Продемонстрирован новый метод пробоподготовки для анализа бактериальных макроколоний на основе агара с помощью масс-спектрометрии с помощью матричной лазерной десорбции/ионизации.
Понимание метаболических последствий микробных взаимодействий, происходящих во время инфекции, представляет собой уникальную проблему для области биомедицинской визуализации. Масс-спектрометрия с матричной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI) представляет собой метод визуализации in situ без меток, способный генерировать пространственные карты для широкого спектра метаболитов. В то время как тонко срезанные образцы тканей в настоящее время регулярно анализируются с помощью этой технологии, визуализационный масс-спектрометрический анализ нетрадиционных субстратов, таких как бактериальные колонии, обычно выращиваемые на агаре в микробиологических исследованиях, остается сложной задачей из-за высокого содержания воды и неровной топографии этих образцов. В этой статье демонстрируется рабочий процесс пробоподготовки, позволяющий проводить масс-спектрометрический анализ этих типов образцов. Этот процесс иллюстрируется с использованием бактериальных макроколоний двух желудочно-кишечных патогенов: Clostridioides difficile и Enterococcus faecalis. Также показано, что изучение микробных взаимодействий в этой четко определенной агаровой среде дополняет исследования тканей, направленные на понимание микробного метаболического взаимодействия между этими двумя патогенными организмами в мышиных моделях инфекции. Визуализационный масс-спектрометрический анализ метаболитов аминокислот аргинина и орнитина представлен в качестве репрезентативных данных. Этот метод широко применим к другим аналитам, микробным патогенам или заболеваниям, а также типам тканей, где требуется пространственная мера клеточной или тканевой биохимии.
Микробиом человека представляет собой высокодинамичную экосистему, включающую молекулярные взаимодействия бактерий, вирусов, архей и других микробных эукариот. В то время как микробные отношения интенсивно изучались в последние годы, многое еще предстоит понять о микробных процессах на химическом уровне 1,2. Отчасти это связано с отсутствием инструментов, способных точно измерять сложные микробные среды. Достижения в области масс-спектрометрии визуализации (IMS) за последнее десятилетие позволили проводить пространственное картирование in situ и без меток многих метаболитов, липидов и белков в биологических субстратах 3,4. Матричная лазерная десорбция/ионизация (MALDI) стала наиболее распространенным методом ионизации, используемым в масс-спектрометрии изображений, включающим использование УФ-лазера для удаления материала с поверхности тонкого среза ткани для измерения с помощью масс-спектрометрии4. Этот процесс облегчается применением химической матрицы, равномерно нанесенной на поверхность образца, что позволяет проводить последовательные измерения в растровой схеме по всей поверхности образца. Тепловые карты интенсивности ионов анализируемого вещества затем генерируются после сбора данных. Последние достижения в области источников ионизации и методов отбора проб позволили проанализировать нетрадиционные субстраты, такие как бактериальные5 и 6,7,8 клеточные образцы млекопитающих, выращенные на питательном агаре. Молекулярная пространственная информация, предоставляемая IMS, может дать уникальное представление о биохимической коммуникации взаимодействий микроб-микроб и хозяин-микроб во время инфекции 9,10,11,12,13,14.
При инфекции Clostridioides difficile (CDI) C. difficile подвергается воздействию быстро меняющейся микробной среды в желудочно-кишечном тракте, где полимикробные взаимодействия могут повлиять на исходы инфекции15,16. Удивительно, но мало что известно о молекулярных механизмах взаимодействия между C. difficile и резидентной микробиотой во время инфекции. Например, энтерококки представляют собой класс условно-патогенных микроорганизмов в микробиоме кишечника и связаны с повышенной восприимчивостью и тяжестью CDI 17,18,19,20. Однако мало что известно о молекулярных механизмах взаимодействия между этими патогенами. Чтобы визуализировать низкомолекулярную связь между этими членами кишечного микробиома, бактериальные макроколонии были выращены здесь на агаре для имитации микроб-микробных взаимодействий и образования бактериальной биопленки в контролируемой среде. Однако получение репрезентативных метаболических распределений при масс-спектрометрическом анализе образцов бактериальных культур с помощью MALDI является сложной задачей из-за высокого содержания воды и неровной топографии поверхности этих образцов. Это в значительной степени вызвано высокой гидрофильной природой агара и неравномерной реакцией поверхности агара при удалении влаги.
Высокое содержание воды в агаре также может затруднить получение однородного матричного покрытия MALDI и может помешать последующему анализу MALDI, выполняемому в вакууме21. Например, многие источники MALDI работают при давлении 0,1-10 Торр, что является достаточным вакуумом для удаления влаги из агара и может вызвать деформацию образца. Эти морфологические изменения в агаре, вызванные вакуумной средой, вызывают пузырение и растрескивание в высушенном агаровом материале. Эти артефакты снижают адгезию агара к предметному стеклу и могут привести к демонтажу или отслаиванию образца в вакуумной системе прибора. Толщина образцов агара может составлять до 5 мм от предметного стекла, что может создать недостаточный зазор от ионной оптики внутри прибора, что приведет к загрязнению и/или повреждению ионной оптики прибора. Эти кумулятивные эффекты могут привести к уменьшению ионного сигнала, отражающего топографию поверхности, а не лежащие в основе микробные биохимические взаимодействия. Образцы агара должны быть однородно высушены и прочно приклеены к предметному стеклу микроскопа перед анализом в вакууме.
В данной работе демонстрируется процесс пробоподготовки для контролируемой сушки макроколоний бактериальных культур, выращенных на агаровых средах. Этот многоступенчатый, более медленный процесс сушки (по сравнению с ранее описанными) гарантирует, что агар будет равномерно обезвоживаться, сводя к минимуму эффекты барботирования или растрескивания образцов агара, установленных на предметных стеклах микроскопа. При использовании этого метода постепенной сушки образцы прочно прилегают к предметному стеклу микроскопа и поддаются последующему нанесению матрицы и анализу MALDI. Это проиллюстрировано на примере модельных бактериальных колоний C. difficile , выращенных на моделях агаровой и мышиной ткани, содержащих CDI с присутствием комменсального и условно-патогенного микроорганизма Enterococcus faecalis и без него. Масс-спектрометрический анализ MALDI как бактериальных, так и тканевых моделей позволяет пространственно картировать профили метаболитов аминокислот, обеспечивая новое понимание биоэнергетического микробного метаболизма и коммуникации.
Во время масс-спектрометрии визуализации MALDI важно иметь плоскую поверхность образца, чтобы обеспечить постоянный фокусный диаметр падающего лазера MALDI на подложке образца. Отклонения в высоте образца могут привести к смещению лазерного луча MALDI из фокуса, что приведет к изменению диа?…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Национальным институтом здравоохранения (NIH) и Национальным институтом общих медицинских наук (NIGMS) под наградой GM138660. J.T.S. был поддержан семейной летней стипендией Чарльза и Моники Беркетт из Университета Флориды. J.P.Z. был поддержан грантами NIH K22AI7220 (NIAID) и R35GM138369 (NIGMS). A.B.S. был поддержан грантом на обучение клеточной и молекулярной биологии в Университете Пенсильвании (T32GM07229).
0.2 μm Titan3 nylon syringe filters | Thermo Scientific | 42225-NN | |
1,5-diaminonaphthalene MALDI matrix | Sigma Aldrich | 2243-62-1 | |
20 mL Henke Ject luer lock syringes | Henke Sass Wolf | 4200.000V0 | |
275i series convection vacuum gauge | Kurt J. Lesker company | KJL275807LL | |
7T solariX FTICR mass spectrometer equipped with a Smartbeam II Nd:YAG MALDI laser system (2 kHz, 355 nm) | Bruker Daltonics | ||
Acetic acid solution, suitable for HPLC | Sigma Aldrich | 64-19-7 | |
Acetonitrile, suitable for HPLC, gradient grade, ≥99.9% | Sigma Aldrich | 75-05-8 | |
Ammonium hydroxide solution, 28% NH3 in H2O, ≥99.99% trace metals basis | Sigma Aldrich | 1336-21-6 | |
Autoclavable biohazard bags: 55 gal | Grainger | 45TV10 | |
Biohazard specimen transport bags (8 x 8 in.) | Fisher Scientific | 01-800-07 | |
Brain heart infusion broth | BD Biosciences | 90003-040 | |
C57BL/6 male mice | Jackson Laboratories | ||
CanoScan 9000F Mark II photo and document scanner | Canon | ||
CM 3050S research cryomicrotome | Leica Biosystems | ||
Desiccator cabinet | Sigma Aldrich | Z268135 | |
Diamond tip scriber, Electron Microscopy Sciences | Fisher Scientific | 50-254-51 | |
Drierite desiccant pellets | Drierite | 21005 | |
Ethanol, 200 Proof | Decon Labs | 2701 | |
flexImaging software | Bruker Daltonics | ||
ftmsControl software | Bruker Daltonics | ||
Glass vacuum trap | Sigma Aldrich | Z549460 | |
HTX M5 TM robotic sprayer | HTX Technologies | ||
Indium Tin Oxide (ITO)-coated microscope slides | Delta Technologies | CG-81IN-S115 | |
In-line HEPA filter to vacuum pump | LABCONCO | 7386500 | |
Methanol, HPLC Grade | Fisher Chemical | 67-56-1 | |
MTP slide-adapter II | Bruker Daltonics | 235380 | |
Optimal cutting temperature (OCT) compound | Fischer Scientific | 23-730-571 | |
Peridox RTU Sporicide, Disinfectant and Cleaner | CONTEC | CR85335 | |
PTFE (Teflon) printed slides, Electron Microscopy Sciences | VWR | 100488-874 | |
Rotary vane vacuum pump RV8 | Edwards | A65401903 | |
Tissue-Tek Accu-Edge Disposable High Profile Microtome Blades | Electron Microscopy Sciences | 63068-HP | |
Transparent vacuum tubing | Cole Palmer | EW-06414-30 | |
Ultragrade 19 vacuum pump oil | Edwards | H11025011 | |
Variable voltage transformer | Powerstat | ||
Water, suitable for HPLC | Sigma Aldrich | 7732-18-5 | |
Wide-mouth dewar flask | Sigma Aldrich | Z120790 |