Summary

מיקרודיסקציה ומיקרוסקופ אלקטרונים סורק הר שלם הדמיה של מקלעת כורואיד עכבר

Published: December 16, 2022
doi:

Summary

מקלעת הכורואיד (CP), רקמה שלא נחקרה מספיק במדעי המוח, ממלאת תפקיד מפתח בבריאות ובמחלות של מערכת העצבים המרכזית. פרוטוקול זה מתאר טכניקת מיקרודיסקציה לבידוד CP ושימוש במיקרוסקופ אלקטרונים סורק כדי לקבל מבט כולל על המבנה התאי שלו.

Abstract

מקלעת הכורואיד (CP), מבנה וסקולרי מאוד הבולט לתוך חדרי המוח, היא אחת הרקמות הנחקרות ביותר במדעי המוח. ככל שמתברר יותר ויותר כי מבנה זעיר זה ממלא תפקיד מכריע בבריאות ובמחלות של מערכת העצבים המרכזית (CNS), יש חשיבות עליונה לנתח כראוי את ה- CP מתוך חדרי המוח באופן המאפשר עיבוד במורד הזרם, החל מניתוח פונקציונלי ועד ניתוח מבני. כאן מתואר בידוד של CP עכבר המוח הצידי והרביעי ללא צורך בכלים או ציוד מיוחדים. טכניקת בידוד זו משמרת את הכדאיות, התפקוד והמבנה של תאים בתוך CP. בשל כלי הדם הגבוהים שלו, ניתן לדמיין את CP צף בתוך חללי החדרים במוח באמצעות מיקרוסקופ דו-עיני. עם זאת, זילוח קרום הלב הדרוש לניתוח במורד הזרם יכול לסבך את זיהוי רקמת CP. בהתאם לשלבי העיבוד הנוספים (למשל, RNA וניתוח חלבונים), ניתן לפתור זאת על ידי הדמיה של CP באמצעות זילוח קרום הלב עם ברומופנול כחול. לאחר בידוד, CP יכול להיות מעובד באמצעות מספר טכניקות, כולל RNA, חלבון, או ניתוח תא בודד, כדי לקבל הבנה נוספת על הפונקציה של מבנה המוח המיוחד הזה. כאן, מיקרוסקופ אלקטרונים סורק (SEM) על כל הר CP משמש כדי לקבל תצוגה כוללת של המבנה.

Introduction

מחסומים הדוקים מפרידים בין מערכת העצבים המרכזית (CNS) לבין הפריפריה, כולל מחסום הדם-מוח (BBB) ומחסום הדם-מוח השדרתי (CSF). מחסומים אלה מגנים על מערכת העצבים המרכזית מפני עלבונות חיצוניים ומבטיחים מיקרו-סביבה מאוזנת ומבוקרת 1,2,3. בעוד BBB נחקר בהרחבה לאורך זמן, מחסום הדם-CSF הממוקם במקלעת הכורואיד (CP) רק זכה להתעניינות מחקרית גוברת במהלך העשור האחרון. המחסום האחרון הזה נמצא בארבעת חדרי המוח (איור 1A, B), והוא מאופיין על-ידי שכבה אחת של תאי אפיתל מקלעת כורואיד (CPE) המקיפה סטרומה מרכזית, נימים דולפים, פיברובלסטים ואוכלוסיית תאים לימפואידים ומיאלואידים (איור 1C)4,5,6. תאי ה-CPE מחוברים היטב זה לזה על ידי צמתים הדוקים, ובכך מונעים דליפה מנימי הדם המוגנים הבסיסיים לתוך CSF והמוח. בנוסף, ההובלה על פני תאי CPE מווסתת על ידי מספר מערכות הובלה פנימה והחוצה המנהלות את זרם התרכובות המועילות (למשל, חומרים מזינים והורמונים) מהדם ל- CSF ואת זרם המולקולות המזיקות (למשל, פסולת מטבולית, מוליכים עצביים עודפים) בכיוון השני 1,6. כדי להיות מסוגלים להפעיל את פונקציית ההובלה הפעילה שלהם, תאי CPE מכילים מיטוכונדריה רבים בציטופלסמהשלהם 7. יתר על כן, CP הוא המקור העיקרי של CSF ופועל כשומר הסף של המוח על ידי נוכחות של תאים דלקתיים תושב1. בשל מיקומו הייחודי בין הדם למוח, CP נמצא גם במיקום מושלם לביצוע מעקב חיסוני8.

Figure 1
איור 1: סקירה סכמטית של המיקום וההרכב של מקלעת הכורואיד (CP). (A,B) רקמת CP נמצאת בשני החדרים הצדיים, השלישי והרביעי של (A) מוח אנושי ו-(B) מוח עכבר. (C) רקמת ה-CP מורכבת משכבה אחת של תאי אפיתל CPE (CPE) קובואידים המחוברים זה לזה באופן הדוק, המקיפים נימים מוגנים, רקמת חיבור רופפת ותאי לימפה ומיאלואידים, ויוצרת את מחסום נוזל הדם-המוח השדרה (מותאם ושונה מהפניה23). איור שנוצר באמצעות Biorender.com. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

במהלך העשור האחרון, ראיות הולכות וגדלות, כולל מספר דוחות מקבוצת המחקר שלנו, גילו כי CP ממלא תפקיד מרכזי בבריאות ובמחלות 9,10,11,12,13,14,15,16,17,18 . לדוגמה, ידוע כי מחסום הדם-CSF המזדקן מציג שינויים מורפולוגיים, בין היתר, בגרעינים, מיקרוווילי ובקרום המרתף 1,19. בנוסף, בהקשר של מחלת אלצהיימר, שלמות המחסום הכללית נפגעת וכל השינויים הקשורים לגיל נראים בולטים עוד יותר 1,8,20. בנוסף לשינויים מורפולוגיים, התמלול, הפרוטאום וההפרשה של CP משתנים במהלך מחלה 12,21,22,23. לפיכך, ידע מתקדם של CP הוא חיוני כדי להבין טוב יותר את תפקידו במחלות נוירולוגיות ואולי לפתח אסטרטגיות טיפוליות חדשות.

שיטה יעילה למיקרודיסקציה מדויקת של CP מחוץ לחדרי המוח היא הצעד הראשון שלא יסולא בפז כדי לאפשר חקירה נכונה של מבנה המוח הזעיר הזה. בשל אופיו הווסקולרי מאוד (איור 2B), ניתן לזהות את ה-CP שצף בתוך חללי החדרים במוח באמצעות מיקרוסקופ דו-עיני. אולם לעתים קרובות נדרש זילוח טרנסקרדיאלי לניתוח במורד הזרם, מה שמסבך את הזיהוי והבידוד הנכונים של רקמת ה-CP (איור 2C). אם שלבי העיבוד הנוספים מאפשרים (למשל, במקרה של ניתוח רנ”א וחלבונים), ניתן לדמיין את ה-CP באמצעות זילוח טרנסקרדיאלי עם ברומופנול כחול (איור 2A). מספר פרסומים כבר מתארים את בידודו של ה-CP ממוחות של עכברוש24 ועכבר25. כאן מתוארת טכניקת בידוד מיקרודיסקציה כדי לבודד את ה-CP מעכברים בוגרים. חשוב לציין שטכניקת בידוד זו משמרת את הכדאיות, התפקוד והמבנה של התאים בתוך ה-CP. הבידוד של ה-CP הצף בחדרים הרביעי והצידי מתואר כאן. בקיצור, העכברים מורדמים סופנית, ואם יש צורך, מחוררים טרנסקרדילית. עם זאת, יש לציין כי זילוח יכול לפגוע במבנה התאים בתוך CP. כתוצאה מכך, אם יש לנתח את הדגימה באמצעות מיקרוסקופ אלקטרונים תמסורת (TEM), מיקרוסקופ אלקטרונים לסריקת פנים בלוק טורי (SBF-SEM), או קרן יונים ממוקדת SEM (FIB-SEM), אין לבצע זילוח. לאחר מכן, המוח כולו מבודד, ומלקחיים משמשים כדי לחצות את המוח. מכאן, ניתן לזהות ולנתח את ה-CPs הצפים בחדרים הצדיים, בעוד שניתן לבודד את ה-CP מהחדר הרביעי מהצד הקטן של המוח.

Figure 2
איור 2: הדמיה של מקלעת כורואיד החדר הצידית (C-C) הרביעית ו-(D-F) הצידית (CP) לאחר (A,D) זילוח כחול ברומופנול, (B,E) ללא זילוח, ו-(C,F) זילוח עם PBS/הפרין. התמונות מצולמות במיקרוסקופ סטריאו (הגדלה של 8x-32x). אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

ברגע שה-CP מנותח כראוי מחדרי המוח, ניתן ליישם רפרטואר שלם של טכניקות כדי להשיג הבנה נוספת על תפקודו של מבנה זה. לדוגמה, ניתן לבצע ציטומטריית זרימה או ריצוף RNA של תא בודד כדי לכמת ולנתח פנוטיפית את תאי הדלקת החודרים בתנאי מחלה מסוימים26,27. בנוסף להרכב התאי, ניתן לנתח את ההרכב המולקולרי של CP כדי להעריך את נוכחותם של ציטוקינים וכימוקינים באמצעות בדיקת אימונוסורבנט מקושרת אנזימים (ELISA), אימונובלוט, או באמצעות ניתוח סימולטני של ציטוקינים מרובים באמצעות מערך חרוזי ציטוקינים28. יתר על כן, ניתן לבצע ניתוחי שעתוק, כלי דם, היסטולוגיה של תאי מערכת החיסון והפרשה על צמחי CP מנותחיםבמיקרו 29. כאן, מיקרוסקופ אלקטרונים סורק (SEM) על כל הר CP משמש כדי לקבל תצוגה כוללת של מבנה CP. SEM משתמש באלומה של אלקטרונים ממוקדים כדי לסרוק על פני השטח וליצור תמונה של הטופוגרפיה וההרכב של המשטח. מכיוון שאורך הגל של אלקטרונים קטן בהרבה מזה של האור, הרזולוציה של SEM היא בתחום הננומטרי ועדיפה על זו של מיקרוסקופ אור. כתוצאה מכך, מחקרים מורפולוגיים ברמה התת-תאית יכולים להתבצע באמצעות SEM. בקצרה, CP מנותח מועבר מיד לתוך קיבוע המכיל גלוטראלדהיד עבור קיבוע לילה, ואחריו osmication ו uranyl אצטט צביעה. הדגימות מטופלות לאחר מכן בכתם אספרטט עופרת, מיובשות ובסופו של דבר מוטמעות להדמיה.

לפיכך, פרוטוקול זה מאפשר בידוד יעיל של CP מחדרי המוח של העכבר, אשר ניתן לנתח עוד יותר באמצעות מגוון רחב של טכניקות במורד הזרם כדי לחקור את המבנה והתפקוד שלה.

Protocol

כל הניסויים בבעלי חיים המתוארים במחקר זה נערכו על פי החקיקה הלאומית (החוק הבלגי 14/08/1986 ו- 22/12/2003, הצו המלכותי הבלגי 06/04/2010) והחקיקה האירופית (הנחיות האיחוד האירופי 2010/63/EU, 86/609/EEC). כל הניסויים בעכברים ובפרוטוקולים של בעלי חיים אושרו על ידי ועדת האתיקה של אוניברסיטת גנט (מספרי היתרים LA1400091 ו- EC 2017-…

Representative Results

הפרוטוקול המתואר מאפשר בידוד יעיל של CP מהמוח הצידי של העכבר (איור 2A-C) ומהחדר הרביעי (איור 2D-F). לאחר בידוד המוח כולו, מלקחיים משמשים כדי לחצות את המוח ולזהות את CPs צפים בחדרים הצדיים. CP מהחדר הרביעי יכול להיות מבודד מן הצד cer…

Discussion

כאן מתוארת שיטה לבידוד מקלעת הכורואיד (CP) מהחדר הצידי ומהחדר הרביעי במוח עכבר. כל שיטת הרכבה זו של CP מאפשרת ניתוח נוסף באמצעות רפרטואר של טכניקות כדי לקבל תצוגה מלאה של המורפולוגיה של CP, הרכב התא, תעתוק, פרוטאום והפרשה. ניתוחים כאלה חיוניים כדי להשיג הבנה טובה יותר של המבנה המדהים הזה הבולט ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי הקרן הבלגית לחקר האלצהיימר (SAO; מספר פרויקט: 20200032), קרן המחקר פלנדריה (FWO Vlaanderen; מספרי הפרויקט: 1268823N, 11D0520N, 1195021N) וקרן Baillet Latour. אנו מודים ל-VIB BioImaging Core על ההכשרה, התמיכה והגישה לפארק המכשירים.

Materials

26G x 1/2 needle Henke Sass Wolf 4710004512
Aluminium specimen mounts EM Sciences 75220
Cacodylate buffer EM Sciences 11652
Carbon steel surgial blades Swann-Morton 0210 size: 0.45 mm x 12 mm
Carbon adhesive tabs -12 mm EM Sciences 77825-12
Critical point dryer  Bal-Tec  CPD030
Crossbeam 540 Zeiss SEM system
Forceps Fine Science Tools GmbH  91197-00
Glutaraldehyde EM Sciences 16220
Heparin Sigma-Aldrich H-3125
Ismatec Reglo ICC Digital Peristaltic pump 2-channel Metrohm Belgium N.V CPA-7800160
Osmium Tetroxide  EM Sciences 19170
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Phosphate buffered saline (PBS) Lonza BE17-516F
Platinum  Quorum  Q150T ES PBS without Ca++ Mg++ or phenol red; sterile filtered
Sodium pentobarbital Kela NV 514
Specimen Basket Stainless Steel EM Sciences 70190-01
Stemi DV4 Stereo microscope Zeiss
Surgical scissors Fine Science Tools GmbH  91460-11

References

  1. Vandenbroucke, R. E. A hidden epithelial barrier in the brain with a central role in regulating brain homeostasis. Implications for aging. Annals of the American Thoracic Society. 13, 407-410 (2016).
  2. Engelhardt, B., Sorokin, L. The blood-brain and the blood-cerebrospinal fluid barriers: function and dysfunction. Seminars in Immunopathology. 31 (4), 497-511 (2009).
  3. Engelhardt, B., Wolburg-Buchholz, K., Wolburg, H. Involvement of the choroid plexus in central nervous system inflammation. Microscopy Research and Technique. 52 (1), 112-129 (2001).
  4. Engelhardt, B., Vajkoczy, P., Weller, R. O. The movers and shapers in immune privilege of the CNS. Nature Immunology. 18 (2), 123-131 (2017).
  5. De Bock, M., et al. A new angle on blood-CNS interfaces: a role for connexins. FEBS Letters. 588 (8), 1259-1270 (2014).
  6. Strazielle, N., Ghersi-Egea, J. F. Physiology of blood-brain interfaces in relation to brain disposition of small compounds and macromolecules. Molecular Pharmaceutics. 10 (5), 1473-1491 (2013).
  7. Redzic, Z. B., Segal, M. B. The structure of the choroid plexus and the physiology of the choroid plexus epithelium. Advanced Drug Delivery Reviews. 56 (12), 1695-1716 (2004).
  8. Kratzer, I., Ek, J., Stolp, H. The molecular anatomy and functions of the choroid plexus in healthy and diseased brain. Biochimica et Biophysica Acta-Biomembranes. 1862 (11), 183430 (2020).
  9. Demeestere, D., Libert, C., Vandenbroucke, R. E. Clinical implications of leukocyte infiltration at the choroid plexus in (neuro)inflammatory disorders. Drug Discovery Today. 20 (8), 928-941 (2015).
  10. Brkic, M., et al. Amyloid βoligomers disrupt blood-CSF barrier integrity by activating matrix metalloproteinases. Journal of Neuroscience. 35 (37), 12766-12778 (2015).
  11. Vandenbroucke, R. E., et al. Matrix metalloprotease 8-dependent extracellular matrix cleavage at the blood-CSF barrier contributes to lethality during systemic inflammatory diseases. Journal of Neuroscience. 32 (29), 9805-9816 (2012).
  12. Marques, F., et al. The choroid plexus response to a repeated peripheral inflammatory stimulus. BMC Neuroscience. 10, 135 (2009).
  13. Marques, F., et al. The choroid plexus in health and in disease: dialogues into and out of the brain. Neurobiology of Disease. 107, 32-40 (2017).
  14. Lun, M. P., Monuki, E. S., Lehtinen, M. K. Development and functions of the choroid plexus-cerebrospinal fluid system. Nature Reviews Neuroscience. 16 (8), 445-457 (2015).
  15. Spector, R., Keep, R. F., Snodgrass, S. R., Smith, Q. R., Johanson, C. E. A balanced view of choroid plexus structure and function: Focus on adult humans. Experimental Neurology. 267, 78-86 (2015).
  16. Lehtinen, M. K., et al. The choroid plexus and cerebrospinal fluid: emerging roles in development, disease, and therapy. Journal of Neuroscience. 33 (45), 17553-17559 (2013).
  17. Balusu, S., Brkic, M., Libert, C., Vandenbroucke, R. E. The choroid plexus-cerebrospinal fluid interface in Alzheimer’s disease: more than just a barrier. Neural Regeneration Research. 11 (4), 534-537 (2016).
  18. Demeestere, D., Libert, C., Vandenbroucke, R. E. Therapeutic implications of the choroid plexus-cerebrospinal fluid interface in neuropsychiatric disorders. Brain, Behavior, and Immunity. 50, 1-13 (2015).
  19. Simon, M. J., Iliff, J. J. Regulation of cerebrospinal fluid (CSF) flow in neurodegenerative, neurovascular and neuroinflammatory disease. Biochimica et Biophysica Acta-Molecular Basis of Disease. 1862 (3), 442-451 (2016).
  20. Serot, J. M., Zmudka, J., Jouanny, P. A possible role for CSF turnover and choroid plexus in the pathogenesis of late onset Alzheimer’s disease. Journal of Alzheimer’s Disease. 30 (1), 17-26 (2012).
  21. Marques, F., et al. Altered iron metabolism is part of the choroid plexus response to peripheral inflammation. Endocrinology. 150 (6), 2822-2828 (2009).
  22. Thouvenot, E., et al. The proteomic analysis of mouse choroid plexus secretome reveals a high protein secretion capacity of choroidal epithelial cells. Proteomics. 6 (22), 5941-5952 (2006).
  23. Vandendriessche, C., et al. Importance of extracellular vesicle secretion at the blood-cerebrospinal fluid interface in the pathogenesis of Alzheimer’s disease. Acta Neuropathologica Communications. 9 (1), 143 (2021).
  24. Bowyer, J. F., et al. A visual description of the dissection of the cerebral surface vasculature and associated meninges and the choroid plexus from rat brain. Journal of Visualized Experiments. (69), e4285 (2012).
  25. Inoue, T., Narita, K., Nonami, Y., Nakamura, H., Takeda, S. Observation of the ciliary movement of choroid plexus epithelial cells ex vivo. Journal of Visualized Experiments. (101), e52991 (2015).
  26. Dani, N., et al. A cellular and spatial map of the choroid plexus across brain ventricles and ages. Cell. 184 (11), 3056-3074 (2021).
  27. Carloni, S., et al. Identification of a choroid plexus vascular barrier closing during intestinal inflammation. Science. 374 (6566), 439-448 (2021).
  28. Van Hoecke, L., et al. Involvement of the choroid plexus in the pathogenesis of Niemann-Pick disease type. C. Frontiers in Cell Neuroscience. 15, 757482 (2021).
  29. Shipley, F. B., et al. Tracking calcium dynamics and immune surveillance at the choroid plexus blood-cerebrospinal fluid interface. Neuron. 108 (4), 623-639 (2020).
  30. Guerin, C. J., Kremer, A., Borghgraef, P., Lippens, S. Targeted studies using serial block face and focused ion beam scan electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (150), e59480 (2019).
  31. JoVE. Scanning Electron Microscopy (SEM). JoVE Science Education Database. , (2022).
  32. Pauwels, M., et al. Choroid plexus derived extracelular vesicles exhibit brain targeting characteristics). Biomaterials. 290, 121830 (2022).

Play Video

Cite This Article
Van Wonterghem, E., Van Hoecke, L., Van Imschoot, G., Verhaege, D., Burgelman, M., Vandenbroucke, R. E. Microdissection and Whole Mount Scanning Electron Microscopy Visualization of Mouse Choroid Plexus. J. Vis. Exp. (190), e64733, doi:10.3791/64733 (2022).

View Video