本研究では、2次元ヒト人工多能性幹細胞由来心筋細胞(hiPSC-CM)単層をフレキシブル基板上にめっきし、ビデオベースの顕微鏡と組み合わせて、非侵襲的心臓医療機器の収縮性評価方法を実証する。このツールは、心臓電気生理学デバイスの収縮特性の in vitro 評価に役立ちます。
ヒト人工多能性幹細胞由来心筋細胞(hiPSC-CM)は現在、複数の in vitro アプリケーションのために検討されており、規制当局への提出に使用されています。ここでは、心臓医療機器の安全性または性能評価にその使用を拡張します。我々は、柔軟な細胞外マトリックス(ECM)ベースのヒドロゲル基材上にめっきされた堅牢に収縮する2D hiPSC-CM単層において、心臓医療機器の収縮特性を評価するための新しい方法を開発しました。このツールは、標準的な実験装置を使用して、心臓電気生理学デバイスの信号が人間の心機能(収縮特性など)に及ぼす影響を定量化することができます。2D hiPSC-CM単層を、48ウェルフォーマットの柔軟なヒドロゲル基板上で2〜4日間培養しました。
hiPSC-CMは、標準的な心収縮性調節(CCM)医療機器の電気信号にばく露され、対照(すなわち、ペーシングのみ)のhiPSC-CMと比較されました。2D hiPSC-CMのベースライン収縮特性は、ピクセル変位に基づくビデオベースの検出分析によって定量化されました。柔軟なヒドロゲル基質上に播種されたCCM刺激2D hiPSC-CMは、ベースラインと比較して(すなわち、CCM刺激前)、ピーク収縮振幅の増加および収縮および弛緩速度論の加速を含む、有意に増強された収縮特性を示した。さらに、柔軟なヒドロゲル基質を利用することで、健康および疾患のhiPSC-CMにおけるビデオベースの心臓励起収縮結合読み出し(すなわち、電気生理学、カルシウム処理、および収縮)の多重化が可能になります。ヒトの心臓収縮に対する心臓電気生理学的信号の影響を正確に検出および定量化することは、心臓医療機器の開発、最適化、およびリスク低減に不可欠です。この方法により、心臓合胞体の収縮特性の堅牢な視覚化と定量が可能になり、非臨床心臓医療機器の安全性または有効性試験に価値があるはずです。本稿では、2D hiPSC-CMヒドロゲル基板単層を生成する方法論について詳細に説明する。
米国の人口が高齢化するにつれて、心不全患者の数は、直接的な医療費とともに増加し続けています1,2。心不全を治療するための新しい治療法と、そのような治療法をテストするための革新的な非臨床方法論を開発することが非常に重要です。ヒト人工多能性幹細胞由来心筋細胞(hiPSC-CM)は、治療薬開発プロセスを支援するためのin vitroツールとして提案されており、規制当局への提出で使用されています3,4。しかし、標準的な硬質2D培養条件(従来の組織培養プラスチックやガラス)でプレーティングした場合の堅牢な収縮特性がないため、収縮性研究への普及は限られていました5,6,7,8。我々は以前、単離された単一のhiPSC-CMを柔軟なヒドロゲル基板上にめっきして、堅牢な可視収縮特性を生成することの有用性を実証しました9。単離されたhiPSC-CMは、新たに単離された成体ウサギ心室心筋細胞と同等の収縮特性を有することを示した。さらに、薬理学的薬剤に対する収縮応答を評価するためのこの方法の有用性を実証した7。さらに、他の研究では、この技術を基礎科学および疾患モデリングの機構評価に適用しています10,11,12。ここでは、この方法論を2D hiPSC-CM単層に拡張し、生理学的に関連する心収縮性調節(CCM)医療機器の電気信号をin vitroで評価する際のその有用性が実証されています。
CCMは、心周期の絶対不応期に非興奮性電気生理学的信号が心筋に送達される心内心不全療法である13,14。ヒト心臓細胞モデルにおけるCCMを評価するための再現性のある方法は不足しています。これまでの研究では、CCM収縮応答を評価するために様々な心臓細胞モデルが用いられてきた。我々は、新たに単離されたウサギの心室心筋細胞が、カルシウムの一時的な増加および収縮振幅15によってCCM刺激に応答することをin vitroで実証した。単離された犬の心室心筋細胞における別の研究は、細胞内カルシウム一過性振幅16のCCM誘発性の増強を示した。ただし、CCM研究の大部分は、エクスビボおよびインビボの動物製剤を使用しています。これらの研究は、さまざまなCCMパルスパラメータと種を適用するため、互いに相関させることは困難です17。単離されたウサギ乳頭モデルにおける1つの研究は、CCM誘発収縮性の増加を明らかにしました8,18、そして一連の心臓全体の研究は、CCM誘発性の収縮機能の増強を示しました19,20,21。これらの研究は、重要な機構的洞察を提供してきました。しかし、CCMを含むin vitro心臓EP収縮研究のための再現可能なヒトモデルが不足している。そのために、我々はいくつかの2Dおよび3D hiPSCモデルを開発し、CCMによる収縮特性の増強をパラメータ依存的に実証しました。さらに、CCM誘発変力効果は、ニューロン入力およびβアドレナリン作動性シグナル伝達によって部分的に媒介されることが見出されている8、17、22。それでも、CCM療法のメカニズムについてより多くのことを知る必要があり、収縮するヒト心筋細胞を利用することで、この結果を達成するのに役立ちます。そのため、新しいCCMデバイスおよびシグナルを評価し、規制プロセスを迅速化し、動物モデルの負担を軽減し、デバイス開発者の意思決定を支援するためのヒト非臨床ツールを開発することが非常に重要です8,17,23,24。コストを削減するために、あらゆるラボに転送でき、標準機器と低セル要件を使用する、簡単で日曜大工のプロトコルを開発することが重要です。この方法は、ヒト心筋細胞機能に対するCCM刺激の効果を解明し、CCMの安全性または有効性に関する重要な洞察を提供します17。ここでは、柔軟なヒドロゲル基板上に2D hiPSC-CM単層を生成し、健康と疾患における急性心臓電気生理学医療機器(すなわちCCM)収縮反応を定量化するための標準化された非臨床ツールを製造する方法について説明します。
本明細書で概説するプロトコルは、市販の試薬7、17を用いて柔軟な細胞外マトリックス(ECM)ベースのヒドロゲル基質上に頑健に収縮する2D hiPSC−CM単層を生成する方法を記載している。柔軟なヒドロゲル基質に播種されたhiPSC-CMは生存性を維持し、収縮特性を強化しています7。この技術は、標準的な実験装置と機能に依存しています7。プロトコルには、ECMベースのヒドロゲル基質での作業など、細部に細心の注意を払う必要があるいくつかの重要なステップがあります。潜在的な問題の1つは、培地中の血清の存在です。これにより、hiPSC-CMがコンフルエントな単層シートの代わりにネットワーク(内皮/血管ネットワークなど)を形成する可能性があります。したがって、柔軟なヒドロゲルhiPSC-CM単分子膜の確立中(すなわち、0日目から4日目)には無血清培地が推奨されます。同様に、一度に多くのヒドロゲル基質を準備すると、オペレーターの疲労により基質が貧弱または不均一になる可能性があります。迅速に作業することは重要ですが、各ヒドロゲル基質の完全性は重要です。同様に、hiPSC-CMを慎重に播種し、培地を交換する必要があります。これは強制的に行われるべきではありません。培地を交換するときは、ヒドロゲル基質または細胞を破壊しないように、ウェルの上端から穏やかに添加する必要があります。標準的な2D hiPSC-CM培養(従来の組織培養プラスチックまたはガラス)と同様に、低密度でめっきすると、不完全な単層形成が生じます。hiPSC-CMを目視検査してハイドロゲル基板上にあることを確認し、タイマーを使用して正確なタイミングを確保することが重要です。さらに、ヒドロゲル基材上で2D hiPSC-CM単分子膜を14日以上培養すると、ECM特性および基材の製造元からの指示に基づいて、単層破壊が生じる可能性があります。
現在の方法には、考慮しなければならないいくつかの制限があります。まず、このプロトコルで使用された細胞は市販のhiPSC-CMプロバイダーからのものであり、それらの細胞は電気的に結合された細胞の合胞体を形成します。合胞体には、3つの心臓サブタイプ(心室、心房、結節)すべてからのhiPSC-CMの混合物が含まれています17。研究は、サブタイプのみのhiPSC-CM集団(すなわち、100%心室または100%心房)から利益を得る可能性があります。第二に、この方法はhiPSC-CMのみを使用しましたが、心臓線維芽細胞、内皮細胞、ニューロンなどの非筋細胞はhiPSC-CM機能を増強する可能性があります22,36。第三に、2D hiPSC-CMは、自発拍動、非晶質形態、変力応答の欠如など、比較的未成熟な心筋細胞のいくつかの特徴を示します8,37。第四に、このプロトコルは頑健に収縮する2D hiPSC-CM単層を生成しますが、操作された心臓組織(ECT)などの機能的に強化された3D hiPSC-CMモデルは、生理学的カルシウム濃度8,38の下でCCM誘発収縮応答の増強をもたらす可能性があります。最後に、ここで説明するプロトコルは、48ウェルフォーマット用に設計されています。ただし、最適化と自動化を含めることで、これをハイスループット形式(96ウェルまたは384ウェルプレートなど)に拡張できます。
hiPSC-CM研究の現在のゴールドスタンダードは、従来の硬質2D培養条件(組織培養プラスチックまたはガラス)です。電気生理学3およびカルシウム取り扱い39の研究には有用であるが、従来の方法論は最小限の収縮特性をもたらす5、6、7。その結果、従来の硬質2D培養条件は、CCM収縮効果の評価には適していません8。機能的に強化された3D hiPSC-CM ECTメソッド38は、技術的に困難で時間がかかり、すべてのラボですぐに利用できるわけではない高度な機器を必要とします。このプロトコルでは、3D ECT法または長期の従来の2D法よりも短い時間枠で堅牢に収縮する2D hiPSC-CM単分子膜を生成する簡単な方法論について説明します7,40,41。さらに、ここで使用される試薬は、ヒドロゲル基質およびhiPSC-CMを含む市販されており、どちらもロット間の一貫性がかなりあります。取り外し可能な白金線電極(電極間距離:2.0 mm、幅:1.0 mm)を使用しましたが、さまざまな電極材料と構成がin vitroでのCCM収縮性評価に適しています8,15,17,18,22。同様に、収縮ビデオの分析を可能にする複数の自動ソフトウェアが利用可能です7,31,32。
心臓医療機器の収縮性を評価する非臨床的方法の大部分は、費用のかかる in vivo 動物モデル(イヌやブタなど)と技術的に困難な乳頭筋ストリップ(ウサギなど)に大きく依存しています18。この論文は、収縮性に対する心臓電気生理学医療機器信号の影響を評価するためのヒト in vitro モデルについて説明しました。このツールは、動物実験への依存を減らし、心臓電気生理学デバイスの収縮特性の in vitro 評価に役立つ可能性があります。
The authors have nothing to disclose.
この作業は、米国エネルギー省と米国食品医薬品局の間の省庁間協定を通じて、オークリッジ科学教育研究所が管理する機器および放射線衛生センターの研究参加プログラムへの任命によって部分的にサポートされました。著者らは、リチャード・グレイ、トレント・ロバートソン、アンナ・アビラの提案と技術支援に感謝します。この研究は、米国食品医薬品局の科学工学研究所を通じて資金提供されました。
0.1% Gelatin | STEMCELL Technologies | 7903 | Pre-plating Culture Substrate |
48-well Plate | MatTek | P48G-1.5-6-F | Hydrogel Substrate hiPSC-CM Culture, Glass |
6-well Plate | Thermofisher | 140675 | hiPSC-CM Culture, Plastic |
B-27 Supplement, with insulin | Invitrogen | 17504-044 | Cardiomyocyte Media |
Calcium Chloride dihydrate (CaCl2) | Fisher Scientific | c70-500 | Tyrode’s solution |
CellOPTIQ Platform and Software | Clyde Biosciences | Contraction Recording and Analysis | |
Conical tube 15 mL | Corning | 352099 | hiPSC-CM Dissociation |
Digital CMOS Camera | Hamamatsu | C11440-42U30 | Contraction Video Recording |
D-PBS | Life Technologies | 14190-144 | Cell Wash |
Environmental Control Chamber | OKOLAB INC | H201-K-FRAME | Environmental Regulation |
Glucose | Sigma-Aldrich | G8270-1kg | Tyrode’s solution |
Hemocytometer | Fisher Scientific | 22-600-107 | hiPSC-CM Counting |
HEPES | Sigma-Aldrich | H3375 | Tyrode’s solution |
iCell Cardiomyocytes Plating Medium | Fujifilm Cellular Dynamic, Inc. | M1001 | hiPSC-CM Plating Media |
iCell Cardiomyocytes2, 01434 | Fujifilm Cellular Dynamic, Inc. | R1017 | hiPSC-CMs |
Incubator (37 °C, 5% CO2) | Thermofisher | 50116047 | Maintain hiPSC-CMs |
Inverted Microscope | Olympus | IX73 | Imaging hiPSC-CMs |
Magnesium Chloride hexahydrate (MgCl2) | Fisher Scientific | m33-500 | Tyrode’s solution |
Matrigel Growth Factor Reduced Basement Membrane Matrix | Corning | 356230 | Flexible Hydrogel Substrate |
Microcentrifuge tubes 1.5 ml | Fisher Scientific | 05-408-129 | Hydrogel Substrate Aliquot |
Model 4100 Isolated High Power Stimulator | AM-Systems | Model 4100 | Pulse Generator |
MyCell Cardiomyocytes DCM LMNA L35P, 01016 | Fujifilm Cellular Dynamic, Inc. | R1153 | DCM hiPSC-CMs |
Pen-Strep | Invitrogen | 15140-122 | Cardiomyocyte Media |
Pipette L-20 | Rainin | 17014392 | Plating Hydrogel Substrate |
Pipette P1000 | Fisher Scientific | F123602G | |
Pipette tips, 1000 ul | Fisher Scientific | 02-707-509 | |
Pipette tips, 20 ul | Rainin | GPS-L10S | Making Hydrogel Substrate |
Potassium Chloride (KCl) | Fisher Scientific | P330-500 | Tyrode’s solution |
RPMI 1640, with glucose | Invitrogen | 11875 | Cardiomyocyte Media |
Sodium Chloride (NaCl) | Fisher Scientific | s641-212 | Tyrode’s solution |
Sodium Hydroxide (NaOH) | Sigma-Aldrich | 221465 | Tyrode’s solution |
Stimulation Electrodes | Pacing and CCM Stimulation | ||
Stopwatch/Timer | Fisher Scientific | 02-261-840 | Plating Hydrogel Substrate |
Trypan Blue Stain | Life Technologies | T10282 | hiPSC-CM Counting |
TrypLE Express | Life Technologies | 12605-010 | hiPSC-CM Dissociation |