本プロトコルは、マウス(Mus musculus)およびフェレット(ムステラ・プトリウス・フロ)を複数の脳領域から慢性および急性の生体内電気生理学的記録に対して炭素繊維微小電極アレイを構築する手順を説明する。各ステップは、マイクロ電極アレイ移植に生炭素繊維を購入した後、微小電極アレイ構築に重点を置いて詳細に説明される。
多チャンネル電極アレイは、働く脳に関する洞察を提供し、単一細胞および回路レベルで神経プロセスを解明するのに役立ちます。これらのツールの開発は、複雑な行動や認知を理解し、臨床応用を進めるために重要です。しかし、長期間にわたって細胞集団を安定的かつ継続的に記録することは依然として課題である。テトロードやシリコンアレイなどの多くの一般的な電極は、挿入時に損傷を引き起こす大きな交差直径を特徴とし、神経死に関連する慢性反応性組織応答を引き出し、安定した連続的な神経活動の記録を妨げる。さらに、ほとんどのワイヤバンドルはチャネル間の広い間隔を示し、小さな領域に集まった多数の細胞からの同時記録を排除する。このプロトコルに記載されている炭素繊維微小電極アレイは、これらの懸念に対するアクセス可能なソリューションを提供します。本研究は 、生体内の急性および慢性記録の両方に使用できる炭素繊維微小電極アレイを作製するための詳細な方法を提供する。これらの電極の物理的特性は、高いセル密度で安定した連続的な長期記録に最適であり、研究者は数ヶ月にわたって単一のユニットから堅牢で明確な録音を行うことを可能にします。
電極と電極アレイは、脳が神経レベルで情報を処理する方法を理解するための貴重なツールです。電気生理学的記録は2世紀以上にわたって達成されてきましたが、個々のニューロンのスパイクを捉えるために必要な空間的および時間的解像度で神経回路全体の活性を同時に測定することはまだ不可能です。脳波2、陽電子放射地形3、および機能的磁気共鳴画像4のような非侵襲的な方法は、脳全体の測定を可能にするが、それらは、神経回路2、5の活動を解決するために必要な空間的および時間的分解能を達成することができない。対照的に、電圧感受性色素や遺伝的にコード化されたカルシウム指標を用いた光学イメージング法は、単一単位の空間分解能を達成することができるが、低い時間的分解能と低い選択性3、4、5、6などの問題を引き起こす。電気録音は、これらの方法に代わる強力な方法です。記録電極は比類のない時間分解能を提供し、ユーザーが脳の任意の領域でスパイク時間の精度で測定を行うことを可能にする 7.さらに、慢性的に埋め込まれた多電極アレイ(MEA)は、大規模な(数十〜数百の細胞)、1つの細胞記録を、数日から8ヶ月にわたって動物を振る舞うことを可能にする。しかし、高密度で記録するシリコンプローブは、フットプリントが大きく、非常に侵襲性が高く、かつ慢性的に埋め込まれたアレイは炎症応答、組織カプセル化、および神経死10、11、12、13を生成することが多い。
既存の電極の限界は、安定した、高解像度、長期的な記録を可能にする最近の革新をもたらしました。典型的な電極は、タングステンや白金イリジウムなどの金属導体から成り、またはシリコンまたはポリマーベースである。金属ベースのマイクロワイヤアレイは、長期間、安定した録音を維持することができますが、10-200 μm14の範囲の単一のワイヤの直径で、はるかに大きなフットプリントを持っています。対照的に、シリコンベースの電極アレイは、高い空間分解能で記録を得るが、比較的堅い設計のために、それらは一般に、15ヶ月にわたって同じニューロンからの信号および記録を維持することができない。シリコン系アレイの最近の発展は、慢性的な記録を確実に行うことができる電極をもたらしたが、これらのアレイは、より大きな動物の深部脳領域からの記録に使用することができず、線形記録9を目的としている。ポリマーアレイの進歩により、単一ユニットの柔軟性と記録安定性が向上し、近い将来に高密度記録の可能性を提供しますが、現時点では可用性は限られています8,16,17.炭素繊維は、ここで説明する既製材料で高密度の記録を可能にします。
炭素繊維記録マイクロ電極は、ガラスマイクロピペットに挿入された単一の炭素繊維からなる最初の炭素繊維電極で、何十年も使用されてきました。これらの微小電極は、単一単位の細胞外記録に使用され、シグナル対ノイズ比は最高のタングステンガラス微小電極に匹敵するものであったが、柔軟性、低インピーダンス値、および18,19を製造する簡素さのために有利であった。炭素繊維のバイオセンシング能力により、炭素繊維電極アレイの開発が加速しました。生体適合性の増加と優れた電気伝導性に加えて、高温抵抗、低相対密度、高い引張強度、低屈曲剛性、高検出感度、および小さな断面積10、12を含むユニークな特性のセットを備えています。これらの特性のすべては、単一のニューロンの慢性的で安定した、高収率の記録を容易にする炭素繊維微小電極アレイ(CFEAs)の開発を動機づけています。このようなCFEAは、手で作製することができます20,21 (図 1), 数ヶ月にわたって単一のニューロンを保持することができる微小電極アレイを生成.ここに記載されているCFEAのアクセス可能な構築プロセスは、2つの種における個々のニューロンの急性および慢性の記録のために2つの方法で適応されている。
このプロトコルは、急性および慢性使用の両方に対して機能CFEAを構築するために必要な各ステップを記述する。説明されたプロセスは、研究者のニーズに合わせてカスタマイズ可能であり、数ヶ月にわたって単一のニューロンを監視するためのアクセス可能で安価なオプションとなっています。このプロトコルは、麻酔動物への移植から数分以内に堅牢な単一ユニット活性を記録し、目を覚まし、動物を振る舞い、これらのCFEAが神経応答の短期的および長期的な変化を研究する可能性を示す可能性を示す。
記述されたプロトコルのステップは、数ヶ月にわたって密かつ安定的に明確な単一ユニットを記録する機能を備えた、低限界コスト(<$100.00)で迅速に完了できる効率的な手順を実現するために、時間の経過とともに徹底的にテストされ、改善されました。建設ステップは1日未満で完了することができ、任意の主要な商業アレイに匹敵する電気生理学的信号を生成します。CFEAは、同様の商用アレイよりもはるかに小さなフットプリント(繊維の16チャネルバンドルは直径が〜26μm)を有し、その生体適合性は、それらを長期使用13に適している。重要なのは、同等のパフォーマンスを持つ機能する CFEA を生成するために従わなければならないいくつかの重要なステップと指示があることです。
炭素繊維の脆弱性のため、細心の注意を払って取り扱う必要があります。鋭利な鉗子や他の道具で取り扱うと、繊維が破損する可能性があります。また、繊維が吹き飛ばされないように、空気の動きが限られた空間にCFEAを構築することが重要です。繊維の背面部分を炎上する場合、ライターは約1 sの間、非常に短く前後の動きで移動する必要があります。絶縁のこの除去に続くステップは、作業チャネルを持つ電極を構築するために重要です。炎の先端は付加的な接触なしで治具に供給されるべきである。次に、洗面器を歯科用セメントで満たす場合、セメントを慎重に塗布し、チャネルと漏斗流域を完全に満たし、それらを充填せずに開口部を閉じることが重要です。歯科用セメントは、続行する前にUV光で完全に硬化する必要があります。これが完了したら、銀色の塗料は、完全に充填されたが、こぼれ落ちるまで、各チャネルに注入する必要があります。これはプロセスの中で最も可変的なステップです。オーバー充填は、チャネル間のクロストークを生成することができ、不十分な充填は、接続障害につながる可能性があります。25G針を使用して銀色の塗料を注入できない場合、溶液が粘性過多である可能性が高く、この場合、少量の塗料シンナーを添加してより流動的な溶液を作成することができます。すべてのチャネルが充填され、ヘッドステージコネクタが挿入されたら、歯科用セメントでコネクタを固定する前に、アレイが24時間硬化できるようにすることが重要です。そうしないと、接続されたチャンネルの数が減少することがわかりました。信号取得システムとの接続時にコネクタが切れないように、寛大な量の歯科用セメントを塗布することも重要です。それらが切り離された場合、銀色のペンキでチャンネルの繰り返し充填で再接続を試みることは可能ですが、ユーザーはCFEAのインピーダンス値をテストして、接続されたチャンネルの数を評価する必要があります。歯科用セメントを一晩硬化させることは、潜在的な剥離を防ぐのにも役立ちます。
電極のインピーダンスを測定すると、接続されたチャンネルの正確な推定が得られます。これは、地盤と参照線と炭素繊維先端をPBSに浸した後に行うことができます。高インピーダンス(>15 MΩ)は、開いた未接続のチャネルを示しています。電流と電気めっきを注入する前に、接続されたチャネルは、このプロセスで大幅に減少する必要があるインピーダンス値の範囲を持つことができます。16チャンネル電極あたりの接続チャネル数(電流インジェクション後のインピーダンス<4 MΩ)の平均は12.96±2.74(平均sD±。N = 48電極)。多数の電気めっき時間を試験し、30sが記録部位間で優れた信号絶縁を生み出した(図5)。PEDOT-pTS12、24、25、26およびPEDOT-TFB21が炭素繊維記録部位を準備するための信頼できるオプションを提供することは十分に確立されているが、我々は金でめっき、慢性注入のための電気めっき電極のための実証済みで信頼できる方法27、28を発見した。、移植の容易さを増加させ、電極先端が一緒に凝集するのを防いだ。この方法は、平均で0.2MΩ未満の最終インピーダンス値を生成する上で、PEDOT-TFB21およびPEDOT-pTS26を使用して達成された値に匹敵することを証明する。
マイクロ電極アレイを埋め込む際には、顕微鏡下での炭素繊維先端の挿入を視覚的に追うことが重要です。正常な挿入は、繊維の曲げなしで、明らかであるべきです。繊維が座屈しているように見える場合は、脳に正常に入る可能性は低いです。この場合、プローブの角度は 2 回目の試行に合わせて調整する必要があります。このプロセスは、プローブの挿入が成功するまで続行できます。電極が所望の深さになると、少なくとも30分待つと、プローブが最適な信号取得(急性記録)のために解決できることがわかりました。
CFEAは、小型フットプリントとバイオ互換性に加えて、建設の容易さと低コストのために、商用アレイに対して堅牢でカスタマイズ可能な代替手段を提供します。このプロトコルで詳細に説明されている CFEA の最大の制限は、そのスケーラビリティです。その構造の手動の性質のために、何百もの記録サイトを持つ設計にスケールアップすることは実用的ではないかもしれません。さらに、ナノテクノロジーを用いた微小電極アレイ製造の進歩により、ここで説明する方法よりも大規模な集団記録が可能になります。しかし、このプロトコルは、炭素繊維電極のベンチトップ製造に関心のあるラボにCFEAアクセシビリティを提供します。我々は、その時間スケールでの我々の観測の典型的な代表的な単一チャネルによって示されるように、120日間の慢性実験の間にスパイク振幅の安定性の損失または減少した堅牢性を観察しなかった(図6A–E)。さらに、CFEAは、マウスに移植してから11ヶ月後に4つの単一ユニットが識別可能であったため、持続的な単一ユニット活動の能力を示しています(図6G,H)。また、短期間での単一ニューロンの研究において、他の多くの市販電極に対して利点を提供する、安定した単一ユニットの記録を鋭く得ることができる(図7)。将来的には、このような柔軟で生体適合性の低いプローブの開発は、複雑なプロセスの研究を可能にします。これらのツールは、継続的で長期的な安定性を必要とする脳と機械のインターフェース(BM)でのアプリケーションを含む、神経技術の進歩に大きな有用性を提供します。
The authors have nothing to disclose.
グレッグ・ギッチュンツの電極設計と建設に関する指導と、研究室と施設を開放してくれたティム・ガードナーに感謝します。私たちは、16チャンネルのジグの初期バージョンを設計する際に、バイオインターフェイスとテクノロジーのコア施設とニール・リッター、ジョン・スパイレアス、デビッド・ランデスマンでのPDS使用に関する彼の支援をしてくれたクリスト・ミハスに感謝したいと思います。ハーバード大学ナノスケールシステムセンターでのSEMイメージングの支援に対するティム・キャバナウの支援に感謝します。
#10 scalpel blade | Fisher Scientific | 14-840-15 | Building tool |
16-channel CFEA Jig | Realize Inc. | CFMA component | |
16-channel Omnetics connector | Omnetics | A79014-001 | CFMA component |
25 G needle | Fisher Scientific | 14-840-84 | Building tool – sharp-tipped |
30 G needle | Fisher Scientific | 14-841-03 | Building tool |
31 G stainless steel 304 hypodermic round tubing | Small Parts Inc | B000FMYN38 | For guide tube |
32-channel CFEA jig | Realize Inc. | CFMA component | |
32-channel Omnetics connector | Omnetics | A79022-001 | CFMA component |
6 in cotton tip applicators | Fisher Scientific | 22-363-156 | Building tool |
Acetone | Fisher Scientific | A16P4 | Building tool |
AutoCad 3D printing software | Autodesk | Computer-aided design tool/ 3D modeling software | |
Autodesk Fusion 360 | Autodesk | Computer-aided design tool/ 3D modeling software | |
BD disposable syringes | Fisher Scientific | 14-823-30 | 1 mL |
Carbon fibers | Good Fellow USA | C 005725 | 7 μm epoxy sized |
Cassettes and cassette holder | For coating fibers | ||
Clear tape | Scotch | For coating raw fibers | |
Deionized water | Electroplating component | ||
Double-sided tape | Scotch | For coating raw fibers | |
Flowable Dental Composite | Pentron | Flow-It ALC | CFMA component/ UV cured dental cement |
Gold plating solution | Sifco ASC | 5355 | 10.0-20.0% glycerol, 1.0-5.0% ethylenediamine, 1.0-5.0% acetic acid (ethylenedinitrilo)tetra-, dipotassium salt, 5.0-10.0% butanoic acid, mercapto-monogold(1+) sodium salt, 1.0–5.0% potassium metabisulfite, 55.0-82.0% water |
Jewelry clamp | Amazon | B00GRABH9K | Building tool |
JRClust | Ferret spike sorting software | ||
Lighter | BIC | LCP62DC | Building tool |
Micromanipulator | Scientifica | PS-7000C | For guide tube |
Microscissors | Fisher Scientific | 08-953-1B | Building tool |
MountainSort | Mouse spike sorting software | ||
NanoZ 16-channel adapter | Multi-channel systems | ADPT-nanoZ-NN-16 | Electroplating component |
NanoZ 32-channel adapter | White Matter | NZA-OMN-32 rev A | Electroplating component |
NanoZ multi-electrode impedance tester | White Matter | Electroplating component | |
Parafilm | Fisher Stockroom | 13-374-10 | Semi-transparent, flexible film with adhesive properties |
Parylene 'C' Dimer | Specialty Coating Systems | 980130-C-01LBE | For coating raw fibers |
PEG 8000 | Fisher Scientific | 25322-68-3 | Electroplating component |
Phosphate-buffered saline | Electroplating component | ||
Polyimide tubing | MicroLumen | BRAUNI001 | For guide tube |
Rotary tool | Dremel | 300124 | For guide tube |
Scalpel handle | Fine Science Tools | 10003-12 | Building tool |
Silver conductive coating | MG Chemicals | 842AR Super Shield | CFMA component |
Stereo microscope with range 6.7:1 | Motic | SMZ-168 | Building tool |
Sticky notes | Post-it | Building tool | |
Tissue wipes | Kimtech Science | 34155 | Building tool |
Tungsten wire | A-M Systems | 797550 | CFMA component |
UV curing wand | Woodpecker | Building tool | |
Vacuum deposition chamber | Specialty Coating Systems | Labcoter 2 (PDS 2010) |