Här beskrivs fyra metoder för att generera testikelorganoider från primära neonatal murin testikelceller dvs, extracellulära matris (ECM) och ECM-fria 2D och 3D kultur miljöer. Dessa tekniker har flera forskningsapplikationer och är särskilt användbara för att studera testikelutveckling och fysiologi in vitro.
Testikelorganoider ger ett verktyg för att studera testikelutveckling, spermatogenes, och endokrinologi in vitro. Flera metoder har utvecklats för att kunna skapa testikelorganoider. Många av dessa metoder förlitar sig på extracellulär matris (ECM) för att främja de novo vävnad montering, det finns dock skillnader mellan metoder i fråga om biomimetiska morfologi och funktion av vävnader. Dessutom finns det få direkta jämförelser av publicerade metoder. Här görs en direkt jämförelse genom att studera skillnader i organoid generation protokoll, med förutsatt resultat. Fyra arketypiska generationsmetoder: (1) 2D ECM-fri, (2) 2D ECM, (3) 3D ECM-fri, och (4) 3D ECM kultur beskrivs. Tre primära riktmärken användes för att bedöma testikelorganoid generation. Dessa är cellulära självmontering, införande av större celltyper (Sertoli, Leydig, groddar, och peritubular celler), och lämpligt uppdelade vävnad arkitektur. Av de fyra testade miljöerna genererade 2D ECM- och 3D ECM-fria kulturer organoider med interna morfologier som mest liknar inhemska testiklar, inklusive de novo-delutrymmet av tubular kontra interstitiell celltyper, utveckling av tubuli-liknande-strukturer, och en etablerad långsiktig endokrina funktion. Alla studerade metoder utnyttjas osorterade, primära murine testikelcell suspensioner och används vanligen tillgängliga kultur resurser. Dessa testikelorganoida generationen tekniker ger en mycket tillgänglig och reproducerbar verktygslåda för forskningsinitiativ i testikelorganogenes och fysiologi in vitro.
Testikelorganoider är en banbrytande teknik för att studera testikelutveckling, spermatogenes, och fysiologi in vitro1,2,3,4. Flera metoder har utforskats för organoid generation; dessa inkluderar en mängd olika extracellulära matrissystem (ECM) och ECM-fria odlingssystem, i både tvådimensionella (2D) och tredimensionella (3D) orienteringar. Olika generationsmetoder kan främja distinkta cellulära monteringsstrategier; detta resulterar i en hög nivå av morfologiska och funktionella variabilitet mellan publicerade organoidmodeller. Syftet med denna artikel är att diskutera det aktuella läget för in vitro testikelmodeller, och att fungera som en mall för framtida utredare, när man utformar testikelorganoida experiment. Inom den föreliggande studien definieras fyra olika kultursystems arketyper och karakteriseras i experimentell process och biologiskt utfall. Dessa inkluderar: 2D ECM-Free, 2D ECM, 3D ECM-Free, och 3D ECM-odlingsmetoder. De strategier som presenteras häri är avsedda att vara enkla, tillgängliga och mycket reproducerbara mellan olika laboratorier och forskargrupper.
Historiskt för testisen, beteckningen “in vitro”, har använts för flera olika odlingsmetoder av testikelvävnader och celler. Dessa inkluderar organotypisk vävnad/organ odling metoder (dvs. explant kultur)5, isolerade seminiferous tubule kultur6, testikelcellsodling7, och metoder för de novo vävnad morphogenesis (dvs, biologiska konstruktioner och organoider)1. De första undersökningarna av in vitro-spermatogenes utfördes för ungefär 100 år sedan, med kulturen av kanintestis explants i 19208, och senare i 1937 med mus explants9. Inom dessa inledande experiment spermatogonia observerades till stor del urarta under den första veckan av kultur, även om vissa meiotically differentiera celler identifierades. Påminner om dessa historiska rapporter, testis explant kultur återupplivades och optimerades 2011 för att bli en genomförbar teknik för att studera testis10. Sedan 2011, explant kultur har producerat fertilitet kompetent spermie i flera rapporter11,12,13. Men på grund av explant kulturens beroende av redan existerande inhemska testis tubuli, dessa senaste framsteg är mer exakt beskrivs som exempel på “ex vivo” testikelfunktion och spermatogenes, vävnadsfunktion som bibehölls eller återupptogs vid avlägsnande från en organism kropp. Trots dess prevalens i litteraturen, långsiktiga könsceller underhåll och differentiering inom testikel explants är utmanande att replikera14,15,16,17,18, särskilt över tidsramar tillräckligt länge för att fullt ut observera in vitro spermatogenes (~ 35 dagar i möss19 och 74 hos människor20). Det är spännande att inse att många av de utmaningar som upplevdes för 100 år sedan, fortfarande upplevs inom ex vivo spermatogenes idag.
Annorlunda än ex vivo tillvägagångssätt, testikelorganoider är de novo monterade mikrotissues genereras helt in vitro från cellulära källor (dvs. primära testikelceller). Testikelorganoider ger en kreativ strategi för att kringgå fältets historiska tillit till redan existerande inhemska vävnad, och att rekapitulera testikelbiologi helt in vitro. Det finns flera krav som delas av de flesta organoid vävnadsmodeller; dessa inkluderar (1) in vivo-mimetic vävnad morfologi eller arkitektur, (2) flera större celltyper av den representerade vävnaden, (3) självmontering eller självorganisation i sin generation, och (4) förmågan att simulera en viss nivå av den representerade vävnadens funktion och fysiologi21,22,23,24. För testierna kan detta fångas upp i fyra större kännetecken: (1) införandet av större testikelcellstyper, groddar, Sertoli, Leydig, peritubular och andra interstitialceller, (2) cell-directed tissue assembly, (3) lämpligt-compartmentalized celltyper i separata tubular fack (könsceller och Sertoli) och interstitial regioner (alla andra celltyper), och (4) någon grad av vävnad funktion (t.ex., reproduktiv hormonsekretion eller vävnad svar, och könsceller underhåll och differentiering). Med tanke på de historiska utmaningarna i att upprätthålla könscellsdifferentiering ex vivo och in vitro, rekapitulation av in vivo-mimetic testikelarkitekturer (dvs strukturer som liknar seminiferous tubules) med ytterligare markörer som tyder på simulering av testikelfysiologi (t.ex. endokrina funktion), är prioriterade milstolpar mot att generera organoider som en dag kan upprätthålla i vitro spermaogenes.
Majoriteten av publicerade testikelorganoida metoder dra nytta av kommersiellt tillgängliga ECM (t.ex. kollagen eller egenutvecklade ECM formuleringar)25,26,27 eller custom-sourced ECMs (dvs, decellularized testis ECM-derived hydrogels)28,29,30. Exogen ECM främjar de novo vävnadsbildning genom att tillhandahålla en monterings-stödjande byggnadsställning för vävnadsgenerering. ECM metoder har gett en imponerande nivå av vävnadsbildning, inklusive vissa groddcell närvaro och vävnad-mimetic morfologi25,28. Men de ECM de utnyttjar är inte alltid allmänt tillgängliga (dvs. decellularized ECM-härledda hydrogels), och vissa metoder kräver sofistikerade gel och cell seedning orienteringar (t.ex. 3-lagers lutningar av ECM och 3D-utskrift)25,31,32. Byggnadsställningsfria metoder (t.ex. hängande droppe och nonadherent odlingsplattor)33,34,35 har också genererat robusta och mycket reproducerbara organoider utan behov av ECM-geler eller byggnadsställningar. Men vävnad morfologi av dessa byggnadsställning-fria organoider är ofta olika till in vivo testiklar, och de flesta av dessa rapporter införliva en biokemisk ECM tillsats för att främja vävnadsbildning33,34,36, eller alternativt, förlita sig på centrifugation för påtvingad cell aggregering och packning34, vilket gör dem mindre idealisk för att studera cell-riktad migration och självorganisering.
De fyra organoida generationsmetoderna som presenteras i detta manuskript omfattar både ECM-beroende och oberoende strategier, var och en med hjälp av enkel cellsådd som möjliggör observation av celldriven organoid självmontering. Alla fyra tekniker kan utföras från samma cell suspensioner eller kan använda sig av anpassade och cell-typ berikade populationer. En styrka av dessa metoder är förmågan att observera organoider självmontera i realtid, och att direkt jämföra hur testikelstrukturer själv montera mellan olika kultur mikromiljöer. De fenotypiska skillnaderna mellan dessa fyra odlingsmetoder bör övervägas för deras inverkan på forskningsfrågan eller föremål för prövaren. Varje metod producerar biologiska konstruktioner eller organoider inom 24 h eller mindre. Sammanfattningsvis de metoder som presenteras här ger en verktygslåda av organoid montering tekniker för att studera testikelorganoida församling, vävnad utveckling och testikelfysiologi in vitro.
Med slutförandet av denna organoid generation protokoll, kommer användaren att ha fyra olika kultur tekniker tillgängliga för dem för montering testikelkonstruktioner och organoider i antingen ECM eller ECM-fria miljöer. Viktigt, alla fyra metoder tillåter forskaren att icke-invasivt observera organoid självmontering över tiden genom time-lapse imaging eller videoinspelning, och att noninvasively samla betingade medier för analys av utsöndrade hormoner och cytokiner, utan störande vävnader under kultur. I al…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete finansierades av National Institutes of Health, National Institute of Child Health and Human Development (NICHD) F31 HD089693, National Institute for Environmental Health Sciences / National Center for Advancing Translational Sciences (NIEHS/NCATS) UH3TR001207 och 4UH3ES029073-03, och Thomas J. Watkin’s Memorial Professorship.
Författarna vill tacka Eric W. Roth för deras hjälp med transmissionselektronmikroskopi. Detta arbete använt sig av BioCryo anläggningen i Northwestern University’s NUANCE Center, som har fått stöd från Soft och Hybrid Nanotechnology Experimental (SHyNE) Resource (NSF ECCS-1542205); MRSEC-programmet (NSF DMR-1720139) vid Materials Research Center; internationella institutet för nanoteknik (IIN); och staten Illinois, genom IIN. Det gjorde också använda av CryoCluster utrustning, som har fått stöd från MRI programmet (NSF DMR-1229693). Grafik i figur 1 utformades med hjälp av BioRender.com.
0.22 um Media Sterile Filters | Millipore Sigma | scgpu05re | For sterile filtering media |
3βHSD primary antibody | Cosmo Bio Co | K0607 | Leydig cell marker, 1:500 dilution |
AlexaFluor 568 α-Mouse | Thermo Fisher Scientific | A-21202 | Fluorescence-tagged secondary antibody |
AlexaFluor 568 α-Rabbit | Thermo Fisher Scientific | A10042 | Fluorescence-tagged secondary antibody |
Alpha Minimum Essential Medium | Thermo Fisher Scientific | 11-095-080 | Base of culture media |
Collagenase I | Worthington Bio | LS004197 | For dissociation solution 1 |
Corning Matrigel Membrane Matrix, LDEV-free | Corning | 354234 | Extracellular matrix used for casting 2D and 3D ECM culture gels |
Countess Cell counter | Thermo Fisher Scientific | C10227 | Autmated cell counter (hemacytometer machine) |
Countess Cell Counting Chamber Slides | Thermo Fisher Scientific | C10228 | Hemacytometer slide for use with Countess automated counter |
DDX4 primary antibody | Abcam | 138540 | Spermatogonia marker, 1:500 dilution |
Deoxyribonuclease I (2,280 u/mgDW) | Worthington Bio | LS002140 | For dissociation solution 1 |
DPBS 1X, + CaCl + MgCl | Thermo Fisher Scientific | 14040182 | For reconstituting Hyaluronidase |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline +Ca/+Mg | Thermo Fisher Scientific | 14040117 | PBS |
Embryo Grade H2O | MIllipore Sigma | W1503 | For reconstituting Collagenase I and Dnase I |
Fetal Bovine Serum | Thermo Fisher Scientific | 16000044 | For quencing enzyme dissocation solutions |
Follicle stimulating hormone | Abcam | ab51888 | For long-term organoid culture |
Human chorionic gonadotropin | Millipore Sigma | C1063 | For long-term organoid culture |
Hyaluronidase, from bovine testes | Millipore Sigma | H4272 | For dissociation solution 2 |
Inhibin B Enzyme-linked Immunosorbent Assay | Ansh Labs | AL-107 | Inhibin B ELISA Kit |
KnockOut Serum Replacement | Thermo Fisher Scientific | 10828-028 | Serum source for Basal media |
MicroTissues 3D Petri Dish micro-mold spheroids (24-35, 5×7 array) | Millipore Sigma | Z764051 | For 3D ECM-Free organoid fabrication |
Nunc, Lab Tek II Chamber Slide System, 4-well | Thermo Fisher Scientific | 12-565-7 | For 2D ECM-free, and 2D, 3D ECM culture |
Penicillin/Streptomycin | Thermo Fisher Scientific | 15-140-122 | Antibiotic for media |
Richard-Allan Scientific; Histogel, Specimen processing gel | Thermo Fisher Scientific | HG-4000-012 | For aiding paraffin embedding |
SOX9 primary antibody | Millipore Sigma | AB5535 | Sertoli Marker, 1:500 dilution |
Tedklad Global Mouse Chow (Breeder) | Teklad Global | 2920 | Mouse food without phytoestrogens |
Tedklad Global Mouse Chow (Maintenance) | Teklad Global | 2916 | Mouse food without phytoestrogens |
Testosterone Enzyme-linked Immunosorbent Assay | Calbiotech | TE373S | Testosterone ELISA Kit |
Trypan Blue Solution, 0.4% | Thermo Fisher Scientific | 15250061 | For cell counting |
αSMA primary antibody | Millipore Sigma | A2547 | Peritubular marker, 1:500 dilution |
βCatenin primary antibody | BD Biosciences | 610154 | Sertoli Cytoplasm marker, 1:100 dilution |