Summary

L'analyse de neurovasculaire Rénovation dans Entorhino-hippocampe cultures organotypique de tranche

Published: October 23, 2014
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Summary

Un protocole pour la culture organotypique de tranche entorhino-hippocampique, ce qui permet la reproduction de nombreux aspects de la lésion cérébrale ischémique, est présentée. En étudiant les changements de la neurovasculaire en plus des changements dans les neurones, ce protocole est un outil polyvalent pour étudier les changements plastiques dans le tissu nerveux après une blessure.

Abstract

Lésion cérébrale ischémique est parmi les affections les plus courantes et les plus dévastatrices de compromettre le bon fonctionnement du cerveau et conduit à la persistance des déficits fonctionnels chez les patients atteints souvent. Malgré les efforts de recherche intensifs, il n'y a toujours pas de traitement efficace disponible qui réduit une lésion neuronale et protège les neurones dans les zones ischémiques du secondaire mort retardée. La recherche dans ce domaine implique généralement l'utilisation de modèles animaux élaborés et problématiques. Cultures organotypique Entorhino-hippocampique contestées par manque d'oxygène et de glucose (OGD) sont établis dans des modèles in vitro qui imitent l'ischémie cérébrale. Le nouvel aspect de cette étude est que les modifications des vaisseaux sanguins du cerveau sont étudiés, en plus de modifications neuronales et la réaction à la fois le compartiment et le compartiment neuronal vasculaire peut être comparée et corrélée. Les méthodes présentées dans ce protocole d'élargir considérablement les applications potentielles de la ouganotypic approche de la culture de la tranche. L'induction de l'hypoxie ou OGD seul peut être appliquée par des moyens relativement simples dans des cultures de tranches organotypiques et entraîne des dommages fiable et reproductible dans le tissu neural. Ceci est en contraste frappant avec les expériences sur les animaux complexes et problématiques induisant accident vasculaire cérébral et ischémie in vivo. En élargissant l'analyse pour inclure l'étude de la réaction du système vasculaire pourrait fournir de nouveaux moyens sur la façon de préserver et de restaurer les fonctions cérébrales. L'approche de la culture de la tranche présentée ici pourrait se développer en un outil intéressant et important pour l'étude des lésions cérébrales ischémiques et pourrait être utile pour tester des mesures thérapeutiques potentielles visant à la neuroprotection.

Introduction

Le système nerveux central est particulièrement sensible à une perte ou une réduction de l'oxygène et de glucose alimentation par le système vasculaire. Même une assez courte interruption de l'approvisionnement en sang au cerveau peut provoquer une perte permanente de la fonction des zones du cerveau concernées mènent aux syndromes de temps typiques. En plus de la perte neuronale dans les zones touchées primaires, il existe généralement une perte neuronale retardée supplémentaire à travers des dommages secondaires. Malheureusement, jusqu'à présent, aucun traitement neuroprotecteur pour la réduction de la mort neuronale secondaire était disponible 1. Les efforts de recherche pour étudier les mécanismes de dommages secondaires reposent sur ​​l'utilisation de modèles animaux d'ischémie cérébrale comme l'occlusion de l'artère cérébrale moyenne et diverses techniques d'occlusion thrombotique (pour une revue récente, voir 2). En parallèle, également en raison de limitations d'ordre éthique avec l'utilisation de modèles animaux, la culture organotypique de divers tissus du système nerveux central ont été utilisés qui permettent à l'étudy de réactions neuronales à différents types de blessures 3-5.

Pour l'étude de la réaction neuronale dans des conditions qui imitent les lésions cérébrales ischémiques, le système de modèle de privation d'oxygène et de glucose (OGD) a été développé. Dans ce modèle, les cultures de tranches sont temporairement exposées à un milieu dépourvu de glucose et a été équilibrée avec de l'azote gazeux en l'absence d'oxygène. Avec un tel traitement, il est possible d'induire une lésion neuronale et la perte qui est assez similaire à celui observé après une lésion ischémique in vivo 6, 7. Dans l'hippocampe, ce traitement induit une perte neuronale dans CA1 spécifiquement, mais pas dans l' région CA3 ou le gyrus denté de l'hippocampe. En revanche, l'étude des réactions vasculaires dans des cultures de tranches jusqu'à présent n'a pas été largement engagé. Une raison évidente est l'absence de circulation et de perfusion vaisseau sanguin dans le modèle de culture de la tranche. Cependant, nous avons montré précédemment qu'il est possible de maintenir bvaisseaux Lood du SNC tranche cultures pendant plusieurs jours 8, 9.

L'objectif global de cette méthode est de surveiller non seulement le sort des neurones après les autres ministères mais étendre l'étude sur le sort et le remodelage du système vasculaire qui est une partie importante de la réponse de blessure. Jusqu'à présent, de telles études ont nécessité l'utilisation de l'expérimentation animale (De Jong et al, 1999;. Cavaglia et al, 2001.). Dans le protocole présenté ici, nous allons détailler la façon dont ces études peut être fait dans les cultures organotypique entorhino-hippocampique attaqué ni à l'hypoxie ou par des lésions excitotoxiques suivie d'une analyse des deux réactions de survie et des vaisseaux sanguins neuronales. Ce protocole est basé sur une étude publiée précédemment sur ​​ce sujet 10 et peut être utile pour tout laboratoire s'intéresse aux interactions neurovasculaires dans le SNC.

Protocol

Les expérimentations animales ont été effectuées conformément à la directive du Conseil Communautés européennes du 22 Septembre 2010 (2010/63 / UE) et ont été examinés et autorisés par les autorités suisses. 1 Mise en place de cultures organotypique Entorhino-hippocampiques Préparer organotypiques cultures tranche de entorhino-hippocampique (de EHOSCs) de chiots jour 4 (P4) de souris postnatales utilisant la méthode statique d'incubation 4,11. Ici, ut…

Representative Results

Privation d'oxygène et de glucose hypoxie induisent la mort neuronale et de la réduction d'un vaisseau sanguin en particulier dans la région CA1 de l'hippocampe. OGD ou la privation de l'oxygène seul pendant 15 min ont induit une forte induction de la mort cellulaire comme on le voit par l'iodure de propidium en particulier dans la zone CA1 de l'hippocampe (figure 3) similaire à celle décrite précédemment 7. Avec les marqueurs de visualiser le r…

Discussion

Avec les méthodes présentées ici, les cultures organotypiques d'hippocampe de tranche peuvent être utilisés comme un outil polyvalent pour étudier les changements en matière plastique dans le tissu neuronal après une blessure. Bien que les cultures de tranches organotypiques ont été utilisés dans le passé pour l'étude de réactions neuronales après une ischémie de 6, 7, du nouvel aspect de l'étude simultanée de changements vasculaires améliore considérablement les applications p…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par l'Université de Bâle, Département de la biomédecine, et le Fonds national suisse (31003A_141007). Markus Saxer a fourni un appui technique.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Minimum Essential Medium MEM Gibco 11012-044
Glutamax Gibco 35050-061 stabilized form of L-glutamine
Millicell cell culture inserts Millipore PICM03050
Basal medium Eagle  Gibco 41010-026
Horse serum Gibco 26050-088
Neurobasal medium Gibco 21103-049
B27 supplement Gibco 17504-044
Anaerobic strips Sigma-Aldrich 59886
Propidium iodide solution Sigma-Aldrich P4864
AMPA R&D systems 0169-10
CNQX R&D systems 0190/10
TTX R&D systems 1078/1
polyclonal anti-laminin Sigma-Aldrich L9393 
anti-MAP2 Abcam ab11267
Alexa anti mouse 350 Molecular Probes A11045
Alexa anti mouse 488 Molecular Probes A11001
Alexa anti rabbit 350 Molecular Probes A11046
Alexa anti rabbit 488 Molecular Probes A11008
Statistics software GraphPad Software GraphPad Prism
McIlwain tissue chopper Ted Pella 10180
Hypoxia chamber Billups-Rothenberg MIC-101

References

  1. Turner, R. C., Dodson, S. C., Rosen, C. L., Huber, J. D. The science of cerebral ischemia and the quest for neuroprotection: navigating past failure to future success. J Neurosurg. 118, 1072-1085 (2013).
  2. Bacigaluppi, M., Comi, G., Hermann, D. M. Animal models of ischemic stroke. Part two: modeling cerebral ischemia. Open Neurol J. 4, 34-38 (2010).
  3. Woodhams, P. L., Atkinson, D. J. Regeneration of entorhino-dentate projections in organotypic slice cultures: mode of axonal regrowth and effects of growth factors. Exp Neurol. 140, 68-78 (1996).
  4. Prang, P., Del Turco, D., Kapfhammer, J. P. Regeneration of entorhinal fibers in mouse slice cultures is age dependent and can be stimulated by NT-4, GDNF, and modulators of G-proteins and protein kinase. C. Exp Neurol. 169, 135-147 (2001).
  5. Bonnici, B., Kapfhammer, J. P. Spontaneous regeneration of intrinsic spinal cord axons in a novel spinal cord slice culture model. Eur J Neurosci. 27, 2483-2492 (2008).
  6. Laake, J. H., Haug, F. M., Wieloch, T., Ottersen, O. P. A simple in vitro model of ischemia based on hippocampal slice cultures and propidium iodide fluorescence. Brain Res Brain Res Protoc. 4, 173-184 (1999).
  7. Rytter, A., Cronberg, T., Asztély, F., Nemali, S., Wieloch, T. Mouse hippocampal organotypic tissue cultures exposed to in vitro ‘ischemia’ show selective and delayed CA1 damage that is aggravated by glucose. J Cereb Blood Flow Metab. 23, 23-33 (2003).
  8. Bendfeldt, K., Radojevic, V., Kapfhammer, J., Nitsch, C. Basic fibroblast growth factor modulates density of blood vessels and preserves tight junctions in organotypic cortical cultures of mice: a new in vitro model of the blood-brain barrier. J Neurosci. 27, 3260-3267 (2007).
  9. Camenzind, R. S., et al. Preservation of transendothelial glucose transporter 1 and P-glycoprotein transporters in a cortical slice culture model of the blood-brain barrier. 神经科学. 170, 361-371 (2010).
  10. De Jong, G. I., et al. Cerebral hypoperfusion yields capillary damage in the hippocampal CA1 area that correlates with spatial memory impairment. 神经科学. 91, 203-210 (1999).
  11. Cavaglia, M., et al. Regional variation in brain capillary density and vascular response to ischemia. Brain Res. 910, 81-93 (2001).
  12. Chip, S., Nitsch, C., Wellmann, S., Kapfhammer, J. P. Subfield-specific neurovascular remodeling in the entorhino-hippocampal-organotypic slice culture as a response to oxygen-glucose deprivation and excitotoxic cell death. J Cereb Blood Flow Metab. 33, 508-518 (2013).
  13. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).

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Cite This Article
Chip, S., Zhu, X., Kapfhammer, J. P. The Analysis of Neurovascular Remodeling in Entorhino-hippocampal Organotypic Slice Cultures. J. Vis. Exp. (92), e52023, doi:10.3791/52023 (2014).

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