoid tissue. Immunol Rev. 189, 51-63 (2002).
  6. Brossard, C., et al. Multifocal structure of the T cell – dendritic cell synapse. Eur J Immunol. 35 (6), 1741-1753 (2005).
  7. Dustin, M. L. The cellular context of T cell signaling. Immunity. 30 (4), 482-492 (2009).
  8. Balagopalan, L., Sherman, E., Barr, V. A., Samelson, L. E. Imaging techniques for assaying lymphocyte activation in action. Nat Rev Immunol. 11 (1), 21-33 (2011).
  9. Cebecauer, M., Spitaler, M., Serge, A., Magee, A. I. Signalling complexes and clusters: functional advantages and methodological hurdles. J Cell Sci. 123, 309-320 (2010).
  10. Oddos, S., et al. High-speed high-resolution imaging of intercellular immune synapses using optical tweezers. Biophys J. 95 (10), L66-L68 (2008).
  11. Grakoui, A., et al. The immunological synapse: a molecular machine controlling T cell activation. Science. 285 (5425), 221-227 (1999).
  12. Bunnell, S. C., et al. T cell receptor ligation induces the formation of dynamically regulated signaling assemblies. J Cell Biol. 158 (7), 1263-1275 (2002).
  13. Yokosuka, T., et al. Newly generated T cell receptor microclusters initiate and sustain T cell activation by recruitment of Zap70 and SLP-76. Nat Immunol. 6 (12), 1253-1262 (2005).
  14. Seminario, M. C., Bunnell, S. C. Signal initiation in T-cell receptor microclusters. Immunol Rev. 221, 90-106 (2008).
  15. Dustin, M. L. Supported bilayers at the vanguard of immune cell activation studies. J Struct Biol. 168 (1), 152-160 (2009).
  16. Martinelli, R., Carman, C. V., Bradshaw, R. A., Stahl, P. Lymphocyte Endothelilal Interactions. Encyclopedia of Cell Biology. , (2015).
  17. Choi, J., Enis, D. R., Koh, K. P., Shiao, S. L., Pober, J. S. T lymphocyte-endothelial cell interactions. Annu Rev Immunol. 22, 683-709 (2004).
  18. Marelli-Berg, F. M., Jarmin, S. J. Antigen presentation by the endothelium: a green light for antigen-specific T cell trafficking?. Immunol Lett. 93 (2-3), 109-113 (2004).
  19. Sage, P. T., et al. Antigen recognition is facilitated by invadosome-like protrusions formed by memory/effector T cells. J Immunol. 188 (8), 3686-3699 (2012).
  20. Kumari, S., et al. Actin foci facilitate activation of the phospholipase C-gama in primary T lymphocytes via the WASP pathway . eLife. , (2015).
  21. Marelli-Berg, F. M., et al. Major histocompatibility complex class II-expressing endothelial cells induce allospecific nonresponsiveness in naive T cells. J Exp Med. 183 (4), 1603-1612 (1996).
  22. Ma, W., Pober, J. S. Human endothelial cells effectively costimulate cytokine production by, but not differentiation of, naive CD4+ T cells. J Immunol. 161 (5), 2158-2167 (1998).
  23. Perez, V. L., Henault, L., Lichtman, A. H. Endothelial antigen presentation: stimulation of previously activated but not naive TCR-transgenic mouse T cells. Cell Immunol. 189 (1), 31-40 (1998).
  24. Epperson, D. E., Pober, J. S. Antigen-presenting function of human endothelial cells. Direct activation of resting CD8 T cells. J Immunol. 153 (12), 5402-5412 (1994).
  25. Shiao, S. L., et al. Human effector memory CD4+ T cells directly recognize allogeneic endothelial cells in vitro and in vivo. J Immunol. 179 (7), 4397-4404 (2007).
  26. Marelli-Berg, F. M., Okkenhaug, K., Mirenda, V. A two-signal model for T cell trafficking. Trends Immunol. 28 (6), 267-273 (2007).
  27. Carman, C. V., et al. Transcellular diapedesis is initiated by invasive podosomes. Immunity. 26 (6), 784-797 (2007).
  28. Carman, C. V. Mechanisms for transcellular diapedesis: probing and pathfinding by ‘invadosome-like protrusions’. J Cell Sci. 122 ((Pt 17)), 3025-3035 (2009).
  29. Dustin, M. L., Tseng, S. Y., Varma, R., Campi, G. T. T cell-dendritic cell immunological synapses. Curr Opin Immunol. 18 (4), 512-516 (2006).
  30. Saito, T., Yokosuka, T. Immunological synapse and microclusters: the site for recognition and activation of T cells. Curr Opin Immunol. 18 (3), 305-313 (2006).
  31. Gomez, T. S., et al. HS1 functions as an essential actin-regulatory adaptor protein at the immune synapse. Immunity. 24 (6), 741-752 (2006).
  32. Burbach, B. J., Medeiros, R. B., Mueller, K. L., Shimizu, Y. T-cell receptor signaling to integrins. Immunol Rev. 218, 65-81 (2007).
  33. Vicente-Manzanares, M., Sanchez-Madrid, F. Role of the cytoskeleton during leukocyte responses. Nat Rev Immunol. 4 (2), 110-122 (2004).
  34. Ma, Z., Janmey, P. A., Finkel, T. H. The receptor deformation model of TCR triggering. Faseb J. 22 (4), 1002-1008 (2008).
  35. Ma, Z., Sharp, K. A., Janmey, P. A., Finkel, T. H. Surface-anchored monomeric agonist pMHCs alone trigger TCR with high sensitivity. PLoS Biol. 6 (2), e43 (2008).
  36. Groves, J. T. Bending mechanics and molecular organization in biological membranes. Annu Rev Phys Chem. 58, 697-717 (2007).
  37. Xu, C., et al. Regulation of T cell receptor activation by dynamic membrane binding of the CD3epsilon cytoplasmic tyrosine-based motif. Cell. 135 (4), 702-713 (2008).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Martinelli, R., Carman, C. V. An Endothelial Planar Cell Model for Imaging Immunological Synapse Dynamics. J. Vis. Exp. (106), e53288, doi:10.3791/53288 (2015).

View Video