本研究描述了一种全面的心血管磁共振成像(CMR)方案,以量化小鼠心脏的左心室功能参数。该协议描述了CMR图像的采集,后处理和分析以及不同心脏功能参数的评估。
小鼠模型对理解健康心脏功能中涉及的遗传和生理因素,扰动如何导致病理学以及如何治疗心肌疾病做出了重大贡献。心血管磁共振成像(CMR)已成为心脏解剖结构和功能全面 体内 评估的不可或缺的工具。该协议显示了使用7-Tesla CMR对小鼠心脏左心室功能,心肌劳损和血流动力学力的详细测量。首先,演示动物在扫描仪中的准备和定位。执行测量扫描以在各种短轴和长轴视图中规划成像切片。采集一系列前瞻性心电图触发的短轴 (SA) 影像(或 CINE 图像),覆盖从顶点到根部的心脏,捕捉收缩末期和舒张末期。随后,在脑室中SA视图中获取单片,回顾性门控CINE图像,并在2,3和4腔视图中获取,然后使用定制和开源软件重建为高时间分辨率CINE图像。随后使用专用的CMR图像分析软件对CINE图像进行分析。
在 SA 收缩末期和舒张末期 CINE 图像中描绘心肌内膜和心外膜边界,可以计算收缩末期和舒张末期体积、射血分数和心输出量。勾勒出所有心脏时间范围的脑室中SA CINE图像,以提取详细的体积 – 时间曲线。其时间导数允许将舒张功能计算为早期充盈波和心房收缩波的比率。最后,使用特征跟踪描绘2腔、3腔和4腔视图中的左心室心内膜壁,从中计算出纵向心肌应变参数和左心室血流动力学力。总之,该协议提供了小鼠心脏参数的详细 体内 定量,可用于研究各种心脏病小鼠模型中心脏功能的时间变化。
小动物的心血管磁共振(CMR)提供了心肌功能的精确体内测量,使CMR成为心血管疾病临床前研究的最佳工具。由于CMR图像中的高空间分辨率和血液与心肌之间的高对比度,因此可以描绘心内膜和外膜轮廓并计算心肌质量和心室体积1,2。尽管心率高达600次/分钟,但使用心电图(ECG)和呼吸触发可以对不同的心脏阶段(也称为CINE图像)进行高质量的测量,而不会产生呼吸运动伪影。通过这种方式,可以使用多个切片来覆盖从顶点到基底的心脏,以提取收缩功能参数,例如射血分数(EF),收缩末期体积(ESV),舒张末期体积(EDV)和心输出量(CO)3。除了基本的收缩功能评估外,最近还开发了其他CMR技术来评估舒张功能障碍4,心肌劳损5和血流动力学力(HDF)6。
心电门控允许在检测到R峰后开始MR信号采集,并在R-R间期记录定义数量的心脏期,从而与心脏周期同步。但是,以这种方式可以获得的心相数(帧速率)取决于系统在保持可接受的信噪比(SNR)和空间分辨率4的同时可以达到的最低可能重复时间(TR)。此外,由于使用高磁场梯度会暂时使ECG信号失真,因此通常在舒张末期之前停止采集。这两个因素都将此类扫描的使用限制在收缩功能评估中,因为计算其他心脏功能参数需要更好地定义左心室(LV)体积-时间曲线。
高帧率CINE图像可以通过回顾性门控获取,从而在扫描过程中连续获取MR信号,并且在射频(RF)激励后集成的导航器回波检测心脏和呼吸运动。由于CMR采集与心脏运动异步执行,因此可以将采集的MR信号分配给追溯选择的心脏帧数。这样,如果收集了足够的数据,可以重建高帧率的CINE图像4,7。然后,这允许舒张功能评估,由心房收缩引起的峰值早期充盈率(E’)和峰值晚期充盈率(A’)之间的比率表示。
在临床研究中,CINE图像可以用CMR特征跟踪进行分析,以评估心肌应变和HDF6,8。心肌应变是一种心脏变形参数,用于测量心肌节段的初始长度(通常在舒张末期长度)和最大长度(通常在收缩末期)之间的百分比差异9。心肌应变测量对于评估左心室功能具有增量价值,因为应变值可量化心肌壁缩短和增厚。缩短功能的降低可能是心内膜下纤维损伤的迹象10。心肌劳损的改变可能与EF无关,并且可能是潜在并发症的前兆。
具体而言,全球纵向应变(GLS)和全球环向应变(GCS)已被证明在表征心脏病10,11,12方面具有附加值。同样,HDF被认为是一种潜在的新参数,表明心脏功能改变6,13。这些HDF或室间压力梯度(IVPG)在心脏射血和充盈期间驱动血液运动,并受到血液和心肌之间动量交换的影响,包括主动脉瓣和二尖瓣14,15。
在这项研究中,描述了一种全面的方案,用于执行稳健的小动物CMR测量,以量化小鼠心脏的左心室功能,心肌劳损和HDF。它包含动物准备的必要步骤,使用前瞻性和回顾性门控的心脏CINE图像进行数据采集,以及使用能够计算体积测量值,E’/ A’比值,心肌劳损和心脏HDF的专用软件进行分析。该协议可用于广泛评估各种心血管疾病小鼠模型中的左心室功能。
所提出的方案描述了使用CMR成像进行纵向,非侵入性 体内 实验来分析小鼠的心脏功能。这些结果是健康动物的例子,以证明使用CINE图像量化心脏参数的可行性。但是,所描述的方法可用于各种动物模型。虽然特定的疾病模型可能需要对方案进行微小的改变,但其评估不同心脏功能参数的基本结构将非常相似。值得一提的一个特殊案例是心肌梗死模型,其中部分心脏的收缩力显着丧失。这可能导致此切片中的心脏导航器信号质量低下。在这种情况下,另一种选择是从单独的切片中获取导航器,如Coolen等人之前的一项研究16所述。使用CS算法从回顾性门控数据中重建不同视图中的CINE图像,并使用图像分析软件进行分析以计算应变和HDF值。
获得的图像的质量自然取决于所有准备步骤,在开始心脏MRI方案之前需要仔细执行。例如,如果在将动物放入MRI扫描仪内时没有看到清晰的心电图和呼吸信号,这可能会导致次优采集,甚至由于磁流体动力学变形的额外影响而增加扫描时间17。重要的是要意识到,由于切片方向的顺序规划,动物不能只是在扫描之间重新定位。因此,在扫描之间无法重新调整心电图导联,因为这会改变鼠标在扫描仪中的位置。在扫描过程中,温度控制对于保持恒定的心脏和呼吸间隔至关重要,这尤其有利于在较长时间内获得的回顾性门控扫描的质量。在这种高占空比扫描期间,动物的温度可能会稳步升高,导致心率和呼吸频率增加。调节加热系统和麻醉的温度可以极大地有助于在扫描之前或期间稳定呼吸频率。
分析过程中的一个关键步骤是轮廓绘制的一致性。虽然自动分割适用于临床数据,但在小鼠心脏数据(未对大鼠进行测试)的情况下,它的性能并不强劲。特定心脏期的高心率和高血流量,特别是在左心室充盈开始时,可能导致体素内脱相和信号排空,从而影响心肌壁的描绘。因此,不建议独立分析每个帧,而是目视检查帧之间心肌壁的运动,并在绘制所有帧的轮廓时考虑到这一点。建议在两个连续帧之间复制和调整心内膜轮廓,以在分析中保持更自然的收缩运动。在该协议中,状肌肉被排除在 SA 图像的心室腔容积之外,用于收缩和舒张功能评估,而它们包含在 2CH , 3CH 和 4CH 视图中用于应变和 HDF 分析,因为后者依赖于心肌壁精确运动的知识,而不是心室腔的精确体积。
收缩压和舒张功能参数基于在整个心脏周期中测量左心室体积,而应变和HDF参数也取决于心肌壁内的运动模式。为此,使用特征跟踪技术,通过识别随后CINE阶段之间的不同解剖学特征和信号强度来评估心肌节段的位移。CMR图像中血池和心肌之间的强烈对比度有助于将特征跟踪用于后续的菌株和HDF分析8。在CMR特征跟踪之前,通过斑点跟踪超声检查和CMR组织标记来确定心肌菌株。与CMR组织标记相比,CMR特征跟踪不需要额外的扫描时间。然而,尽管使用了回顾性触发,CMR仍然具有有限的时间分辨率,这可能使得难以正确评估心脏周期内的快速变形。
在整个心脏周期中评估HDF需要测量二尖瓣和主动脉瓣的直径,以使用先前描述的方程18计算顶底和下外侧 – 前庚方向的HDF。与参考标准4D流MRI相比,该方法显示了HDF的一致估计值,由于其复杂性,其在临床使用中的可用性有限6。重要的是要知道,对瓣膜直径的稳健估计是困难的,因此,对于一组动物,并且在纵向研究中的重复测量中,瓣膜直径应该保持恒定,因为不正确的估计使该参数的变化很容易掩盖HDF参数的细微变化。用于计算 GLS 和 HDF 参数的特定软件可能并非对所有用户都可用。因此,可以参考Voigt等人19(GLS)以及Pedrizzetti等人6,20(HDF),其中包含构成分析软件执行的相应计算基础的所有数学描述。
出于本研究的目的,在健康动物中评估了该协议(N = 6)。左心室体积、dV/dt、内聚GLS和HDF的一组代表性时间曲线如图 5A–C所示。多个心脏功能参数(EF,E’/A’比,峰值GLS和HDF)的平均值如图 5D所示。这些与文献21中使用的可比较协议非常吻合。关于小鼠GLS和HDF数据的文献很少。测量的平均GLS值为-22.8%,与临床数据8处于同一范围,表明使用所述方法获得的GLS测量在小鼠中是可行的。在小鼠中获得的HDF曲线也显示出与人类数据相同的不同阶段,表明该技术已成功转化为临床前研究。虽然HDF参数被假设为心脏功能障碍的早期生物标志物,但需要更多的研究来调查这一新参数的诊断和预测价值。该协议的结果确实表明,HDF和GLS结果预计在动物之间变化更大,当预计动物模型或治疗效果的细微差异时,需要考虑这一点。
The authors have nothing to disclose.
作者感谢Dorita Dekkers和Fatimah Al Darwish在小鼠测量和数据分析方面的帮助。
Equipment | |||
AccuSens single and multi-channel signal conditioner | Opsens solutions inc., Canada | ACS-P4-N-62SC | Used with fiber optic temperature sensor to monitor body temperature |
Duratears eye ointment | Alcon Nederland B.V., Netherlands | ||
Mouse cell | Équipment Vétérinaire Minerve, France | referred to as mouse cradle | |
MR-compatible Monitoring & Gating System for Small animals | SA Intuments, Inc., United States | Model 1030 | ERT Module (ECG/respiratory interface module) , ERT Control/Gating Module, battery pack and subdermal ECG Electrode Set |
MRI scanner | MR Solutions Ltd., United Kingdom | Model: MRS-7024 | Preclinical MRI System 7.0T/24 cm |
Multistation temperature control unit and High Flow PCA | Équipment Vétérinaire Minerve, France | Model: URT Multipostes | animal heating system |
Respiration Sensor | Graseby Medical Limited, United Kingdom | Ref 2005100 | |
RF coil | MR Solutions Ltd., United Kingdom | MRS-MVC | 38mm mouse volume RF coil for mouse body studies |
SF flowmeter | flow-meter, Italy | SF 3 | |
Vaporizer sigma delta Intermed | Penlon Ltd., United Kingdom | ||
Materials | |||
Isoflurane | AST farma, Netherlands | ||
Vaseline petroleum jelly | Unilever, United Kingdom | ||
Software | |||
BART toolbox | https://mrirecon.github.io/bart/ | ||
Mathematica 12.0 | Wolfram Research, Inc., United States | ||
MATLAB 2019a | The MathWorks,Inc., United States | ||
MEDIS Suite MR | Medis Medical Imaging Systems B.V. ,Netherlands | Image analysis software | |
PC-SAM | SA Intuments, Inc., United States | ||
Preclinical Scan | MR Solutions Ltd., United Kingdom | Scanning software | |
Retrospective version 7.0 | Amsterdam UMC, the Netherlands | Reconstuction software: https://github.com/Moby1971?tab=repositories |