Данный протокол был разработан для лонгитюдного мониторинга механических свойств ткани нервной пластинки при нейруляции эмбриона цыпленка. Он основан на интеграции микроскопа Бриллюэна и инкубационной системы на сцене, что позволяет получать механическую визуализацию тканей нервной пластинки в эмбрионах цыплят, культивируемых ex ovo .
Закрытие нервной трубки (NTC) является критически важным процессом во время эмбрионального развития. Сбой в этом процессе может привести к дефектам нервной трубки, вызывая врожденные пороки развития или даже смерть. NTC включает в себя ряд механизмов на генетическом, молекулярном и механическом уровнях. Несмотря на то, что механическое регулирование становится все более привлекательной темой в последние годы, оно остается в значительной степени неизученным из-за отсутствия подходящей технологии для проведения 3D-тестирования эмбриональной ткани in situ. В ответ на это мы разработали протокол количественной оценки механических свойств эмбриональной ткани курицы бесконтактным и неинвазивным способом. Это достигается за счет интеграции конфокального микроскопа Бриллюэна с инкубационной системой на сцене. Для исследования механики тканей предварительно культивируемый эмбрион отбирают и переносят в инкубатор на сцене для культивирования ex ovo . Одновременно с помощью микроскопа Бриллюэна с помощью микроскопа Бриллюэна получаются механические изображения ткани нервной пластинки в разные моменты времени. Этот протокол включает в себя подробное описание пробоподготовки, проведения экспериментов по микроскопии Бриллюэна, а также постобработки и анализа данных. Следуя этому протоколу, исследователи могут изучать механическую эволюцию эмбриональной ткани во время развития в продольном направлении.
Дефекты нервной трубки (ДНТ) – это тяжелые врожденные дефекты центральной нервной системы, вызванные сбоями в закрытии нервной трубки (NTC) во время эмбрионального развития1. Этиология ДНТ сложна. Исследования показали, что NTC включает в себя последовательность морфогенетических процессов, включая конвергентное расширение, изгиб нервной пластинки (например, апикальное сужение), поднятие нервной складки и, наконец, адгезию нервной складки. Эти процессы регулируются множественными молекулярно-генетическими механизмами 2,3, и любой сбой в этих процессах может привести к ДНТ 4,5,6. Поскольку появляется все больше доказательств того, что механические сигналы также играют решающую роль во время NTC 3,7,8,9,10,11, и были обнаружены взаимосвязи между генами и механическими сигналами 12,13,14, становится необходимым исследовать биомеханику тканей во время нейруляции.
Для измерения механических свойств эмбриональных тканей было разработано несколько методов, в том числе лазерная абляция (LA)15, рассечение и релаксация тканей (TDR)16,17, микропипеточная аспирация (MA)18, наноиндентирование на основе атомно-силовой микроскопии (АСМ)19, микроинденторы (MI) и микропланшеты (MP)20, микрореология (MR) с оптическим/магнитным пинцетом21,22,23и капельно-капельные датчики24. Существующие методы позволяют измерять механические свойства с пространственным разрешением в диапазоне от субклеточного до тканевого масштаба. Тем не менее, большинство этих методов являются инвазивными, поскольку они требуют контакта с образцом (например, МА, АСМ, МИ и МП), внешнего введения материала (например, МРТ и капельных датчиков) или рассечения тканей (например, LA и TDR). В результате, существующие методы затрудняют мониторинг механической эволюции ткани нервной пластины in situ25. В последнее время реверберационная оптическая когерентная эластография показала перспективность для бесконтактного механического картирования с высоким пространственным разрешением26.
Конфокальная микроскопия Бриллюэна является новым оптическим методом, который позволяет бесконтактно количественно оценивать биомеханику тканей с субклеточным разрешением 27,28,29,30. Микроскопия Бриллюэна основана на принципе спонтанного рассеяния света по Бриллюэну, которое представляет собой взаимодействие между падающим лазерным светом и акустической волной, вызванной тепловыми флуктуациями внутри материала. Следовательно, рассеянный свет испытывает сдвиг частоты, известный как сдвиг Бриллюэна ωR, в соответствии с уравнением31:
(1)
Здесь – показатель преломления материала, λ – длина волны падающего света, M’ – модуль продольного наклона, ρ – плотность массы, θ – угол между падающим и рассеянным светом. Для одного и того же типа биологических материалов отношение показателя преломления и плотности приблизительно постоянно 28,32,33,34,35,36. Таким образом, сдвиг Бриллюэна может быть непосредственно использован для оценки относительных механических изменений в физиологических процессах. Возможность микроскопии Бриллюэна была подтверждена на различных биологических образцах 29,37,38. Недавно была продемонстрирована покадровая механическая визуализация живого эмбриона цыпленка путем объединения микроскопа Бриллюэна с инкубационной системой39 на сцене. Этот протокол содержит подробное описание подготовки образцов, проведения эксперимента, а также постобработки и анализа данных. Мы надеемся, что эти усилия будут способствовать широкому внедрению бесконтактной технологии Бриллюэна для изучения биомеханической регуляции в развитии эмбриона и врожденных дефектов.
На раннее развитие эмбриона легко могут повлиять внешние нарушения. Поэтому при извлечении и переносе проб требуется предельная осторожность. Одной из потенциальных проблем является отслоение эмбриона от фильтровальной бумаги, что может привести к уменьшению вителлиновой мембраны и…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа поддерживается Национальным институтом детского здоровья и развития человека им. Юнис Кеннеди Шрайвер, Национальными институтами здравоохранения (K25HD097288, R21HD112663).
100 mm Petri dish | Fisherbrand | FB0875713 | |
2D motorized stage | Prior Scientific | H117E2 | |
35 mm Petri dish | World Precision Instruments | FD35-100 | |
Brillouin Microscope with on-stage incubator | N/A | N/A | This is a custom-built Brillouin Microscope system based on Ref. 30 |
Chicken eggs | University of Connecticut | N/A | |
CMOS camera | Thorlabs | CS2100M-USB | |
EMCCD camera | Andor | iXon | |
Ethanol | Decon Laboratories, Inc. | #2701 | |
Filter paper | Whatman | 1004-070 | |
Incubator for in ovo culture | GQF Manufacturing Company Inc. | GQF 1502 | |
Ring | Thorlabs | SM1RR | |
Microscope body | Olympus | IX73 | |
NaCl | Sigma-Aldrich | S9888 | |
On-stage incubator | Oko labs | OKO-H301-PRIOR-H117 | |
Parafilm | Bemis | PM-996 | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15070-063 | |
Pipettes | Fisherbrand | 13-711-6M | |
Scissors | Artman instruments | N/A | 3pc Micro Scissors 5 |
Syringe | BD | 305482 | |
Tissue paper | Kimwipes | N/A | |
Tube | Corning | 430052 | |
Tweezers | DR Instruments | N/A | Microdissection Forceps Set |