Summary

Cirugía estereotáctica de roedores y mejoras del bienestar de los animales de resultados para la revista Behavioral Neuroscience

Published: January 30, 2012
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Summary

Cirugía estereotáxica en roedores permite la administración dirigida de fármacos o estimulación eléctrica y las grabaciones en despertar, comportándose animales. En este video de presentación que mostrará los últimos refinamientos de procedimiento para este procedimiento desde hace mucho tiempo que la tasa de éxito mejora la supervivencia y reduce post-quirúrgico de pérdida de peso.

Abstract

Cirugía estereotáxica para la implantación de cánulas en regiones específicas del cerebro durante muchas décadas ha sido una técnica experimental muy exitoso para investigar los efectos de los neurotransmisores a nivel local manipulado y vías de señalización en animales despiertos, de comportarse. Por otra parte, la implantación estereotáxica de electrodos para la estimulación electrofisiológica y estudios de grabación ha sido fundamental para nuestra comprensión actual de la neuroplasticidad del cerebro y las redes de comportarse animales. Conocimiento cada vez mayor sobre la optimización de las técnicas quirúrgicas en los roedores 1-4, sensibilización del público sobre temas de bienestar animal y la estricta legislación (por ejemplo, la Directiva 2010 de la Unión Europea sobre el uso de animales de laboratorio, 5) nos ha llevado a perfeccionar los procedimientos quirúrgicos, especialmente con respecto a la aplicación de nuevos procedimientos para la administración de suplementos de oxígeno y la monitorización continua de oxigenación de la sangre y los niveles de frecuencia cardíaca durante la cirugía, así comola introducción de un protocolo estandarizado para la atención postquirúrgica. Nuestras observaciones indican que estas modificaciones dio lugar a una mayor tasa de supervivencia y una mejora en la condición general de los animales después de la cirugía (por ejemplo, pérdida de peso y menos un animal más activo). Esta presentación en video se muestran los procedimientos generales involucrados en este tipo de cirugía estereotáxica, con especial atención a nuestras varias modificaciones. Vamos a ilustrar estos procedimientos quirúrgicos en ratas, pero también es posible llevar a cabo este tipo de cirugía en los ratones y otros pequeños animales de laboratorio mediante el uso de adaptadores especiales para el aparato estereotáxico 6.

Protocol

Nota: Las técnicas de antisépticos deben ser empleadas durante todo el procedimiento. Todos los instrumentos y materiales (con puntas de algodón, gasas, etc) que serán utilizados durante la cirugía debe ser esterilizado en autoclave. Una máscara quirúrgica, sombrero de pelo y guantes estériles deben ser usados. El área de trabajo y el aparato estereotáxico deben ser limpiados a fondo y desinfectar con una solución de etanol al 70%. 1. Pre-quirúrgicos La instalación de…

Discussion

El objetivo principal de esta presentación en video es familiarizar a los neurólogos del comportamiento con los principios básicos de la cirugía estereotáxica. Los investigadores que ya están realizando la cirugía estereotáxica también podrían beneficiarse de este vídeo y considerar algunas de las mejoras de procedimiento para el uso en su propio laboratorio. Un conocimiento cada vez mayor sobre la optimización de las técnicas quirúrgicas 1-3, el desarrollo de nuevos anestésicos y analgésicos …

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores agradecen al Dr. Peter Gerrits de los dibujos utilizados en el video.

Materials

Name of the reagent Company
Alcohol 70% VWR
Antisedan (atipamezole) Orion
Atropine sulfate 0,5 Pharmachemie BV
Bulldog haemostatic clamp Aesculap
Cannulas Component Supply Co.
Chlorhexidine 0.5% AppepPharma
Cleaning powder Alconox
Cotton sticks Hartmann BV
Dexdomitor (dexmedetomidine) Orion
Drill Dremel 8000
Duratears Z Alcon
Durogrip Naaldvoerder converse 130mm Aesculap
Durotip Fijne schaar ret.sp/st 110 mm Aesculap
Gauze Medicomp (5×5)
Heating pad Harvard Apparatus
Insect pins (stylets) Entosphinx (Czech Republik)
Ketamine 10% (ketamine) Alfasan
Micro-halsted straight tip Aesculap-vet
Molinea Hartmann BV
NaCl 0,9% Baxter
Needles (25G) Terumo
Oximeter Edan Instruments, Inc.
Pentobarbital Pharmacy of the UMCG
Rimadyl Pfizer
Scalpel blade No. 23 Swann Morton
Scalpelholder NR. 4 133 mm Aesculap
Screw driver conventional Hardware Store
Simplex Rapid (dental cement) Kemdent
Skull screws Component Supply Co.
Spatula VWR
Spongestan special Johnson & Johnson
Stereotacts Kopf Instruments
Surgical forceps 100mm Aesculap
Suture material Safil 5/0 Aesculap
Syringe 10 ml Omnifix
Syringe 1ml Terumo
Syringe 5ml Omnifix
Xylocaine (lidocaine/adrenaline) Astra Zeneca

Referenzen

  1. Russell, W. M. S., Burch, R. L. . The Principles of Humane Experimental Technique. , (1959).
  2. Richardson, C. A., Flecknell, P. A. Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress?. Altern. Lab Anim. 33, 119-127 (2005).
  3. Stokes, E. L., Flecknell, P. A., Richardson, C. A. Reported analgesic and anaesthetic administration to rodents undergoing experimental surgical procedures. Lab Anim. 43, 149-154 (2009).
  4. Flecknell, P. A. . Laboratory Animal Anaesthesia – A Practical Introduction for Research Workers and Technicians. , (2009).
  5. . DIRECTIVE 2010/63/EU OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of the European Union. , (2010).
  6. Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable Stereotaxic Surgery in Rodents. J. Vis. Exp. (20), e880-e880 (2008).
  7. Hellebrekers, L. J., Booij, L. H. D. J., Flecknell, P. A., Van Zutphen, L. F. M., Baumans, V., Beynen, A. C. Anaesthesia, analgesia and euthanasia. Principles of Laboratory Animal Science. , 277-311 (2001).
  8. Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos. J. Vis. Exp. (6), e236-e236 (2007).
  9. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1986).
  10. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2007).
  11. Swanson, L. W. . Brain Maps: Structure of the Rat Brain. , (1992).

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Diesen Artikel zitieren
Fornari, R. V., Wichmann, R., Atsak, P., Atucha, E., Barsegyan, A., Beldjoud, H., Messanvi, F., Thuring, C. M., Roozendaal, B. Rodent Stereotaxic Surgery and Animal Welfare Outcome Improvements for Behavioral Neuroscience. J. Vis. Exp. (59), e3528, doi:10.3791/3528 (2012).

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