Summary

切片中石蜡嵌入组织的切割和漂浮方法

Published: September 05, 2018
doi:

Summary

在这里, 我们提出了一个改进石蜡切片的协议。这种方法结合切割和浮动使用一个简单的恒温室, 以避免转让过程中所需的传统方法。结果表明, 石蜡切片的效率和数量均有显著提高。

Abstract

石蜡嵌入组织切片被广泛应用于组织学和病理学。然而, 这是乏味的。为了改进这种方法, 几家商业公司利用流体水设计了复杂的断面传输系统。为了简化这项技术, 我们创建了一个简单的方法, 使用自制的设备, 结合切割和浮动在一个简单的恒温室;因此, 各部分自动进入水浴在水面上。用常规石蜡切片和所提出的方法进行比较, 对成年小鼠脑、成年小鼠肾脏、胚胎小鼠大脑和成年斑马鱼眼的海马体进行切割。统计分析表明, 改进后的方法节省了时间, 产生了较高的质量剖面。此外, 在短时间内石蜡切片的整个标本是容易的初级操作者。

Introduction

形态学研究在生物研究中具有重要意义。虽然新技术允许研究人员直接从整个组织或有机体观察他们的目标1,2,3, 切割标本成薄切片, 其次是染色, 仍然是主要的方法 fornot 组织形态学, 也可直接在组织中进行蛋白靶向。光镜使用三切片类型: 石蜡, 冷冻和半薄切片。虽然 cryosectioning 是常见的保护组织抗原性, 标本准备是简单的, 保留组织形态学较差, 不适合薄切片4,5。石蜡切片是展示保存完好的形态学最常用的方法。由于试样完全脱水, 并嵌入蜡, 石蜡块可以无限期储存。此外, 石蜡切片产生薄切片, 以改善生物探针进入进一步的实验和减少细胞层叠加在 Z 方向。

然而, 传统的石蜡切片是繁琐的, 需要操作员的技能。石蜡切片经过固定, 脱水, 嵌入, 切割和漂浮。重要的是, 将节带从刀座转移到水浴是必要的, 但对于初级操作者来说是困难的。特别是在干燥的空气中, 节带会由于静电而扭曲, 在温暖的水面上很难展开。为提高切片质量, 在切片刀片通过后, 将所暴露的组织表面湿润, 将蜡块浸泡在冰水中, 或者在切片附近用加湿器提高湿度, 建议67.改进石蜡切片的新方法包括混合石蜡嵌入, cryosectioning8和商业部分转移系统协助9。虽然这些方法部分提高了石蜡切片的速度和质量, 但它们使切片变得更加繁琐, 商业剖面转移系统是昂贵的。

在本协议中, 我们演示如何逐步创建简单, 廉价和灵活的设备, 这可以连接到旋转切片的刀片持有人。该设备由截面通道、水浴和带有温度检测开关的加热器组成。切割后, 大量的断面流进断面通道, 直接进入水浴, 从而自动展开。这提高了石蜡切片的效率, 使该技术更方便。使用这种方法, 更多的成年小鼠海马切片, 成年小鼠肾脏切片, 胚胎15.5 天老 (E15.5) 小鼠脑切片, 和成年斑马鱼眼切片被收获在较少的时间, 并保持更完整的形态。这种方法也可以用于其他组织样品, 需要加速石蜡切片, 同时避免损失的部分区分。

Protocol

这里介绍的所有方法均经南昌大学动物保育委员会批准。 1. 装配设备并连接切片 根据要求设计参数 (补充图 1)。 将参数提交当地工厂生产丙烯酸板。 按顺序装配所有部件: 使用氯仿将7个商业丙烯酸板组合成一个带有截面通道和水浴的水箱 (图 1)。注意: 氯仿在遇到光和氧时会产生有毒物质。?…

Representative Results

改进后的方法增加了完整石蜡切片的数量。我们对成年小鼠海马组织、成年小鼠肾脏、胚胎小鼠大脑和斑马鱼的眼睛进行了新的检测。水被增加到坦克, 并且水温保持在38.0 °c 之间到40.0 °c。在连续制备组织样品后, 切片并与常规切片进行比较。该方法避免了切片丢失, 增加了成年小鼠海马、成年小鼠肾脏、E15.5 鼠脑和成年斑马鱼眼中完整切片的比例 (图 4A</s…

Discussion

为改善石蜡切片形貌, 解决常规石蜡切片过程中的浪费时间问题, 我们建立了一种改进的石蜡切片方法, 结合切割和展开。这种改进的方法依赖于简单的设备, 包括剖面通道, 水浴和加热器与温度检测开关。节带通过剖面通道进入水浴, 并在切割时自动展开。因此, 该方法提高了石蜡切片的质量和效率, 这是通过石蜡切片的成年小鼠海马, 成年小鼠肾脏, E15.5 小鼠的大脑, 和成年斑马鱼眼睛验证。

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Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到了中国国家自然科学基金 (31400936、31460260号赠款) 和江西省自然科学基金 (20171BAB215020) 的支持。我们还感谢南昌大学与伦敦玛丽大学的联合项目支持这项工作。

Materials

Incubator Boekel Scientific 133000-2
Ethanol  Sinopharm Chemical Reagent Co.,Lid 64-17-5
Xylene  Sinopharm Chemical Reagent Co.,Lid 1330-20-7
Paraplast Leica 39601006
Heated Paraffin Embedding Module Leica
Commercial acrylic board
Trichloromethane Sinopharm Chemical Reagent Co.,Lid 67-66-3
Tubular electric heating element(12V 200W)
Temperature controller(12v 120w) Mingsuo XH-W3002
Rotary microtome  Leica
Neutral silicone sealant Link the water channel with the microtome knife holder
Voltage transformer Dearll S-250-12
Disposable blade Accu-Edge 4689
Hematoxylin Baso Diagnostics Inc. BA-4025
Eosin  Baso Diagnostics Inc. BA-4025
Microslide Sail Brand 7105
Neutral balsam Sinopharm Chemical Reagent Co.,Lid 10004160
Coverslip  Citoglas 10212424C
Microscope Carl Zeiss
Hydrochloric acid Xilong Chemical 7647-01-0
Water bath for paraffin sections Leica
HistoCore Arcadia C - Cold Plate Leica
paraffin repellent spray  Thermo Scientific 9990420

References

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Cite This Article
Qin, C., Bai, Y., Zeng, Z., Wang, L., Luo, Z., Wang, S., Zou, S. The Cutting and Floating Method for Paraffin-embedded Tissue for Sectioning. J. Vis. Exp. (139), e58288, doi:10.3791/58288 (2018).

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