Summary

Extracellulär Wire Tetrode inspelning i hjärnan av Fritt Walking Insekter

Published: April 01, 2014
doi:

Summary

Vi har tidigare utvecklat en teknik för att implantera tetrode trådar i det centrala komplexet av kackerlacka hjärnor som tillåter oss att övervaka aktiviteten i enskilda enheter av uppbundna kackerlackor. Här presenterar vi en modifierad version av den teknik som tillåter oss att också registrera hjärnaktivitet i fritt rörliga insekter.

Abstract

Ökat intresse för rollen av hjärnaktivitet i insekts motorstyrning kräver att vi ska kunna övervaka neural aktivitet medan insekter utföra naturligt beteende. Vi har tidigare utvecklat en teknik för att implantera tetrode trådar i det centrala komplexet av kackerlacka hjärnor som tillät oss att spela in aktivitet från flera nervceller samtidigt medan en bunden kackerlacka vände eller förändrad gånghastighet. Samtidigt som ett stort framsteg, uppbundna förberedelser ger tillgång till begränsade beteenden och saknar ofta återkoppling processer som sker i fritt rörliga djur. Vi presenterar nu en modifierad version av den teknik som tillåter oss att spela in från den centrala komplex av fritt rörliga kackerlackor när de går i en arena och ta itu med hinder genom att vrida, klättring eller tunnel. Tillsammans med hög hastighet video och kluster skärning, kan vi nu relatera hjärnaktivitet till olika parametrar för förflyttning av fritt beter insekter.

Introduction

I artikeln beskrivs ett framgångsrikt system för registrering av nervceller i det centrala komplexet (CC) i kackerlacka, Blaberus discoidalis, eftersom insekten promenader i en arena och handlar om föremål som orsakar den för att slå runt, tunnel under eller klättra över hinder. Trådarna kan även vara kopplad till en stimulator för att framkalla aktiviteten i den omgivande neuropil med åtföljande beteendeförändringar.

Under det senaste årtiondet stor uppmärksamhet har riktats mot de roller som olika hjärnregioner i att kontrollera insekts beteende. Mycket av detta fokus har riktats mot mittlinjen i hjärnan neuropils som kollektivt hänvisas till som den centrala komplex (CC). Framsteg har gjorts som ett resultat av många sorter av metoder riktade frågor om den roll som CC i beteendet. Dessa tekniker varierar från neurogenetiska manipulationer, främst i Drosophila, tillsammans med behavimuntlig analys 1-3, till elektrofysiologiska tekniker som övervakar neural aktivitet inom CC och försöka relatera denna verksamhet till beteendemässigt relevanta parametrar.

Elektrofysiologiska tekniker är intracellulära inspelning från enskilda identifierade nervceller 4-9 och extracellulära inspelning, ofta med flerkanalssonder 10,11. Dessa två tekniker är kostnadsfri. Intracellulär inspelning med skarpa elektroder eller hela cell patch ger mycket detaljerade uppgifter om identifierade nervceller, men är begränsad till en eller två celler på en gång, med begränsad, eller ingen rörelse, och kan bibehållas under relativt korta tidsperioder. Cellulära inspelningar kan enkelt ställa in, inte kräver återhållsamhet, och kan upprätthållas i timmar. Med flerkana tetrodes och kluster skärning, kan relativt stora populationer av nervceller analyseras samtidigt 9,12. Medan helcells patch har framgångsrikt använts i uppbundna insekter 13, känner vi att det också finns ett behov av teknik som tillåter oss att spela in neural aktivitet i hjärnan under lång tid i fritt bete sig insekter som de behandlar hinder för rörelse framåt.

Behovet av att spela in som insekts rör sig och studsar upp och ner drivit oss mot extracellulära inspelningsmetoder. Vi har haft god framgång inspelning i återhållsamma beredningar av kommersiellt tillgängliga 16 kanaler kisel sonder 11, men den lilla storleken av även stora kackerlackor innebär att prober måste vara monterade utanför kroppen. Det, i kombination med delikatess av sond pinnar, gjorde dem olämpliga för en fri vandring förberedelse. I två tidigare projekt använde vi buntar av fina trådar som bildar en tetrode att åstadkomma liknande inspelnings egenskaper men i en mer robust arrangemang. Dessa tetrode buntar tillät oss att spela in från bundna kackerlackor end relatera CC-enheten aktivitet på förändringar i gånghastighet 14 och vrida beteende till följd av antenn kontakt med en stav 10.

Som användbara eftersom dessa tjudrade förberedelser har varit och kommer att fortsätta att vara, de presentera några begränsningar. Först de beteenden som insekten kan utföra är begränsade till ett plan. Det vill säga, vi kan lätt framkalla förändringar i gånghastighet eller svarvning, men klättring och tunnel åtgärder inte var möjliga, åtminstone med den typiska tjuder arrangemanget. För det andra, våra bundna preparat "open loop". Det vill säga, att de inte tillåter normal rörelse relaterad återkoppling till systemet. Således, eftersom kackerlacka aktiverat vår tjuder, dess visuella värld ändrades inte i enlighet därmed. Det är möjligt att bygga slutna slingförankringssystem för att införa denna typ av feedback. De är dock begränsad av komplexiteten av programmering och hårdvara för den simulerade visuell miljö. Nevertheless, ansåg vi att vi kunde förbättra våra befintliga uppbundna inspelningsmetoder genom att spela in från djuret som det gick fritt i en arena eller spår och stött på föremål som det skulle i sin naturliga omgivning.

Även trådlösa system för registrering av hjärnaktivitet 15 skulle vara perfekt, dagens system har begränsningar i antalet inspelningskanaler, tid för datainsamling, batteritid och vikt. Vi därför valt att försöka anpassa vårt bundna registreringssystem för användning i fritt rörliga förberedelser. Såsom bättre trådlösa system blir tillgängliga, kan denna teknik lätt anpassas till sådana anordningar. Systemet som beskrivs i denna artikel är låg vikt, fungerar mycket bra och verkar ha liten skadlig effekt på kackerlacka beteende. Med en billig höghastighetskamera och kluster skärande programvara, kan aktiviteten i enskilda hjärnans nervceller vara relaterade till rörelse. Här beskriver vi den förberederation av tetrode ledningar och deras implantering i insektens hjärna samt inspelningstekniker för elektrisk aktivitet och rörelse och hur dessa data kan sammanföras för efterföljande analys.

Protocol

1. Beredning tetrodens Wires Dra ut en mycket tunn nikromtråd (12 ^ m diameter, PAC beläggning) av ca 1,1 m längd. Fäst en tejp tagg till varje ände. Häng upp tråden över en horisontell gängad stång så att de två ändarna är på samma höjd nära bänk. Upprepa steg 1.1 för en andra tråd, vilket gör ytterligare två ändar för totalt 4, och placera den bredvid den första tråden (ca 1 cm i mellan). Klistra fast de fyra ändarna tillsammans med ett band tagg och bifoga tag…

Representative Results

Vi spelade in den neural aktivitet av 50 enheter från CC i 27 förberedelser för promenader experiment. För 15 av dessa preparat (23 enheter), var klättring experiment också utförts. Individuella enheter benämns efter förberedelse och enhetsnummer (t.ex. enhet 1-2 indikerar beredning 1, enhet 2). Ögonblicksbilder från videon av en klättring studie visas i Figur 4. Hela videon finns i kompletterande Video 1 (Ljudet från enheten 1-2). Insp…

Discussion

Medan tidigare elektrofysiologiska studier på CC eller andra regioner av insekten hjärnan har gett oss insikter i den centrala kontrollen av beteende, de flesta av dem utfördes i antingen återhållsamma förberedelser 9,11 eller uppbundna kära 10,14. Som ett resultat kan djurets sensorisk upplevelse och fysiologiska tillstånd vara mycket olika dem i en naturlig miljö. Vidare är de beteendemässiga uppgifter, att djuret kan utföra är begränsade till ett plan i enlighet med dessa situation…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar Nick Kathman för förslag och hjälpa till att förbereda för manuskriptet. Denna teknik har utvecklats i samband med arbete som stöds av AFOSR enligt bidrags FA9550-10-1-0054 och National Science Foundation i Grant No IOS-1.120.305 till RER.

Materials

Nichrome wire  Sandvik Heating Technology Kanthal RO-800 Use for tetrode
Biomedical polyethylene tubing A-M Systems 800700 Use for tetrode tubing
Lynx-8 Neuralynx Use for multi-unit recording
Cheetah 32 Neuralynx Use for multi-unit recording
High speed camera Basler A602f Use fir video recording for walking experiments
High speed camera Casio EX-FC150  Use for video recording for climbing experiments
WINanalyze Winanalyze version 1.4 3D Use for video tracking 
Matlab MathWorks MATLAB R2012b Use for TTL pulse generation and off-line data analysis

Referenzen

  1. Strauss, R. The central complex and the genetic dissection of locomotor behaviour. Curr. Opin. Neurobiol. 12, 633-638 (2002).
  2. Pick, S., Strauss, R. Goal-driven behavioral adaptations in gap-climbing Drosophila. Curr. Biol. 15, 1473-1478 (2005).
  3. Triphan, T., Poeck, B., Neuser, K., Strauss, R. Visual targeting of motor actions in climbing Drosophila. Curr. Biol. 20, 663-668 (2010).
  4. Heinze, S., Gotthardt, S., Homberg, U. Transformation of polarized light information in the central complex of the locust. J. Neuorosci. 29, 11783-11793 (2009).
  5. Heinze, S., Homberg, U. Maplike representation of celestial E-vector orientations in the brain of an insect. Science. 315, 995-997 (2007).
  6. Heinze, S., Homberg, U. Neuroarchitecture of the central complex of the desert locust: Intrinsic and columnar neurons. J. Comp. Neurol. 511, 454-478 (2008).
  7. Heinze, S., Homberg, U. Linking the input to the output: new sets of neurons complement the polarization vision network in the locust central complex. J. Neurosci. 29, 4911-4921 (2009).
  8. Heinze, S., Reppert, S. M. Sun compass integration of skylight cues in migratory monarch butterflies. Neuron. 69, 345-358 (2011).
  9. Brill, M. F., et al. Parallel processing via a dual olfactory pathway in the honeybee. J Neurosci. 33, 2443-2456 (2013).
  10. Guo, P., Ritzmann, R. E. Neural activity in the central complex of the cockroach brain is linked to turning behaviors. J. Exp. Biol. 216, 992-1002 (2013).
  11. Ritzmann, R. E., Ridgel, A. L., Pollack, A. J. Multi-unit recording of antennal mechanosensitive units in the central complex of the cockroach, Blaberus discoidalis. J. Comp. Physiol. A. 194, 341-360 (2008).
  12. Buzsáki, G. Large-scale recording of neuronal ensembles. Nature Neurosci. 7.5, 446-445 (2004).
  13. Huston, S. J., Jayaraman, V. Studying sensorimotor integration in insects. Curr. Opin. Neurobiol. 21, 527-534 (2011).
  14. Bender, J. A., Pollack, A. J., Ritzmann, R. E. Neural activity in the central complex of the insect brain is linked to locomotor changes. Curr. Biol. 20, 921-926 (2010).
  15. Harrison, R. R., et al. Wireless Neural/EMG telemetry systems for small freely moving animals. IEEE. 5, 103-111 (2011).
  16. Straw, A. D., Dickinson, M. H. Motmot, an open-source toolkit for realtime video acquisition and analysis. Source Code Biol. Med. 4, 5 (2009).
  17. Tyrer, N. M., Shaw, M. K., Altman, J. S., Strausfeld, N. J., Miller, T. A. . Neuroanatomical Techniques. Insect Nervous System. , (1980).
  18. Daly, K., Wright, G., Smith, B. Molecular features of odorants systematically influence slow temporal responses across clusters of coordinated antennal lobe units in the moth, Manduca sexta. J. Neurophsyiol. 92, 236-254 (2004).
  19. Branson, K., Robie, A., Bender, J., Perona, P., Dickinson, M. High-throughput ethomics in large groups of Drosophila. Nat Methods. 6, 451-457 (2009).
check_url/de/51337?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Guo, P., Pollack, A. J., Varga, A. G., Martin, J. P., Ritzmann, R. E. Extracellular Wire Tetrode Recording in Brain of Freely Walking Insects. J. Vis. Exp. (86), e51337, doi:10.3791/51337 (2014).

View Video