Протокол описывает получение колонок клеточной мембранно-аффинной хроматографии (CMAC) с иммобилизованными фрагментами клеточной мембраны, содержащими функциональные трансмембранные тропомиозинкиназные рецепторы В-белки. Также объясняется использование колонок CMAC для идентификации специализированных растительных метаболитов, взаимодействующих с этими рецепторами и присутствующих в сложных природных смесях.
Химические вещества, синтезируемые растениями, грибами, бактериями и морскими беспозвоночными, были богатым источником новых лекарственных средств и свинец. Лекарства, такие как статины, пенициллин, паклитаксел, рапамицин или артемизинин, обычно используемые в медицинской практике, были впервые идентифицированы и выделены из натуральных продуктов. Однако идентификация и выделение биологически активных специализированных метаболитов из природных источников является сложным и трудоемким процессом. Традиционно отдельные метаболиты выделяют и очищают от сложных смесей после экстракции биомассы. Впоследствии выделенные молекулы тестируются в функциональных анализах для проверки их биологической активности. Здесь мы представляем использование колонок клеточной мембранной аффинной хроматографии (CMAC) для идентификации биологически активных соединений непосредственно из сложных смесей. Колонки CMAC позволяют идентифицировать соединения, взаимодействующие с иммобилизованными функциональными трансмембранными белками (TMP), встроенными в их нативную фосфолипидную двухслойную среду. Это целенаправленный подход, который требует знания TMP, активность которого предполагается модулировать с недавно идентифицированным кандидатом на низкомолекулярное лекарство. В этом протоколе мы представляем подход к подготовке колонок CMAC с иммобилизованным тропомиозинкиназным рецептором B (TrkB), который стал жизнеспособной мишенью для открытия лекарств для многочисленных расстройств нервной системы. В этой статье мы предоставляем подробный протокол для сборки колонки CMAC с иммобилизованными рецепторами TrkB с использованием клеточных линий нейробластомы, чрезмерно экспрессирующих рецепторы TrkB. Далее представлен подход к исследованию функциональности колонки и ее использование при идентификации специализированных растительных метаболитов, взаимодействующих с рецепторами TrkB.
Ботанические смеси богаты фармакологически активными соединениями1, служащими хорошим источником для идентификации новых лекарственных хитов и свинец 2,3,4,5. Открытие новых лекарств из натуральных продуктов было плодотворным подходом, и многие одобренные в настоящее время лекарства произошли из соединений, впервые идентифицированных в природе. Химическое разнообразие природных соединений трудно сопоставить с искусственными библиотеками химически синтезированных молекул. Многие природные соединения взаимодействуют и модулируют мишени человеческого белка и могут считаться эволюционно оптимизированными лекарственными молекулами6. Эти природные соединения особенно хорошо подходят для идентификации лекарственного свинца для использования при неврологических расстройствах6. Два из одобренных в настоящее время FDA препаратов для лечения болезни Альцгеймера (БА) получены из природных алкалоидов, а именно: галантамин и ривастигмин (производное физостигмина)6. L-DOPA, в настоящее время наиболее часто назначаемый препарат при болезни Паркинсона, был впервые идентифицирован из широкой фасоли (Vicia faba L.) 7. Перголид и лизурид, агонисты дофаминергических рецепторов являются производными природных алкалоидов спорыньи из паразитического гриба Claviceps purpurea8. Резерпин, алкалоид, выделенный из индийского змеиного корня (Rauvolfia serpentina (L.) Benth. ex Kurz), был одним из первых антипсихотических препаратов9. В последнее время дисрегулируемый иммунный ответ и системное воспаление были связаны с развитием многочисленных неврологических заболеваний, таких как большое депрессивное расстройство или нейродегенеративные заболевания10. Было обнаружено, что растительная диета вместе с другими вмешательствами в образ жизни улучшает когнитивные и функциональные способности у пожилых людей 11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21 . Было обнаружено, что некоторые электрофильные молекулы, принадлежащие тритерпенам и полифенолам, модулируют воспалительные реакции как в моделях in vitro, так и in vivo 12. Например, природные соединения, содержащие α β-ненасыщенного карбона (например, куркумин, циннамальдегид) или изотиоцианатную группу (например, сульфорафан), препятствуют димеризации Toll-подобного рецептора-4 (TLR4), ингибируя последующий синтез провоспалительных цитокинов в мышиной интерлейкин-3-зависимой про-В клеточной линии12,22 . Эпидемиологические данные убедительно указывают на то, что диетические фитохимические вещества, присутствующие в сложных пищевых матрицах, также могут представлять собой жизнеспособный источник новых лекарственных проводов6.
Одним из основных препятствий в идентификации биологически активных молекул, присутствующих в растительных экстрактах, включая растительную пищу, является сложность исследуемых образцов. Традиционно отдельные соединения выделяют, очищают и впоследствии проверяют на биологическую активность. Такой подход обычно приводит к выявлению наиболее распространенных и хорошо охарактеризованных соединений. Подходы к открытию фенотипических лекарств без определенной молекулярной мишени основаны на био-управляемом фракционировании сложных смесей23. При таком подходе экстракт фракционируется на менее сложные субфракции, которые впоследствии тестируются в фенотипических анализах. Выделение и очистка активных соединений определяются биологической активностью, проверенной в анализе. Знание идентичности указанной лекарственной мишени может значительно ускорить идентификацию фармакологически активных соединений, присутствующих в сложных смесях. Эти подходы обычно основаны на иммобилизации молекулярной мишени, например, фермента, на твердой поверхности, такой как магнитные шарики23. Иммобилизованные мишени впоследствии используются в скрининговых экспериментах, что приводит к выделению соединений, взаимодействующих с мишенью. Хотя этот подход широко использовался при идентификации соединений, нацеленных на цитозольные белки, он реже применялся при идентификации химических веществ, взаимодействующих с трансмембранными белками (TMP)23. Дополнительная проблема в иммобилизации TMP связана с тем, что активность белка зависит от его взаимодействия с фосфолипидами клеточной мембраны и другими молекулами в бислое, такими как холестерин23,24. Важно сохранить эти тонкие взаимодействия между белками и их нативной фосфолипидной двухслойной средой при попытке обездвижить трансмембранную мишень.
При сродстве клеточной мембраны (CMAC) фрагменты клеточной мембраны, а не очищенные белки, иммобилизуются на искусственной мембране (IAM) частиц стационарной фазы23. Стационарные фазы IAM получают путем ковалентного связывания аналогов фосфатидилхолина с кремнеземом. В последнее время были разработаны новые классы стационарных фаз IAM, в которых свободные аминные и силаноловые группы являются концевыми (IAM. ПК. Частицы DD2). При подготовке колонок CMAC фрагменты клеточной мембраны иммобилизуются на поверхность частиц IAM путем адсорбции.
Колонки CMAC до настоящего времени использовались для иммобилизации различных классов TMP, включая ионные каналы (например, никотиновые рецепторы), GPCR (например, опиоидные рецепторы), переносчики белка (например, p-гликопротеин) и т.д.24. Иммобилизованные белковые мишени были использованы для характеристики фармакодинамики (например, константа диссоциации, Kd) или определения кинетики связывания (kon и koff) лигандов малых молекул, взаимодействующих с мишенью, а также в процессе идентификации потенциальных новых лекарственных проводов, присутствующих в комплексных матрицах24 . Здесь мы представляем подготовку колонок CMAC с иммобилизованным тропомиозинкиназным рецептором B (TrkB), который стал жизнеспособной мишенью для открытия лекарств для многочисленных расстройств нервной системы.
Предыдущие исследования показали, что активация нейротрофического фактора мозга (BDNF) / пути TrkB связана с улучшением некоторых неврологических заболеваний, таких как AD или большое депрессивное расстройство 25,26,27,28. Сообщалось, что уровни BDNF и экспрессия TrkB рецептора TrkB снижаются при AD, и аналогичные снижения ухудшают функцию гиппокампа на животных моделях AD29. Снижение уровня BDNF было зарегистрировано в сыворотке крови и головном мозге пациентов с БА 30,31,32. Было обнаружено, что сверхэкспрессия тау или гиперфосфорилирование снижают экспрессию BDNF в первичных нейронах и животных моделях AD 33,34,35. Кроме того, сообщалось, что BDNF оказывает защитное воздействие на нейротоксичность in vitro и in vivo36, индуцированную β-амилоидом. Было показано, что прямое введение BDNF в мозг крысы улучшает обучение и память у животных с когнитивными нарушениями37. BDNF / TrkB стал действительной мишенью для улучшения неврологических и психических расстройств, включаяAD 28,38. Нацеливание на сигнальный путь BDNF / TrkB для разработки методов лечения при БА потенциально улучшит наше понимание заболевания39. К сожалению, сам BDNF не может быть использован в качестве лечения из-за его плохих фармакокинетических свойств и неблагоприятных побочных эффектов40. Низкомолекулярные активаторы путей TrkB/BDNF были исследованы в качестве потенциальных лигандов TrkB 41,42,43. Среди протестированных агонистов малых молекул было показано, что 7,8-дигидроксифлавон (7,8-DHF) активирует путь BDNF / TrkB 41,44,45,46. Производное 7,8-DHF (R13; 4-Oxo-2-фенил-4H-хромен-7,8-диил-бис(метилкарбамат)) в настоящее время рассматривается в качестве возможного лекарственного средства для AD47. Недавно было показано, что несколько антидепрессантов работают через прямое связывание с TrkB и содействие передаче сигналов BDNF, что еще больше подчеркивает важность использования TrkB в качестве действительной цели для лечения различных неврологических расстройств48.
Протокол описывает процесс сборки функциональной колонки TrkB и отрицательной управляющей колонки TrkB-NULL. Колонки характеризуются использованием известного натурального продукта мелкомолекулярного лиганда: 7,8-DHF. Дополнительно описан процесс скрининга сложных матриц, используя в качестве примера растительный экстракт, для идентификации соединений, взаимодействующих с TrkB.
Идентификация активных соединений, присутствующих в сложных смесях специализированных метаболитов, является очень сложной задачей23. Традиционно выделяют отдельные соединения, а их активность тестируют в разных анализах. Такой подход является трудоемким и дорогостоящим…
The authors have nothing to disclose.
Z.C.A. была поддержана Советом по научным и технологическим исследованиям Турции (TUBITAK) 2219 – Международная программа постдокторских исследований. Исследование, о котором сообщается в этой публикации, было поддержано Национальным центром комплементарной и интегративной медицины Национальных институтов здравоохранения под номером 1R41AT011716-01. Эта работа также была частично поддержана грантом Американского общества фармакогнозии, грантом Regis Technologies для Лос-Анджелеса. Содержание является исключительной ответственностью авторов и не обязательно отражает официальную точку зрения Национальных институтов здравоохранения.
7-8 Dihydroxyflavone hydrate | Sigma-Aldrich | D5446-10 mg | ≥98% (HPLC) |
Adenosine 5'-triphosphate (ATP) disodium salt hydrate | Sigma-Aldrich | A2383-1 g | |
Ammonium acetate | VWR Chemicals BDH | BDH9204-500 g | |
BDNF antibody | Invitrogen | PA5-15198-400 μL | Primary antibody; 2 mg/mL of concentration |
Benzamidine hydrochloride hydrate | Sigma-Aldrich | B6506-25 g | |
Brain derived neurotrophic factor (BDNF) human | Sigma-Aldrich | B3795-10 μg | Recombinant, expressed in E. coli, lyophilized powder, suitable for cell culture |
Calcium chloride | VWR Analytical | BDH9224-1 kg | |
Cholic acid sodium salt | Alfa Aesar | J62050-100 g | |
Dounce homogenizer | VWR | 71000-516 | 40 mL, 285 mm (overall lenght), 32 x 140 mm (O.D. x H) |
Ethanol | Sigma-Aldrich | 493511 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | VWR Analytical | BDH-9232-500 g | |
Fetal bovine serum | Sigma-Aldrich | F2442-500 mL | sterile-filtered, suitable for cell culture |
G418 disulfate salt solution | Sigma-Aldrich | G8168-100 mL | 50 mg/mL in H2O, 0.1 μm filtered, suitable for cell culture |
Glycerol | VWR Life Science | E520-100 mL | |
Immobilized artificial membrane (IAM.PC.DD2) | Regis Technologies, Inc. | 1-771050-500 | |
Magnesium chloride hexahydrate | VWR Analytical | BDH9244-500 mL | |
Methanol | Sigma-Aldrich | 322425 | |
Nikon Plan Fluor | Nikon | Confocal laser scanning microscope | |
Normal goat serum (10%) | Life Technologies | 50197Z | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma-Aldrich | P4333-100 mL | |
Phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) | Thermo Scientific | 36978-5 g | |
Phosphate buffered saline (PBS) | VWR Life Science | K812-500 mL | 1x |
Potassium chloride | VWR Chemicals BDH | 0395-1 kg | |
Protease inhibitor cocktail | VWR Life Science Ambreso | M221-1 mL | Proteomics grade, containing 50 mM AEBSF, 30 µM aprotonin, 1 mM bestatin, 1 mM E-64 and 1 mM leupeptin |
RPMI-1640 medium | Sigma-Aldrich | R8758-500 mL | with L-glutamine and sodium bicarbonate, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture |
Secondary antibody goat anti-rabbit IgG (H+L) | Invitrogen Alexa Flour Plus 488 | A32731 | |
SH-SY5Y Neuroblastoma cell lines expressing Trk-B | Kerafast | ECP007 | |
SH-SY5Y Trk-NULL cell line | Kerafast | ECP005 | |
Snake skin dialysis tubing | Thermo Scientific | 88245 | 10K MWCO, 35 mm dry I.D. |
Sodium azide | Sigma-Aldrich | S2002 | |
Sodium chloride | BDH VWR Analytical | BDH9286-2.5 kg | |
Tricorn 5/20 column | GE Healthcare | 24-4064-08 | |
Tris-HCl | VWR Life Science | 0497-1 kg | |
Trypsin-EDTA solution | Sigma-Aldrich | T4049-500 mL | 0.25%, sterile-filtered, suitable for cell culture, 2.5 g porcine trypsin and 0.2 g EDTA |