Özet

Электрофизиология активности ламинарной коры у обыкновенной мартышки

Published: August 04, 2023
doi:

Özet

Специально разработанные микроприводы позволяют субмиллиметровое нацеливание на кортикальные участки регистрации с помощью линейных кремниевых матриц.

Abstract

Мартышка представляет собой идеальную модель для исследования ламинарных корковых цепей благодаря своей гладкой корковой поверхности, что облегчает записи с помощью линейных массивов. Популярность мартышки в последнее время возросла из-за схожей с другими приматами нейронно-функциональной организации и технических преимуществ для записи и визуализации. Тем не менее, нейрофизиология в этой модели создает некоторые уникальные проблемы из-за небольшого размера и отсутствия извилин в качестве анатомических ориентиров. Используя специально разработанные микроприводы, исследователи могут манипулировать размещением линейных решеток с субмиллиметровой точностью и надежно записывать данные в одном и том же ретинотопическом целевом месте в течение нескольких дней записи. В данном протоколе описывается пошаговое построение системы позиционирования микропривода и методика нейрофизиологической регистрации с помощью кремниевых линейных электродных решеток. Благодаря точному контролю расположения электродов во время сеансов записи, исследователи могут легко перемещаться по коре головного мозга, чтобы определить интересующие области на основе их ретинотопической организации и настроечных свойств записанных нейронов. Кроме того, с помощью этой системы ламинарных электродов можно применить анализ плотности источника тока (CSD) для определения глубины записи отдельных нейронов. Этот протокол также демонстрирует примеры ламинарных записей, в том числе спайковые волны, изолированные в Kilosort, которые охватывают несколько каналов на массивах.

Introduction

Обыкновенная мартышка (Callithrix jacchus) в последние годы быстро завоевала популярность в качестве модели для изучения функций мозга. Эта растущая популярность обусловлена доступностью гладкой коры головного мозга мартышки, сходством в нейронной функциональной организации с людьми и другими приматами, а также небольшим размером ибыстрой скоростью размножения. По мере того, как популярность этого модельного организма росла, происходило быстрое развитие нейрофизиологических методов, пригодных для использования в мозге мартышки. Методы электрофизиологии широко используются в неврологии для изучения активности отдельных нейронов в коре головного мозга как грызунов, так и приматов, что приводит к беспрецедентному временному разрешению и доступу к местоположению. Из-за относительной новизны мартышки как модели визуальной нейробиологии, оптимизация методов электрофизиологии, ведущей себя в бодрствующем состоянии, все еще развивается. Предыдущие исследования показали создание надежных протоколов электрофизиологии в анестезируемых препаратах2, а ранние исследования нейрофизиологии, ведущие себя в состоянии бодрствования, показали надежность одноканальных вольфрамовых электрод3. В последние годы исследователи установили использование кремниевых микроэлектродных решеток для нейрофизиологии поведения в бодрствующемсостоянии. Тем не менее, мартышка представляет собой уникальную проблему нацеливания из-за своего маленького размера мозга и отсутствия анатомических ориентиров. В этом протоколе описывается, как сконструировать и использовать микродисковую систему записи, подходящую для мартышки, которая позволяет записывать большие популяции нейронов с помощью кремниевых линейных массивов, производя при этом минимальное повреждение тканей.

Работа с мартышками представляет собой сложную задачу из-за меньшего масштаба ретинотопических карт в зрительной коре по сравнению с более крупными приматами. Небольшое смещение электродов всего на 1 мм может привести к значительным изменениям в картах. Более того, исследователям часто приходится изменять расположение электродов между сеансами записи, чтобы получить более широкий диапазон ретинотопических позиций в зрительной коре. Современные полухронические препараты не позволяют регулировать положение электродов ежедневно или с достаточной точностью для нацеливания на определенные участки в субмиллиметровых масштабах5. Имея это в виду, предлагаемая система микроприводов использует электродный каскад X-Y, который крепит легкий микропривод к записывающей камере и позволяет осуществлять субмиллиметровое нацеливание на участки коры головного мозга. Подвижные компоненты X-Y каскада позволяют осуществлять вертикальное и горизонтальное перемещение линейной решетки для систематического перемещения по корковым областям, что необходимо для идентификации интересующих областей (с помощью ретинотопии и настроек). Во время сеансов записи исследователи также могут вручную настроить стадию X-Y, чтобы сместить целевые участки в пределах области. Это ключевое преимущество по сравнению с альтернативными методами, использующими полухронические препараты для записи, которые не имеют простых механизмов наведения электродов.

Микропривод является универсальным инструментом, который позволяет монтировать различные кремниевые матрицы для опускания в кору головного мозга. В этом протоколе специальный зонд с двумя 32-канальными линейными решетками, расположенными на расстоянии 200 мкм друг от друга, использовался для исследования ламинарных цепей, охватывающих кортикальную глубину. Большинство методов зондирования нейронных цепей, как правило, отбирают электрические потенциалы или единичные единицы, усредненные по всем слоям коры головного мозга. Тем не менее, недавние исследования выявили интригующие результаты о кортикальных ламинарных микросхемах6. Используя микропривод, исследователи могут использовать ламинарные зонды и точно регулировать глубину записи, чтобы обеспечить всестороннюю выборку по всем слоям.

Эта система может быть построена из коммерчески доступных компонентов и легко модифицируется для различных экспериментальных методов или зондов. Ключевыми преимуществами этого препарата являются возможность изменять положение записи X-Y с субмиллиметровой точностью и контролировать глубину записи в коре головного мозга. В этом протоколе представлена пошаговая инструкция по построению микропривода стадии X-Y и техник нейрофизиологической записи.

Protocol

Экспериментальные процедуры проводились в соответствии с Руководством Национального института здравоохранения по уходу за лабораторными животными и их использованию. Протоколы экспериментальных и поведенческих процедур были одобрены Комитетом по уходу за животными и их использов?…

Representative Results

В этом протоколе описывается, как построить электродный столик X-Y (рис. 1), который позволяет осуществлять субмиллиметровое наведение на участки и поддерживать надежное позиционирование в отдельных сеансах записи. Надежность позиционирования по осям X-Y проиллюстрирова…

Discussion

В настоящее время существует несколько методов (например, хронический, полухронический, острый) для проведения нейрофизиологических экспериментов на нечеловекообразных приматах. Обыкновенная мартышка представляет собой уникальную проблему для нейрофизиологических экспериментов и…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана грантом R01 EY030998 Национальных институтов здравоохранения (NIH) (J.F.M., A.B. и S.C.). Данный метод основан на методиках, разработанных в работе Coop et al. (under review, 2022; https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2022.10.11.511827v2.abstract). Мы хотели бы поблагодарить Дину Граф и сотрудников лаборатории Митчелла за помощь в уходе и обращении с мартышками.

Materials

1/4 Hp burr drill bit McMaster & Carr Cat# 43035A32 Carbide Bur with 1/4" Shank Diameter, Rounded Cylinder Head, trade Number SC-1, single Cut(https://www.mcmaster.com/products/bur-bits/burs-7/?s=1%2F4%22+bur+bits)
1x1mm Crist Grid Crist Instruments 1 mm x 1 mm Grid https://www.cristinstrument.com/products/implant-intro/grids
91% isopropyl alcohol Medline N/A https://www.medline.com/product/Medline-Isopropyl-Rubbing-Alcohol/Bulk-Alcohol/Z05-PF03807?question=91%25%20isopropyl%20alcohol
Acquisition Board Open-Ephys N/A https://open-ephys.org/acquisition-system/eux9baf6a5s8tid06hk1mw5aafjdz1
Bacitracin Ointment Medline: Cosette Pharmaceuticals Inc N/A https://www.medline.com/product/Bacitracin-Ointment/Antibiotics/Z05-PF86957?question=bacitr
Blunt straight Forceps Medline N/A https://www.medline.com/category/Central-Sterile/Surgical-Instruments/Forceps/Z05-CA16_02_20/products
Bone wax Medline ETHW31G https://www.medline.com/product/Ethicon-Bone-Wax/Bone-Wax/Z05-PF61528?question=bonewax
C&B Metabond Quick Adhesive Cement System Parkell, Inc. SKU: S380 https://www.parkell.com/C-B-Metabond-Quick-Adhesive-Cement-System
Clavamox MWI Animal Health N/A
Contact lens solution Bausch and lomb Various sources available
Custom Printed 3D printed parts ProtoLab https://marmolab.bcs.rochester.edu/resources.html
DB25-G2 25 Pin Male Plug Port Signal Connector Various Sources DB25-G2 25 DB25-G2 25 Pin Male Plug Port Signal 2 Row Terminal Breakout Board Screw Nut Connector
diamond saw attachement for dremmel Dremmel 545 Diamond Wheel https://www.dremel.com/us/en/p/545-26150545ab
Digitizing Head-stages Intan RHD 32channel (Part #C3314) https://intantech.com/RHD_headstages.html?tabSelect=RHD32ch&yPos=120.80
000305175781
EDOT Sigma Aldrich Product # 483028 https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/aldrich/483028
Helping Hands Harbor Freight N/A https://www.harborfreight.com/helping-hands-60501.html
Hook Electrical Clips Various Sources N/A Hook test Cable wires
Interface Cables (RHD 3-ft (0.9 m) ultra thin SPI cable) Intan  Part #C3213 https://intantech.com/RHD_SPI_cables.html
Lab jack Various Sources N/A https://www.amazon.com/Stainless-Steel-Scissor-Stand-Platform/dp/B07T8FM85H/ref=asc_df_B07T8FM85H/?tag=&linkCode=df0&hvadid=366343
827267&hvpos=&hvnetw=g&hvrand
=2036619536500717246&hvpone
=&hvptwo=&hvqmt=&hvdev=c&hv
dvcmdl=&hvlocint=&hvlocphy=900
5674&hvtargid=pla-795933567991&
ref=&adgrpid=71496544770&th=1
Meloxicam MWI Animal Health N/A
Micro-drive Crist Instrument 3-NRMD https://www.cristinstrument.com/products/microdrives/miniature-microdrive-3-nrmd
Multi-channel linear silicon arrays with 64 channel connector NeuroNexus A1x32-5mm-25-177 https://www.neuronexus.com/products/electrode-arrays/up-to-10-mm-depth/
NanoZ Omentics Adapter- 32 Channel NeuraLynx ADPT-NZ-N2T-32 https://neuralynx.com/hardware/adpt-nz-n2t-32
NanoZ System Plexon NanoZ Impedence Tester https://plexon.com/products/nanoz-impedance-tester/
Narishige Micromanipulator Narishige Stereotaxic Micromanipulator https://usa.narishige-group.com/
Open-Ephys GUI Open-Ephys https://open-ephys.org/
Polyimide Tubing (OD(in): 0.021 / ID(in) 0.018 ) Various Sources (Chamfr) Chamfr Cat#HPC01895 https://chamfr.com/sellers/teleflex-medical-oem-llc/
Primate Chair Custom made by University of Rochester Machine Shop Designs online https://marmolab.bcs.rochester.edu/resources.html
Poly(sodium 4-styrenesulfonate) (PSS) Sigma Aldrich Product # 243051 https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/aldrich/243051
RHD USB Interface board Intan RHD2000 Evaluation Board Version 1.0 https://intantech.com/RHD_USB_interface_board.html
Silastic gel World Precision Instuments # KWIK-SIL Low Toxicity Silicone Adhesive ((https://www.wpiinc.com/kwik-sil-low-toxicity-silicone-adhesive)
Slow release buprenorphine Compounding Pharmacy
Stainless steel wire 36 gauge McMaster & Carr Cat# 6517K11 Round Bend-and-Stay Multipurpose 304 Stainless Steel Wire, Matte Finish, 1-Foot Long, 0.008" Diameter
Stanley 6-Piece Precision Screwdriver Set Stanley 1.4mm flathead screwdriver https://www.amazon.com/Stanley-Tools-6-Piece-Precision-Screwdriver/dp/B076621ZGC/ref=sr_1_3?crid=237VSK5FNFP9N&keywords=
stanley+66-052&qid=1672764369&sprefix=
stanley+66-052%2Caps%2C90&sr=8-3
Steel Screws McMaster & Carr type 00 stainless steel hex screws and 1/8” in length https://www.mcmaster.com/
Steel Tube McMaster & Carr 28 gauge stainless steel tubing https://www.mcmaster.com/tubing/multipurpose-304-stainless-steel-6/id~0-055/
Superglue Loctite SuperGlue Gel Control https://www.loctiteproducts.com/en/products/fix/super-glue/loctite_super_gluegelcontrol.html

Referanslar

  1. Mansfield, K. Marmoset models commonly used in biomedical research. Comparative Medicine. 53 (4), 383-392 (2003).
  2. Solomon, S. G., Rosa, M. G. P. A simpler primate brain: the visual system of the marmoset monkey. Frontiers in Neural Circuits. 8, 96 (2014).
  3. Remington, E. D., Osmanski, M. S., Wang, X. An operant conditioning method for studying auditory behaviors in marmoset monkeys. PLoS One. 7 (10), e47895 (2012).
  4. Walker, J. D., et al. Chronic wireless neural population recordings with common marmosets. Cell Reports. 36 (2), 109379 (2021).
  5. Jendritza, P., Klein, F. J., Fries, P. Multi-area recordings and optogenetics in the awake, behaving marmoset. Nature Communications. 14 (1), 577 (2023).
  6. Pinotsis, D. A., et al. Linking canonical microcircuits and neuronal activity: Dynamic causal modelling of laminar recordings. Neuroimage. 146, 355-366 (2017).
  7. Ludwig, K. A., et al. Poly (3, 4-ethylenedioxythiophene)(PEDOT) polymer coatings facilitate smaller neural recording electrodes. Journal of Neural Engineering. 8 (1), 014001 (2011).
  8. Ludwig, K. A., Uram, J. D., Yang, J., Martin, D. C., Kipke, D. R. Chronic neural recordings using silicon microelectrode arrays electrochemically deposited with a poly (3, 4-ethylenedioxythiophene)(PEDOT) film. Journal of Neural Engineering. 3 (1), 59 (2006).
  9. Lu, T., Liang, L., Wang, X. Neural representations of temporally asymmetric stimuli in the auditory cortex of awake primates. Journal of Neurophysiology. 85 (6), 2364-2380 (2001).
  10. Osmanski, M. S., Song, X., Wang, X. The role of harmonic resolvability in pitch perception in a vocal nonhuman primate, the common marmoset (Callithrix jacchus). Journal of Neuroscience. 33 (21), 9161-9168 (2013).
  11. Nummela, S. U., et al. Psychophysical measurement of marmoset acuity and myopia. Developmental Neurobiology. 77 (3), 300-313 (2017).
  12. Paxinos, G., Watson, C., Petrides, M., Rosa, M., Tokuno, H. . The Marmoset Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2012).
  13. Mitchell, J. F., Reynolds, J. H., Miller, C. T. Active vision in marmosets: A model system for visual neuroscience. Journal of Neuroscience. 34 (4), 1183-1194 (2014).
  14. Spitler, K. M., Gothard, K. M. A removable silicone elastomer seal reduces granulation tissue growth and maintains the sterility of recording chambers for primate neurophysiology. Journal of Neuroscience Methods. 169 (1), 23-26 (2008).
  15. Jun, J. J., et al. Fully integrated silicon probes for high-density recording of neural activity. Nature. 551 (7679), 232-236 (2017).
  16. Mitzdorf, U. Current source-density method and application in cat cerebral cortex: investigation of evoked potentials and EEG phenomena. Physiological Reviews. 65 (1), 37-100 (1985).
  17. Coop, S. H., Yates, J. L., Mitchell, J. F. Pre-saccadic neural enhancements in marmoset area MT. bioRxiv. , (2022).
  18. Okun, M., Lak, A., Carandini, M., Harris, K. D. Long term recordings with immobile silicon probes in the mouse cortex. PloS One. 11 (3), e0151180 (2016).

Play Video

Bu Makaleden Alıntı Yapın
Bucklaew, A., Coop, S. H., Mitchell, J. F. Electrophysiology of Laminar Cortical Activity in the Common Marmoset. J. Vis. Exp. (198), e65397, doi:10.3791/65397 (2023).

View Video