Özet

Nükleik Asit Oranlarının Hızlı Araştırılması için Optimize Edilmiş Bir Fare Embriyonik Kök Hücre Tabanlı Ters Poli-Transfeksiyon Tekniği

Published: December 08, 2023
doi:

Özet

Mevcut protokol, 2i ve LIF ortamı ile kültür sırasında fare embriyonik kök hücrelerinin ters poli-transfeksiyonu için bir yöntemi açıklamaktadır. Bu yöntem, geleneksel ileri transfeksiyon protokollerinden daha yüksek canlılık ve verimlilik sağlarken, aynı zamanda plazmit oranlarının tek kap optimizasyonunu da sağlar.

Abstract

Göreceli basitliği ve kullanım kolaylığı nedeniyle, memeli hücre hatlarının nükleik asitlerle geçici transfeksiyonu, biyomedikal araştırmalarda bir dayanak noktası haline gelmiştir. Yaygın olarak kullanılan hücre hatlarının çoğu, yapışık iki boyutlu kültürde transfeksiyon için sağlam protokollere sahip olsa da, bu protokoller genellikle daha az çalışılmış hatlara veya atipik, transfekte edilmesi zor morfolojilere sahip olanlara iyi tercüme edilmez. Rejeneratif tıp için yaygın olarak kullanılan bir kültür modeli olan 2i/LIF ortamında büyütülen fare pluripotent kök hücrelerini kullanan bu yöntem, daha yüksek transfeksiyon verimliliği elde edebilen optimize edilmiş, hızlı bir ters transfeksiyon protokolünü ana hatlarıyla belirtir. Bu protokolden yararlanarak, genişletilmiş bir plazmit stokiyometri aralığını incelemek için plazmit dağıtımındaki normalden daha yüksek verimlilikten yararlanılarak üç plazmit poli-transfeksiyonu gerçekleştirilir. Bu ters poli-transfeksiyon protokolü, kullanıcıların plazmit oranlarını birkaç ko-transfeksiyon yerine tek bir kuyuda optimize etmelerini sağlayan tek kap deneysel bir yönteme izin verir. DNA stokiyometrisinin iletilen genetik devrelerin genel işlevi üzerindeki etkisinin hızlı bir şekilde araştırılmasını kolaylaştırarak, bu protokol embriyonik kök hücre transfeksiyonunun süresini ve maliyetini en aza indirir.

Introduction

DNA ve RNA’nın memeli hücrelerine verilmesi, biyomedikal araştırmaların temel direği olarak hizmet eder1. Ekzojen nükleik asitleri (NA) memeli hücrelerine sokmak için yaygın bir yöntem, geçici transfeksiyon 2,3’tür. Bu teknik, NA’nın alıcı hücrelere iletebilen ticari olarak temin edilebilen transfeksiyon reaktifleri ile karıştırılmasına dayanır. Tipik olarak, NA, iki boyutlu bir yüzeye yapışan hücrelerin transfeksiyon kompleksini aldığı ileri transfeksiyon yoluyla iletilir. En yaygın olarak kurulan hücre hatları için ileri transfeksiyon sağlam ve protokoller iyi yayınlanmış olsa da, tek tabakalı olmayan morfolojilere sahip daha niş hücre tipleri kolayca transfekte olmaz, bu da verilebilecek NA miktarını ve onu alan hücre sayısını sınırlar.

Pluripotent kök hücreler (PSC’ler), süresiz olarak bölünme ve herhangi bir vücut hücresi tipi üretme yetenekleri göz önüne alındığında, gelişimi anlamak için çekici bir model ve rejeneratif tıp için bir araç olarak hizmet eder. Fare PSC’leri (mPSC’ler) için, 2 inhibitör ve LIF (2i/LIF) içeren rutin in vitro kültür koşulları, kubbe benzeri bir koloni morfolojisini koruyarak ileri transfeksiyona maruz kalan hücre sayısını doğrudan sınırlar 4,5,6. Bunu ele almak için, bir ters transfeksiyon gerçekleştirilebilir: hücreler, yapışkan hücrelere transfeksiyon reaktifi eklemek yerine, ortam ve transfeksiyon reaktifi içeren bir kabaeklenir 7. Bu, reaktife maruz kalan hücre sayısını artırırken, aynı zamanda hücrelerin aynı anda geçişini ve transfekte edilmesini gerektirir.

Basit tek NA transfeksiyonlarının ötesine geçerek, araştırmacılar genellikle birkaç NA yapısını in vitro bir hücre popülasyonuna iletmeyi amaçlarlar. Bu tipik olarak, NA’ların belirli bir oranda (1:1, 9:1, vb.) karıştırıldığı ve daha sonra seçilen transfeksiyon reaktifi8 ile birleştirildiği bir ko-transfeksiyon yoluyla elde edilir. Bu, NA’ların orijinal oranını koruyan bir NA ve reaktif karışımı verir – tedavideki hücreler bu karışımın farklı miktarlarını alabilirken, hepsi aynı oranıalır 9. İstenilen parça oranı bilindiğinde bu avantajlı olsa da, bu oranın önceden belirlenmesi emek yoğun olabilir ve her oran farklı bir koşul oluşturur. Bir alternatif, tek tek NA’ların transfeksiyon reaktifi ile birbirinden bağımsız olarak karıştırıldığı bir “poli-transfeksiyon” gerçekleştirmektir9. Araştırmacılar, tek tek NA’ları içeren transfeksiyon komplekslerini birleştirerek (kompleksleri oluşturmadan önce NA’ları birleştirmek yerine), tek bir transfeksiyon deneyinde çok çeşitli NA stokiyometrilerini keşfedebilirler9. Bu, indüklenebilir transkripsiyon sistemleri veya 1,10,11’de yerleşik geri beslemeli sistemler gibi birkaç NA’nın ürünlerinin birbiriyle etkileşime girmesinin beklendiği durumlarda özellikle değerlidir. Bununla birlikte, bunu etkili bir şekilde yapmak için yüksek bir transfeksiyon verimliliğine ihtiyaç vardır. Gerçekten de, benzersiz transfekte edilmiş NA’ların sayısı arttıkça, belirli bir hücrenin istenen tüm NA’ları alma olasılığı katlanarakazalır 9,12.

Aşağıdaki rapor, canlılığı en üst düzeye çıkarmak ve tipik kültür koşullarının dışındaki süreyi en aza indirmek için hücrelerin maksimum 5 dakika boyunca reaktif-NA karışımına maruz bırakıldığı katyonik lipid bazlı bir transfeksiyon reaktifi kullanan mPSC’ler için bir ters transfeksiyon protokolünü açıklamaktadır. Bu protokolün bu hücrelerin standart ileri transfeksiyonu ile karşılaştırılması, daha yüksek bir transfeksiyon verimliliği ve hayatta kalan transfekte edilmiş hücrelerin toplam sayısında bir artış olduğunu göstermektedir. Bu ters transfeksiyonu, basit floresan raportörleri içeren üç plazmit poli-transfeksiyon ile birleştirerek, NA oranlarını yüksek transfeksiyon verimliliği ile taramak için genişletilmiş bir potansiyel gösterilmiştir.

Protocol

1. mPSC kültürü için reaktiflerin hazırlanması N2 takviyesi hazırlayın.Steril olmayan koşullarda, bir kimyasal güvenlik çeker ocakta aşağıdaki stok çözeltilerini (adım 1.1.1.1) hazırlayın. Her kimyasalın katı tozunu önceden tartılmış 50 mL’lik bir konik tüpe ekleyin. Tozu ekledikten sonra her bir tüpü tartın ve aşağıdaki konsantrasyonları elde etmek için uygun miktarda çözücü ekleyin. Bir parti medya için, listelenen minimum miktarı hazırlayın.<…

Representative Results

Hem ileri hem de geri transfeksiyonlar, hücre zarı ile gelen transfeksiyon reaktifi-DNA kompleksleri arasındaki etkileşime dayanır ve NA’nın alıcı hücrelere iletilmesine izin verir. Bu tekniklerin farklı olduğu yer, hücrenin doğumdaki durumudur – DNA tipik olarak geleneksel ileri transfeksiyonda yapışık hücre tek katmanlarına iletilirken, ters transfeksiyon bunun yerine reaktif-DNA kompleksinin tek hücreli bir süspansiyon içindeyken hücrelerle buluşmasına dayanır. Bu fark, hücrelerin tekdüze, d…

Discussion

Transfeksiyon protokollerinin yaygın olarak benimsenmesinin temel nedeni, tekrarlanabilirlikleri ve erişilebilirlikleridir; Ancak, bu protokoller deneysel bağlamlarda optimizasyon gerektirir. Yukarıda bahsedilmeyen, yeni bir hücre hattını ilk kez kesmeye çalışırken gerekli olan standart testtir. İlk olarak, transfeksiyon reaktifi seçimi çok önemlidir, çünkü ticari olarak temin edilebilen reaktifler herkese uyan tek bir beden değildir ve hücre tipleri arasında NA iletim canlılığının verimliliğin…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar, alan sınırlamaları nedeniyle bu çalışmada atıfta bulunulmayan alana yapılan birçok katkının yanı sıra bu fırsatı sağlayan finansman kuruluşlarına da teşekkür etmek istemektedir. Yazarlar, bu çalışmayı destekleyen Kanada Doğa Bilimleri ve Mühendislik Araştırma Konseyi (NSERC) ve Kanada Sağlık Araştırmaları Enstitüleri’nden (CIHR) fon aldığını kabul etmektedir. K.M., NSERC’den CGS-M bursu ve British Columbia Üniversitesi’nden Killam Doktora Bursu almıştır. N.S., Michael Smith Health Research BC Scholar Ödülü’nün sahibidir.

Materials

Accutase  MilliporeSigma SCR005
Apotransferrin  MilliporeSigma T1147-500MG
B27 supplement  ThermoFisher Scientific  17504044
Beta-mercaptoethanol ThermoFisher Scientific  21985023
BSA fraction V (7.5%) Gibco 15260-037
CHIR99021  MilliporeSigma SML1046-25MG
DMEM-F12 MilliporeSigma D6421-24X500ML
Flow cytometry standardization beads Spherotech URCP-38-2K
Gelatin  MilliporeSigma G1890
GlutaMAX supplement  ThermoFisher Scientific  35050061
Insulin  Gibco 12585-0014
Lipofectamine 2000  Invitrogen 11668-019 Transfection reagent
Neurobasal media ThermoFisher Scientific  21103049
OptiMEM  Invitrogen 31985-070
PD0325901  MilliporeSigma PZ0162-25MG
Progesterone MilliporeSigma P8783 Chemical hazard – consult local safety guidelines, ensure proper PPE is worn, and work with the solid powder form only in a chemical fume hood
Putrescine MilliporeSigma P6780 Chemical hazard – consult local safety guidelines, ensure proper PPE is worn, and work with the solid powder form only in a chemical fume hood
Recombinant mLIF  BioTechne 8878-LF-500/CF
Sodium selenite  MilliporeSigma S5261-25G Chemical hazard – consult local safety guidelines, ensure proper PPE is worn, and work with the solid powder form only in a chemical fume hood
Trypsin-EDTA ThermoFisher Scientific  25200056

Referanslar

  1. Shakiba, N., Jones, R. D., Weiss, R., Del Vecchio, D. Context-aware synthetic biology by controller design: Engineering the mammalian cell. Cell Systems. 12 (6), 561-592 (2021).
  2. Fus-Kujawa, A., et al. An overview of methods and tools for transfection of eukaryotic cells in vitro. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 9, (2021).
  3. FAU, K. T. K., Eberwine, J. H. Mammalian cell transfection: the present and the future. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 397 (8), 3173-3178 (2010).
  4. Tamm, C., Galitó, S. P., Annerén, C. A comparative study of protocols for mouse embryonic stem cell culturing. PLoS One. 8 (12), 81156 (2013).
  5. Morgani, S., Nichols, J., Hadjantonakis, A. K. The many faces of pluripotency: in vitro adaptations of a continuum of in vivo states. BMC Developmental Biology. 17 (1), (2017).
  6. Mulas, C., et al. Defined conditions for propagation and manipulation of mouse embryonic stem cells. Development. 146 (6), 173146 (2019).
  7. Tamm, C., Kadekar, S., Pijuan-Galitó, S., Annerén, C. Fast and efficient transfection of mouse embryonic stem cells using non-viral reagents. Stem Cell Reviews and Reports. 12 (5), 584-591 (2016).
  8. Chong, Z. X., Yeap, S. K., Ho, W. Y. Transfection types, methods and strategies: A technical review. PeerJ. 9, 11165 (2021).
  9. Gam, J. J., DiAndreth, B., Jones, R. D., Huh, J., Weiss, R. A "poly-transfection" method for rapid, one-pot characterization and optimization of genetic systems. Nucleic Acids Research. 47 (18), 106 (2019).
  10. Jones, R. D., et al. An endoribonuclease-based feedforward controller for decoupling resource-limited genetic modules in mammalian cells. Nature Communications. 11 (1), 5690 (2020).
  11. Wauford, N., Jones, R., Van De Mark, C., Weiss, R. Rapid development of cell state identification circuits with poly-transfection. Journal of Visualized Experiments. (192), e64793 (2023).
  12. Hori, Y., Kantak, C., Murray, R. M., Abate, A. R. Cell-free extract based optimization of biomolecular circuits with droplet microfluidics. Lab on a Chip. 17 (18), 3037-3042 (2017).
  13. Teague, B. Cytoflow: A python toolbox for flow cytometry. bioRxiv. , (2023).
  14. Qin, J. Y., et al. Systematic comparison of constitutive promoters and the doxycycline-inducible promoter. PLoS One. 5 (5), 0010611 (2010).

Play Video

Bu Makaleden Alıntı Yapın
Maheden, K., Hwang, K., Egilmez, I., Shakiba, N. An Optimized Mouse Embryonic Stem Cell Based Reverse Poly-Transfection Technique for Rapid Exploration of Nucleic Acid Ratios. J. Vis. Exp. (202), e65766, doi:10.3791/65766 (2023).

View Video