Questo proctocollo mira a fornire un metodo per l’imaging mitocondriale In vitro e in vivo Ca2+ in astrociti e neuroni.
Il Ca2+ mitocondriale svolge un ruolo fondamentale nel controllo del buffering citosolico di Ca2+, del metabolismo energetico e della trasduzione del segnale cellulare. Il sovraccarico di Ca2+ mitocondriale contribuisce a varie condizioni patologiche, tra cui la neurodegenerazione e la morte cellulare apoptotica nelle malattie neurologiche. Qui presentiamo un approccio molecolare specifico per tipo cellulare e mitocondri per l’imaging mitocondriale Ca2+ in astrociti e neuroni in vitro e in vivo. Abbiamo costruito plasmidi di DNA che codificano gli indicatori Ca2+ geneticamente codificati (GECI) GCaMP5G o GCaMP6s (GCaMP5G/6s) con promotori astrociti e neuronali specifici gfaABC1D e CaMKII e sequenza di targeting dei mitocondri (mito-). Per l’imaging mitocondriale in vitro Di Ca2+, i plasmidi sono stati trasfettati in astrociti e neuroni in coltura per esprimere GCaMP5G/6s. Per l’imaging mitocondriale in vivo di Ca2+, sono stati preparati vettori virali adeno-associati (AAV) e iniettati nel cervello del topo per esprimere GCaMP5G/6s nei mitocondri negli astrociti e nei neuroni. Il nostro approccio fornisce un mezzo utile per visualizzare la dinamica mitocondriale Ca2+ in astrociti e neuroni per studiare la relazione tra segnalazione citosolica e mitocondriale Ca2+, così come le interazioni astrociti-neuroni.
I mitocondri sono organelli subcellulari dinamici e sono considerati le centrali cellulari per la produzione di energia. D’altra parte, i mitocondri possono assorbire Ca2+ alla matrice in risposta a aumenti locali o citosolici di Ca2+. L’assorbimento mitocondriale di Ca2+ influenza la funzione mitocondriale, compresi i processi metabolici come le reazioni nel ciclo dell’acido tricarbossilico (TCA) e la fosforilazione ossidativa, e regola le proteine sensibili al Ca2+in condizioni fisiologiche1,2,3,4. Il sovraccarico mitocondriale di Ca2+ è anche un fattore determinante per la morte cellulare, compresa la necrosi e l’apoptosi in vari disturbi cerebrali5,6,7. Provoca l’apertura dei pori di transizione della permeabilità mitocondriale (mPTPs) e il rilascio di cofattore caspasi, che avvia la morte cellulare apoptotica. Pertanto, è importante studiare la dinamica e la manipolazione mitocondriale di Ca2+ nelle cellule viventi per comprendere meglio la fisiologia e la patologia cellulare.
I mitocondri mantengono l’omeostasi della matrice Ca2+ attraverso un equilibrio tra l’assorbimento di Ca2+ e l’efflusso. L’assorbimento mitocondriale di Ca2+ è mediato principalmente dagli uniportatori mitocondriali Di Ca2+ (MCU), mentre l’efflusso mitocondriale di Ca2+ è mediato dagli scambiatori Na+-Ca2+-Li+ (NCLX) e dagli scambiatori H+/Ca2+ (mHCX)8. L’equilibrio può essere perturbato attraverso la stimolazione dei recettori accoppiati alla proteina G (GPCR)9. L’omeostasi mitocondriale di Ca2+ è anche influenzata dal tamponamento mitocondriale dalla formazione di complessi insolubili xCa2+-xPO4x-xOH8.
Le variazioni intracellulari e mitocondriali della concentrazione di Ca2+ ([Ca2+])possono essere valutate mediante indicatori fluorescenti o luminescenti di Ca2+. Il legame di Ca2+ agli indicatori provoca modifiche spettrali, consentendo la registrazione di cellule libere [Ca2+]in tempo reale in cellule vive. Attualmente sono disponibili due tipi di sonde per monitorare i cambiamenti di Ca2+ nelle cellule: indicatori chimici organici e indicatori Ca2+ geneticamente codificati (GECI). Generalmente, diverse varianti con diverse affinità di Ca2+ (basate su Kd),proprietà spettrali (lunghezze d’onda di eccitazione ed emissione), intervalli dinamici e sensibilità sono disponibili per le questioni biologiche in esame. Sebbene molti indicatori organici sintetici di Ca2+ siano stati utilizzati per l’imaging citosolico di Ca2+, solo pochi possono essere caricati selettivamente nella matrice mitocondriale per l’imaging mitocondriale Ca2+, con Rhod-2 che è il più utilizzato (per le recensioni vedi10,11). Tuttavia, Rhod-2 ha un grosso svantaggio di perdite durante esperimenti a lungo termine; inoltre, è suddiviso tra mitocondri, altri organelli e il citosol, rendendo difficili le misurazioni assolute in diversi sottocompartimenti. Al contrario, utilizzando promotori specifici per tipo cellulare e sequenze di targeting del compartimento subcellulare, i GECI possono essere espressi in diversi tipi di cellule e compartimenti subcellulari per l’imaging Ca2+ specifico per cellula e compartimento in vitro o in vivo. Gli indicatori GCaMP Ca2+ basati sull’intensità di fluorescenza a lunghezza d’onda singola sono recentemente emersi come principali GECI12,13,14,15,16. In questo articolo, forniamo un protocollo per il targeting dei mitocondri e l’espressione specifica del tipo cellulare di GCaMP5G e GCaMP6s (GCaMP5G / 6s) in astrociti e neuroni e l’imaging dell’assorbimento mitocondriale di Ca2+ in questi tipi di cellule. Utilizzando questo protocollo, l’espressione di GCaMP6G/6s nei singoli mitocondri può essere rivelata e l’assorbimento di Ca2+ in risoluzione mitocondriale singola può essere ottenuto in astrociti e neuroni in vitro e in vivo.
In questo articolo, forniamo un metodo e un protocollo per l’imaging dei segnali mitocondriali Ca2+ in astrociti e neuroni. Abbiamo implementato strategie di targeting dei mitocondri e specifiche per tipo cellulare per esprimere GECI GCaMP5G/6s. Per indirizzare GCaMP5G / 6 nei mitocondri, abbiamo incluso una sequenza di targeting dei mitocondri nei plasmidi. Per esprimere GCaMP5G/6s in astrociti e neuroni in vivo,abbiamo inserito un promotore astrocitario specifico gfaABC1D e un promotore neurone-spec…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato supportato dal National Institute of Health National Institute of Neurological Disorders and Stroke (NINDS) concede R01NS069726 e R01NS094539 a SD. Ringraziamo Erica DeMers per la registrazione audio.
Artificial tears ointment | Rugby | NDC-0536-6550-91 | 83% white petrolatum |
Cyanoacrylate glue | World Precision Instruments | 3M Vetbond Adhesive | |
Dissecting stereomicroscope | Nikon | SMZ 2B | Surgery |
Dumont forceps with fine tip | Fine Science Tools | 11255-20 | for removal of dura |
Glass cover slips, 0.13-0.17 mm thick | Fisher Scientific | 12-542A | for cranial window cover |
High speed micro drill | Fine Science Tools | 18000-17 | with bone polishing drill bit |
Injection syringe | Hamilton | 2.5 ml | for viral injection |
Ketamine | VEDCO | NDC-50989-996-06 | 100 mg/kg body weight |
Low melting point agarose | Sigma-Aldrich | A9793 | reducing movement artifacts |
Metal frame | Custom-made | see Fig 1 | for brain attachment to microscope stage |
MicroSyringe Pump Controller | World Precision Instruments | UMP3 | Injection speed controller |
Mouse stereotaxic device | Stoelting | 51725 | for holding mice |
Perfusion chamber | Warner Instruments | 64-0284 | |
Persfusion system | ALA Scientific Instruments | ALA-VM8 | |
Self-regulating heating pad | Fine Science Tools | 21061 | to prevent hypothermia of mice |
Sulforhodamine 101 | Invitrogen | S-359 | red fluorescent dye to label astrocytes |
Surgical scissors, 12 cm | Fine Science Tools | 14002-12 | for dissection |
Trephine | Fine Science Tools | 18004-23 | for clearing of material |
Xylazine | VEDCO | NDC-50989-234-11 | 10 mg/kg body weight |