Summary

Dator numerisk kontroll Micromilling av en mikrofluidisk akrylanordning med en förskjuten begränsning för magnetiska nanopartikelbaserade immunanalyser

Published: June 23, 2022
doi:

Summary

Mikrofluidik är ett kraftfullt verktyg för utveckling av diagnostiska tester. Men dyr utrustning och material, liksom mödosamma tillverknings- och hanteringstekniker, krävs ofta. Här beskriver vi tillverkningsprotokollet för en akrylmikrofluidisk enhet för magnetiska mikro- och nanopartikelbaserade immunanalyser i en billig och enkel att använda miljö.

Abstract

Mikrofluidiska system har kraftigt förbättrade immunanalystekniker. Många mikrofabrikationstekniker kräver dock specialiserad, dyr eller komplicerad utrustning, vilket gör tillverkningen kostsam och oförenlig med massproduktion, vilket är en av de viktigaste förutsättningarna för att patientnära tester (POCT) ska antas i miljöer med låg resurs. Detta arbete beskriver tillverkningsprocessen för en akryl (polymetylmetakrylat, PMMA) -enhet för nanopartikelkonjugerad enzymatisk immunanalystestning med hjälp av datorns numeriska kontroll (CNC) mikrofräsningsteknik. Funktionen hos den mikrofluidiska anordningen visas genom att utföra en immunanalys för att detektera en kommersiell antikropp med användning av lysozym som ett modellantigen konjugerat till 100 nm magnetiska nanopartiklar. Denna enhet integrerar en fysisk förskjuten begränsning på endast 5 μm i höjd, som används för att fånga magnetiska mikropartiklar som utgör en magnetisk fälla genom att placera en extern magnet. På detta sätt är den magnetiska kraften på immunstödet hos konjugerade nanopartiklar tillräcklig för att fånga dem och motstå flödesmotstånd. Denna mikrofluidiska anordning är särskilt lämplig för billig massproduktion utan förlust av precision för immunanalysprestanda.

Introduction

Under de senaste åren har mikrofluidik spelat en viktig roll i immunanalystekniker1. Miniatyriseringsteknik har många enastående fördelar jämfört med traditionella immunanalyser, såsom minskad prov- och reagensförbrukning, kortare inkubationstider, effektivt lösningsutbyte och högre integration och automatisering2.

Dessutom minskar mikrofluidiska system i immunanalyser, i kombination med magnetiska nanopartiklar som immunstöd, avsevärt inkubationstiderna och uppnår hög detektionskänslighet på grund av det ökade yt-till-volym-förhållandet3. Partiklarnas bruna rörelse förbättrar reaktionskinetiken under bildandet av antigen-antikroppskomplexet 4,5. Dessutom ger nanopartiklarnas magnetiska egenskaper mångsidigheten att integreras i olika mikrofluidiska enhetskonfigurationer, vilket gör dem till en idealisk kandidat för signalering och molekylfångst i miniatyriserade biosensingsystem på chip5. Magnetiska krafter är emellertid betydligt svagare än dragkrafter på nanometerskalan på grund av det höga förhållandet mellan yta och volym6. Därför kan det vara utmanande att fånga nanopartiklar för viktiga immunanalyssteg som tvätt och detektion, och en konventionell magnet är otillräcklig4.

Ett effektivt sätt att manipulera nanopartiklarna är användningen av en mikrofluidisk magnetisk fälla bildad av järnmikropartiklar, som är förpackade i en mikrofluidisk struktur3. Därför, när en extern magnet närmar sig, skapas en komplex interaktion inom det magnetiserade porösa mediet mellan magnet- och flödeskrafterna. Den magnetiska kraften som verkar på nanopartiklarna är tillräckligt stark för att fånga dem och motstå flödesmotstånd 3,4,7. Detta tillvägagångssätt kräver mikrofabrikationstekniker som uppnår upplösningar i storleksordningen några mikrometer för att generera mikrometriska strukturer som behåller mikropartiklarna.

Nuvarande mikrofabrikationstekniker möjliggör högupplöst tillverkning av strukturer från några mikron till hundratals nanometer8. Många av dessa tekniker kräver dock specialiserad, dyr eller komplicerad utrustning. En av de största svårigheterna är kravet på ett renrum för formtillverkning, vilket fortfarande är dyrt och tidskrävande 8,9. Nyligen har mikrofluidiska ingenjörer övervunnit denna nackdel genom att utveckla en mängd alternativa tillverkningsmetoder, med olika fördelar som minskade kostnader, snabbare handläggningstider, billigare material och verktyg och ökad funktionalitet8. På detta sätt medförde utvecklingen av nya mikrofabrikationstekniker billiga, icke-renrumsmetoder som uppnår upplösningar så låga som 10 μm8. Mönstring kan användas direkt på ett substrat utan att generera ett dyrt formmönster, vilket undviker en tidskrävande process. Direkta tillverkningsmetoder inkluderar CNC-fräsning, laserablation och direkt litografi8. Alla dessa metoder är lämpliga för att producera kanaler med hög aspektförhållande i ett brett spektrum av material, oavsett hårdhet9, vilket möjliggör nya och fördelaktiga geometrier, fysiska beteenden och kvaliteter i mikrofluidiska enheter8.

CNC-mikrofräsning skapar strukturer i mikroskala med hjälp av skärverktyg som tar bort bulkmaterial från ett substrat och är en effektiv tillverkningsmetod för mikrofluidiska enheter10,11. Mikrofräsningstekniken kan vara användbar i mikrofluidiska applikationer för att skapa mikrokanaler och funktioner direkt på arbetsytan, vilket ger en viktig fördel: ett arbetsstycke kan tillverkas på kort tid (mindre än 30 minuter), vilket avsevärt minskar handläggningstiden från design till prototyp12. Dessutom gör den stora tillgången på skärtillbehör av olika material, storlekar och former CNC-fräsmaskiner till ett lämpligt verktyg som har möjliggjort tillverkning av olika funktioner i många typer av billiga engångsmaterial13.

Bland alla material som vanligtvis används vid mikrofräsning är termoplaster fortfarande ett ledande val på grund av deras många gynnsamma egenskaper och kompatibilitet med biologiska tillämpningar10,14. Termoplaster är ett attraktivt substrat för mikrofluidiska system på grund av deras betydande fördelar för att utveckla billiga engångsanalyssystem9. Dessutom är dessa material mycket mottagliga för tillverkningsprocesser med hög volym, vilket gör dem lämpliga för kommersialisering och massproduktion. Av dessa skäl har termoplaster som PMMA ansetts vara pålitliga och robusta material sedan de första åren av mikrofluidik10. Olika protokoll har beskrivits för att tillverka slutna kanaler i termoplaster, såsom lösningsmedelsbindning15, värmebindning 16 och ultraviolett (UV) / ozonytbehandlingsbindning17.

I många fall är positioneringsupplösningen som uppnås med konventionella mikrofräsmaskiner inte tillräcklig för vissa mikrofluidiska applikationer som kräver strukturer mindre än 10 μm. High-end micromilling har tillräckligt med upplösning. Tyvärr, på grund av höga priser, är dess användning begränsad till en handfull användare12. Tidigare rapporterade vår forskargrupp tillverkning och manipulation av ett billigt verktyg som möjliggör bearbetning av strukturer på mindre än 10 μm, vilket övervinner upplösningen hos konventionella fräsmaskiner12. Fixturen är en plattform tillverkad av 3D-utskrift med enkel elektronik, innehållande tre piezoelektriska ställdon. Ytan innehåller gångjärnsformade fogar som gör att den kan lyftas när de piezoelektriska elementen verkar samtidigt. Z-axelförskjutning kan styras med en upplösning på 500 nm och en noggrannhet på ±1,5 μm12.

Detta dokument presenterar stegen i tillverkningsprocessen för en akrylanordning (PMMA) genom en mikromillingteknik. Spåndesignen består av en huvudkanal 200 μm bred och 200 μm hög och en sidokanal med samma dimensioner för att rensa flödet av reagenserna. I den centrala regionen avbryts kanalen av en fysisk begränsning på endast 5 μm i höjd, tillverkad med den 3D-tryckta piezoelektriska plattformen tillverkad av denna grupp12, för att fånga magnetiska mikropartiklar som utgör en magnetisk fälla för nanopartiklar genom att placera en extern magnet. Vi visar hur den mikrofluidiska anordningen fungerar genom att utföra en immunanalys för att detektera en kommersiell antikropp med hjälp av lysozym som ett modellantigen konjugerat till 100 nm magnetiska nanopartiklar. Denna enhet kombinerar olika funktioner som gör den unik4: användningen av magnetiska nanopartiklar som immunstöd minskar den totala testtiden från timmar till minuter; Användning av ett fluorogent enzym för detektion möjliggör detektionsgränser som är jämförbara med dem för standardenzymbundna immunosorbentanalyser (ELISA). och användningen av en termoplast som tillverkningsmaterial gör den kompatibel med massproduktion, vilket inte var fallet för tidigare mikrofluidiska nanopartiklars magnetiska fällor3, och gör det till en utmärkt kandidat att utveckla POCT.

Protocol

1. Mikrofräsning YtslipningSlå på mikrofräsmaskinen och den piezoelektriska styrenheten. Starta deras respektive kontrollprogramvara12. Välj önskade pinnfräsbitar (200 μm och 800 μm diametrar). Placera dem i lämpligt fack på fräsmaskinen (figur 1). Skär 9 mm x 25 mm rektanglar med 1,3 mm tjock PMMA med 800 μm pinnfräskronan. Fäst en av dessa rektanglar försiktigt med dubbelhäftande tejp på den…

Representative Results

Det var möjligt att upprätta ett mycket reproducerbart tillverkningsprotokoll som förbättrar upplösningen av den konventionella mikromillingtekniken. Med hjälp av detta protokoll uppnås tillverkningen av en kanal så liten som 5 μm i höjd som fungerar som en förskjuten begränsning i en 200 μm hög kanal. Den enkla utformningen av den förskjutna begränsningen fångar järnmikropartiklar med en diameter på 7,5 μm som, när de komprimeras i mikrokanalen, gör det möjligt att skapa en magnetisk fälla när e…

Discussion

En akrylmikrofluidisk anordning för immunanalyser med nanopartiklar som immunstöd tillverkades med hjälp av en mikromillingteknik. Metoden för direkt tillverkning på substratet har fördelen att man undviker användning av en huvudform och den tid och de kostnader som detta innebär. Det är dock begränsat till snabb prototypframställning och tillverkning av enheter med hög volym.

Här använde vi en tidigare rapporterad tillbehörspiezoelektrisk plattform för fräsmaskinen<sup class=…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Conacyt, Mexiko under bidrag 312231 av “Programa de Apoyos para Actividades Científicas, Tecnológicas y de Innovación”, och av AMEXCID och Mexikos utrikesministerium (SRE) under bidrag “Prueba serológica rápida, barata y de alta sensibilidad para SARS-CoV-2”. JAHO tackar Conacyt Mexico för deras doktorandstipendium.

Materials

0.008 Endmill KYOCERA SGS  2204 2FL 0.008×1/8×0.12×1-1/12
0.032 Endmill KYOCERA SGS  2228 2FL 0.032×1/8×0.48×1-1/12
Carbonyl-iron microparticles  Sigma-Aldrich 44890 7 μm 
Chloroform Fermont 6201 Health Hazard: Moderate
Flammability: None
Reactivity: None
Contact Hazard: Moderate 
CMOS camera Moment Teledyne Photometrics Sensor Technology: CMOS
Quantum Efficiency: 73%
Pixel Size: 4.5 µm x 4.5 µm
Supported Interfaces: USB 3.2 Gen 2
Dr Engrave Software Roland DGA Corporation Engraving software to design and create the engraving path on the surface
Extraction hood Unknown Unknown
Flexible Plastic Tubing Tygon AAD04103 ID = 0.020, OD = 0.060
Fluorescence microsope  ZEISS Axio Vert.A1
High Precision Dispense Needle Loctite 98612
Homemade piezoelectric controller application LabView  See reference 12 for more details.
Loctite 495 instant adhesive Henkel 49503 Apply with micropipette tip or dispensing needle 
MagJET Separation Rack thermoscientific 12 x 1.5 mL
Mechanic press Home-made
Milling Machine Roland MDX-50
Piezoelectric platform  Home-made See reference 12
Polymethylmethacrylate – Sheet – PMMA, Acrylic Goodfellow ME303018/1 Thickness: 1.3 mm, Transparency: Clear/Transparent
PVCamTest software Teledyne Photometrics Version 3.10.107  Image acquisition software
Stereo microscope Nikon SMZ 7457
SuperMag Carboxyl Beads Ocean NanoTech KSC0100 100 nm
Syringe pump kd Scientific  KDS200 Can hold up to two syringes
Utrasonic bath Branson 2800
VPanel software  Windows OS Version 1.0.3.0 Software for controlling the micromilling machine

References

  1. Ng, A. H. C., Uddayasankar, U., Wheeler, A. R. Immunoassays in microfluidic systems. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 397 (3), 991-1007 (2010).
  2. Berlanda, S. F., Breitfeld, M., Dietsche, C. L., Dittrich, P. S. Recent advances in microfluidic technology for bioanalysis and diagnostics. Analytical Chemistry. 93 (1), 311-331 (2021).
  3. Teste, B., et al. Microchip integrating magnetic nanoparticles for allergy diagnosis. Lab on a Chip. 11 (24), 4207-4213 (2011).
  4. Guevara-Pantoja, P. E., Sánchez-Domínguez, M., Caballero-Robledo, G. A. Micro-nanoparticles magnetic trap: Toward high sensitivity and rapid microfluidic continuous flow enzyme immunoassay. Biomicrofluidics. 14 (1), 014111 (2020).
  5. Khizar, S., et al. Magnetic nanoparticles in microfluidic and sensing: From transport to detection. Electrophoresis. 41 (13-14), 1206-1224 (2020).
  6. Podaru, G., Chikan, V. CHAPTER 1: Magnetism in nanomaterials: Heat and force from colloidal magnetic particles. Magnetic Nanomaterials: Applications in Catalysis and Life Sciences. , 1-24 (2017).
  7. Reynoso-Hernández, K. B., Guevara-Pantoja, P. E., Caballero-Robledo, G. A. Capture efficiency of magnetic nanoparticles through the compaction effect of a microparticles column. Physical Review E. 104 (2), 024603 (2021).
  8. Gale, B. K., et al. A review of current methods in microfluidic device fabrication and future commercialization prospects. Inventions. 3 (3), 60 (2018).
  9. Liu, K., Fan, Z. H. Thermoplastic microfluidic devices and their applications in protein and DNA analysis. Analyst. 136 (7), 1288-1297 (2011).
  10. Guckenberger, D. J., de Groot, T. E., Wan, A. M. D., Beebe, D. J., Young, E. W. K. Micromilling: A method for ultra-rapid prototyping of plastic microfluidic devices. Lab on a Chip. 15 (11), 2364-2378 (2015).
  11. Guevara-Pantoja, P. E., Jiménez-Valdés, R. J., García-Cordero, J. L., Caballero-Robledo, G. A. Pressure-actuated monolithic acrylic microfluidic valves and pumps. Lab on a Chip. 18 (4), 662-669 (2018).
  12. Guevara-Pantoja, P. E., Chavez-Pineda, O. G., Solis-Serrano, A. M., Garcia-Cordero, J. L., Caballero-Robledo, G. A. An affordable 3D-printed positioner fixture improves the resolution of conventional milling for easy prototyping of acrylic microfluidic devices. Lab on a Chip. 20 (17), 3179-3186 (2020).
  13. Friedrich, C. R., Vasile, M. J. Development of the micromilling process for high-aspect-ratio microstructures. Journal of Microelectromechanical Systems. 5 (1), 33-38 (1996).
  14. Malayath, G., Sidpara, A. M., Deb, S. Study of different materials response in micro milling using four edged micro end mill tools. Journal of Manufacturing Processes. 56, 169-179 (2020).
  15. Jiang, J., et al. A single low-cost microfabrication approach for polymethylmethacrylate, polystyrene, polycarbonate and polysulfone based microdevices. RSC Advances. 5 (45), 36036-36043 (2015).
  16. Sun, Y., Kwok, Y. C., Nguyen, N. T. Low-pressure, high-temperature thermal bonding of polymeric microfluidic devices and their applications for electrophoretic separation. Journal of Micromechanics and Microengineering. 16 (8), 1681-1688 (2006).
  17. Tsao, C. W., Hromada, L., Liu, J., Kumar, P., DeVoe, D. L. Low temperature bonding of PMMA and COC microfluidic substrates using UV/ozone surface treatment. Lab on a Chip. 7 (4), 499-505 (2007).
  18. Bamshad, A., Nikfarjam, A., Khaleghi, H. A new simple and fast thermally-solvent assisted method to bond PMMA-PMMA in micro-fluidics devices. Journal of Micromechanics and Microengineering. 26 (6), 065017 (2016).
  19. Ogilvie, I. R. G., et al. Reduction of surface roughness for optical quality microfluidic devices in PMMA and COC. Journal of Micromechanics and Microengineering. 20 (6), 065016 (2010).

Play Video

Cite This Article
Hernández-Ortiz, J. A., Guevara-Pantoja, P. E., Andrade-Medina, M., Carrillo-Tripp, M., Caballero-Robledo, G. A. Computer Numerical Control Micromilling of a Microfluidic Acrylic Device with a Staggered Restriction for Magnetic Nanoparticle-Based Immunoassays. J. Vis. Exp. (184), e63899, doi:10.3791/63899 (2022).

View Video