Özet

Исследование микробной кооперации с помощью визуализационного масс-спектрометрического анализа бактериальных колоний, выращенных на агаре и в тканях во время инфекции

Published: November 18, 2022
doi:

Özet

Продемонстрирован новый метод пробоподготовки для анализа бактериальных макроколоний на основе агара с помощью масс-спектрометрии с помощью матричной лазерной десорбции/ионизации.

Abstract

Понимание метаболических последствий микробных взаимодействий, происходящих во время инфекции, представляет собой уникальную проблему для области биомедицинской визуализации. Масс-спектрометрия с матричной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI) представляет собой метод визуализации in situ без меток, способный генерировать пространственные карты для широкого спектра метаболитов. В то время как тонко срезанные образцы тканей в настоящее время регулярно анализируются с помощью этой технологии, визуализационный масс-спектрометрический анализ нетрадиционных субстратов, таких как бактериальные колонии, обычно выращиваемые на агаре в микробиологических исследованиях, остается сложной задачей из-за высокого содержания воды и неровной топографии этих образцов. В этой статье демонстрируется рабочий процесс пробоподготовки, позволяющий проводить масс-спектрометрический анализ этих типов образцов. Этот процесс иллюстрируется с использованием бактериальных макроколоний двух желудочно-кишечных патогенов: Clostridioides difficile и Enterococcus faecalis. Также показано, что изучение микробных взаимодействий в этой четко определенной агаровой среде дополняет исследования тканей, направленные на понимание микробного метаболического взаимодействия между этими двумя патогенными организмами в мышиных моделях инфекции. Визуализационный масс-спектрометрический анализ метаболитов аминокислот аргинина и орнитина представлен в качестве репрезентативных данных. Этот метод широко применим к другим аналитам, микробным патогенам или заболеваниям, а также типам тканей, где требуется пространственная мера клеточной или тканевой биохимии.

Introduction

Микробиом человека представляет собой высокодинамичную экосистему, включающую молекулярные взаимодействия бактерий, вирусов, архей и других микробных эукариот. В то время как микробные отношения интенсивно изучались в последние годы, многое еще предстоит понять о микробных процессах на химическом уровне 1,2. Отчасти это связано с отсутствием инструментов, способных точно измерять сложные микробные среды. Достижения в области масс-спектрометрии визуализации (IMS) за последнее десятилетие позволили проводить пространственное картирование in situ и без меток многих метаболитов, липидов и белков в биологических субстратах 3,4. Матричная лазерная десорбция/ионизация (MALDI) стала наиболее распространенным методом ионизации, используемым в масс-спектрометрии изображений, включающим использование УФ-лазера для удаления материала с поверхности тонкого среза ткани для измерения с помощью масс-спектрометрии4. Этот процесс облегчается применением химической матрицы, равномерно нанесенной на поверхность образца, что позволяет проводить последовательные измерения в растровой схеме по всей поверхности образца. Тепловые карты интенсивности ионов анализируемого вещества затем генерируются после сбора данных. Последние достижения в области источников ионизации и методов отбора проб позволили проанализировать нетрадиционные субстраты, такие как бактериальные5 и 6,7,8 клеточные образцы млекопитающих, выращенные на питательном агаре. Молекулярная пространственная информация, предоставляемая IMS, может дать уникальное представление о биохимической коммуникации взаимодействий микроб-микроб и хозяин-микроб во время инфекции 9,10,11,12,13,14.

При инфекции Clostridioides difficile (CDI) C. difficile подвергается воздействию быстро меняющейся микробной среды в желудочно-кишечном тракте, где полимикробные взаимодействия могут повлиять на исходы инфекции15,16. Удивительно, но мало что известно о молекулярных механизмах взаимодействия между C. difficile и резидентной микробиотой во время инфекции. Например, энтерококки представляют собой класс условно-патогенных микроорганизмов в микробиоме кишечника и связаны с повышенной восприимчивостью и тяжестью CDI 17,18,19,20. Однако мало что известно о молекулярных механизмах взаимодействия между этими патогенами. Чтобы визуализировать низкомолекулярную связь между этими членами кишечного микробиома, бактериальные макроколонии были выращены здесь на агаре для имитации микроб-микробных взаимодействий и образования бактериальной биопленки в контролируемой среде. Однако получение репрезентативных метаболических распределений при масс-спектрометрическом анализе образцов бактериальных культур с помощью MALDI является сложной задачей из-за высокого содержания воды и неровной топографии поверхности этих образцов. Это в значительной степени вызвано высокой гидрофильной природой агара и неравномерной реакцией поверхности агара при удалении влаги.

Высокое содержание воды в агаре также может затруднить получение однородного матричного покрытия MALDI и может помешать последующему анализу MALDI, выполняемому в вакууме21. Например, многие источники MALDI работают при давлении 0,1-10 Торр, что является достаточным вакуумом для удаления влаги из агара и может вызвать деформацию образца. Эти морфологические изменения в агаре, вызванные вакуумной средой, вызывают пузырение и растрескивание в высушенном агаровом материале. Эти артефакты снижают адгезию агара к предметному стеклу и могут привести к демонтажу или отслаиванию образца в вакуумной системе прибора. Толщина образцов агара может составлять до 5 мм от предметного стекла, что может создать недостаточный зазор от ионной оптики внутри прибора, что приведет к загрязнению и/или повреждению ионной оптики прибора. Эти кумулятивные эффекты могут привести к уменьшению ионного сигнала, отражающего топографию поверхности, а не лежащие в основе микробные биохимические взаимодействия. Образцы агара должны быть однородно высушены и прочно приклеены к предметному стеклу микроскопа перед анализом в вакууме.

В данной работе демонстрируется процесс пробоподготовки для контролируемой сушки макроколоний бактериальных культур, выращенных на агаровых средах. Этот многоступенчатый, более медленный процесс сушки (по сравнению с ранее описанными) гарантирует, что агар будет равномерно обезвоживаться, сводя к минимуму эффекты барботирования или растрескивания образцов агара, установленных на предметных стеклах микроскопа. При использовании этого метода постепенной сушки образцы прочно прилегают к предметному стеклу микроскопа и поддаются последующему нанесению матрицы и анализу MALDI. Это проиллюстрировано на примере модельных бактериальных колоний C. difficile , выращенных на моделях агаровой и мышиной ткани, содержащих CDI с присутствием комменсального и условно-патогенного микроорганизма Enterococcus faecalis и без него. Масс-спектрометрический анализ MALDI как бактериальных, так и тканевых моделей позволяет пространственно картировать профили метаболитов аминокислот, обеспечивая новое понимание биоэнергетического микробного метаболизма и коммуникации.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Эксперименты на животных были одобрены комитетами по уходу за животными и их использованию Детской больницы Филадельфии и Медицинской школой Перельмана Пенсильванского университета (протоколы IAC 18-001316 и 806279). ВНИМАНИЕ: Clostridium difficile (C. difficile) и Enterococc…

Representative Results

Мы провели масс-спектрометрию метаболитов MALDI модельных бактериальных колоний и мышей, колонизированных совместно с E. faecalis и C. difficile , для изучения роли аминокислот во взаимодействиях микробов и микробов. Бактериальные макроколонии, выращенные на агаре, служат четко определе?…

Discussion

Во время масс-спектрометрии визуализации MALDI важно иметь плоскую поверхность образца, чтобы обеспечить постоянный фокусный диаметр падающего лазера MALDI на подложке образца. Отклонения в высоте образца могут привести к смещению лазерного луча MALDI из фокуса, что приведет к изменению диа?…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Национальным институтом здравоохранения (NIH) и Национальным институтом общих медицинских наук (NIGMS) под наградой GM138660. J.T.S. был поддержан семейной летней стипендией Чарльза и Моники Беркетт из Университета Флориды. J.P.Z. был поддержан грантами NIH K22AI7220 (NIAID) и R35GM138369 (NIGMS). A.B.S. был поддержан грантом на обучение клеточной и молекулярной биологии в Университете Пенсильвании (T32GM07229).

Materials

0.2 μm Titan3 nylon syringe filters Thermo Scientific 42225-NN
1,5-diaminonaphthalene MALDI matrix Sigma Aldrich 2243-62-1
20 mL Henke Ject luer lock syringes Henke Sass Wolf 4200.000V0 
275i series convection vacuum gauge Kurt J. Lesker company KJL275807LL
7T solariX FTICR mass spectrometer equipped with a Smartbeam II Nd:YAG MALDI laser system (2 kHz, 355 nm)  Bruker Daltonics
Acetic acid solution, suitable for HPLC Sigma Aldrich 64-19-7
Acetonitrile, suitable for HPLC, gradient grade, ≥99.9% Sigma Aldrich 75-05-8
Ammonium hydroxide solution, 28% NH3 in H2O, ≥99.99% trace metals basis Sigma Aldrich 1336-21-6
Autoclavable biohazard bags: 55 gal Grainger 45TV10
Biohazard specimen transport bags (8 x 8 in.) Fisher Scientific 01-800-07
Brain heart infusion broth BD Biosciences 90003-040
C57BL/6 male mice  Jackson Laboratories
CanoScan 9000F Mark II photo and document scanner Canon
CM 3050S research cryomicrotome Leica Biosystems
Desiccator cabinet Sigma Aldrich Z268135
Diamond tip scriber, Electron Microscopy Sciences  Fisher Scientific 50-254-51
Drierite desiccant pellets Drierite 21005
Ethanol, 200 Proof Decon Labs 2701
flexImaging software Bruker Daltonics
ftmsControl software Bruker Daltonics
Glass vacuum trap Sigma Aldrich Z549460
HTX M5 TM robotic sprayer HTX Technologies
Indium Tin Oxide (ITO)-coated microscope slides Delta Technologies CG-81IN-S115
In-line HEPA filter to vacuum pump LABCONCO 7386500
Methanol, HPLC Grade Fisher Chemical   67-56-1
MTP slide-adapter II Bruker Daltonics 235380
Optimal cutting temperature (OCT) compound Fischer Scientific 23-730-571
Peridox RTU Sporicide, Disinfectant and Cleaner CONTEC CR85335 
PTFE (Teflon) printed slides, Electron Microscopy Sciences VWR 100488-874
Rotary vane vacuum pump RV8 Edwards A65401903
Tissue-Tek Accu-Edge Disposable High Profile Microtome Blades Electron Microscopy Sciences 63068-HP
Transparent vacuum tubing Cole Palmer EW-06414-30
Ultragrade 19 vacuum pump oil Edwards H11025011
Variable voltage transformer Powerstat
Water, suitable for HPLC Sigma Aldrich 7732-18-5
Wide-mouth dewar flask Sigma Aldrich Z120790

Referanslar

  1. Biteen, J. S., et al. Tools for the microbiome: nano and beyond. ACS Nano. 10 (1), 6-37 (2016).
  2. Shreiner, A. B., Kao, J. Y., Young, V. B. The gut microbiome in health and in disease. Current Opinion in Gastroenterology. 31 (1), 69-75 (2015).
  3. Watrous, J. D., Alexandrov, T., Dorrestein, P. C. The evolving field of imaging mass spectrometry and its impact on future biological research. Journal of Mass Spectrometry. 46 (2), 209-222 (2011).
  4. Gessel, M. M., Norris, J. L., Caprioli, R. M. MALDI imaging mass spectrometry: spatial molecular analysis to enable a new age of discovery. Journal of Proteomics. 107, 71-82 (2014).
  5. Fang, J., Dorrestein, P. C. Emerging mass spectrometry techniques for the direct analysis of microbial colonies. Current Opinion in Microbiology. 19, 120-129 (2014).
  6. Wheatcraft, D. R. A., Liu, X., Hummon, A. B. Sample preparation strategies for mass spectrometry imaging of 3D cell culture models. Journal of Visualized Experiments. (94), e52313 (2014).
  7. Zink, K. E., Dean, M., Burdette, J. E., Sanchez, L. M. Capturing small molecule communication between tissues and cells using imaging mass spectrometry. Journal of Visualized Experiments. (146), e59490 (2019).
  8. Li, H., Hummon, A. B. Imaging mass spectrometry of three-dimensional cell culture systems. Analytical Chemistry. 83 (22), 8794-8801 (2011).
  9. Watrous, J. D., Dorrestein, P. C. Imaging mass spectrometry in microbiology. Nature Reviews Microbiology. 9 (9), 683-694 (2011).
  10. Dunham, S. J. B., Ellis, J. F., Li, B., Sweedler, J. V. Mass spectrometry imaging of complex microbial communities. Accounts of Chemical Research. 50 (1), 96-104 (2017).
  11. Frydenlund Michelsen, C., et al. Evolution of metabolic divergence in Pseudomonas aeruginosa during long-term infection facilitates a proto-cooperative interspecies interaction. Multidisciplinary Journal of Microbial Ecology. 10 (6), 1323-1336 (2016).
  12. Si, T., et al. Characterization of Bacillus subtilis colony biofilms via mass spectrometry and fluorescence imaging. Journal of Proteome Research. 15 (6), 1955-1962 (2016).
  13. Wakeman, C. A., et al. The innate immune protein calprotectin promotes Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus interaction. Nature Communications. 7, 11951 (2016).
  14. Phelan, V. V., Fang, J., Dorrestein, P. C. Mass spectrometry analysis of Pseudomonas aeruginosa treated with azithromycin. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 26 (6), 873-877 (2015).
  15. Ferreyra, J. A., et al. Gut microbiota-produced succinate promotes C. difficile infection after antibiotic treatment or motility disturbance. Cell Host & Microbe. 16 (6), 770-777 (2014).
  16. Buffie, C. G., et al. Precision microbiome reconstitution restores bile acid mediated resistance to Clostridium difficile. Nature. 517 (7533), 205-208 (2015).
  17. Schubert, A. M., et al. Microbiome data distinguish patients with Clostridium difficile infection and non-C. difficile-associated diarrhea from healthy controls. mBio. 5 (3), 01021-01014 (2014).
  18. Auchtung, J. M., et al. Identification of simplified microbial communities that inhibit Clostridioides difficile infection through dilution/extinction. mSphere. 5 (4), 00387 (2020).
  19. Zackular, J. P., et al. Dietary zinc alters the microbiota and decreases resistance to Clostridium difficile infection. Nature Medicine. 22 (11), 1330-1334 (2016).
  20. Tomkovich, S., Stough, J. M., Bishop, L., Schloss, P. D. The initial gut microbiota and response to antibiotic perturbation influence Clostridioides difficile clearance in mice. mSphere. 5 (5), 00869 (2020).
  21. Hoffmann, T., Dorrestein, P. C. Homogeneous matrix deposition on dried agar for MALDI imaging mass spectrometry of microbial cultures. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 26 (11), 1959-1962 (2015).
  22. Yang, J. Y., et al. Primer on agar-based microbial imaging mass spectrometry. Journal of Bacteriology. 194 (22), 6023-6028 (2012).
  23. Prentice, B. M., et al. Dynamic range expansion by gas-phase ion fractionation and enrichment for imaging mass spectrometry. Analytical Chemistry. 92 (19), 13092-13100 (2020).
  24. Bemis, K. D., et al. Cardinal: an R package for statistical analysis of mass spectrometry-based imaging experiments. Biyoinformatik. 31 (14), 2418-2420 (2015).
  25. Robichaud, G., Garrard, K. P., Barry, J. A., Muddiman, D. C. MSiReader: An open-source interface to view and analyze high resolving power MS imaging files on Matlab platform. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 24 (5), 718-721 (2013).
  26. Bokhart, M. T., Nazari, M., Garrard, K. P., Muddiman, D. C. MSiReader v1.0: Evolving open-source mass spectrometry imaging software for targeted and untargeted analyses. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 29 (1), 8-16 (2018).
  27. Smith, A. B., et al. Enterococci enhance Clostridioides difficile Pathogenesis. Nature. , (2022).
  28. Korte, A. R., Lee, Y. J. MALDI-MS analysis and imaging of small molecule metabolites with 1,5-diaminonaphthalene (DAN). Journal of Mass Spectrometry. 49 (8), 737-741 (2014).
  29. Hankin, J. A., Barkley, R. M., Murphy, R. C. Sublimation as a method of matrix application for mass spectrometric imaging. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 18 (9), 1646-1652 (2007).
  30. Thomas, A., Charbonneau, J. L., Fournaise, E., Chaurand, P. Sublimation of new matrix candidates for high spatial resolution imaging mass spectrometry of lipids: Enhanced information in both positive and negative polarities after 1,5-diaminonapthalene deposition. Analytical Chemistry. 84 (4), 2048-2054 (2012).
  31. Huizing, L. R., et al. Development and evaluation of matrix application techniques for high throughput mass spectrometry imaging of tissues in the clinic. Clinical Mass Spectrometry. 12, 7-15 (2019).
  32. Anderton, C. R., Chu, R. K., Tolić, N., Creissen, A., Paša-Tolić, L. Utilizing a robotic sprayer for high lateral and mass resolution MALDI FT-ICR MSI of microbial cultures. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 27 (3), 556-559 (2016).
  33. Gilmore, M. S., Clewell, D. B., Ike, Y., Shankar, N. Enterococci: From commensals to leading causes of drug resistant infection. Massachusetts Eye and Ear Infirmary. , (2014).

Play Video

Bu Makaleden Alıntı Yapın
Specker, J. T., Smith, A. B., Keenan, O., Zackular, J. P., Prentice, B. M. Investigation of Microbial Cooperation via Imaging Mass Spectrometry Analysis of Bacterial Colonies Grown on Agar and in Tissue During Infection. J. Vis. Exp. (189), e64200, doi:10.3791/64200 (2022).

View Video